Este informe describe una técnica simple y fácil de realizar, utilizando vacío a baja presión, para llenar canales microfluídicos con células y sustratos para la investigación biológica.
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Artículo de método
* These authors contributed equally
Este informe describe una técnica simple y fácil de realizar, utilizando vacío a baja presión, para llenar canales microfluídicos con células y sustratos para la investigación biológica.
Las técnicas de sustrato y modelado celular se utilizan ampliamente en biología celular para estudiar las interacciones célula a célula y célula a sustrato. Las técnicas convencionales de modelado funcionan bien solo con formas simples, áreas pequeñas y biomateriales seleccionados. Este artículo describe un método para distribuir suspensiones celulares, así como soluciones de sustrato, en microcanales complejos, largos, cerrados (sin salida) de polidimetilsiloxano (PDMS) utilizando presión negativa. Este método permite a los investigadores modelar múltiples sustratos, como fibronectina, colágeno, anticuerpos (Sal-1), poli-D-lisina (PDL) y laminina. El modelado de sustratos permite modelar indirectamente una variedad de células. Hemos probado mioblastos C2C12, la línea celular neuronal PC12, neuronas corticales embrionarias de rata y neuronas retinianas de anfibios. Además, demostramos que esta técnica puede modelar directamente fibroblastos en canales microfluídicos mediante la aplicación breve de un bajo vacío en suspensiones celulares. El bajo vacío no disminuye significativamente la viabilidad celular como lo demuestran los ensayos de viabilidad celular. Se discuten las modificaciones para la aplicación del método a diferentes tipos de células y sustratos. Esta técnica permite a los investigadores modelar células y proteínas en patrones específicos sin la necesidad de materiales o equipos exóticos y se puede realizar en cualquier laboratorio con vacío.
En la ingeniería de tejidos y biosensores, la capacidad de controlar la organización espacial de las proteínas y células en una escala de micras, se ha convertido cada vez más importante en los últimos cuatro décadas 1, 2, 3. Organización espacial precisa de las proteínas y células ha permitido a los investigadores examinar la interacción entre las células y sustratos que contienen tipos similares o diferentes de células, para guiar el crecimiento celular, y para inmovilizar biomoléculas para la fabricación de biosensores 4,
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NOTA: Por favor, consulte a todas las hojas de datos de seguridad de materiales pertinentes (MSDS) antes de usar. Algunos de los productos químicos utilizados en este protocolo son tóxicos y cancerígenos. Por favor, use todas las prácticas de seguridad apropiadas (campana de humos, guantera) y equipo de protección personal (gafas de seguridad, guantes, bata de laboratorio, pantalones largos, zapatos cerrados) cuando se utilizan materiales tóxicos o ácido / base.
1. La fabricación de moldes maestros para litografía blanda usando fotolitografía
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Este método permite que el patrón de proteínas y patrones indirecta de células usando sin salida canales de microfluidos con dimensiones tan pequeñas como 10 micras y equipo disponible en casi todos los laboratorios biológicos una vez que se hizo el molde maestro. Esta técnica se puede utilizar con los canales de microfluidos PDMS creados usando fotolitografía tradicional suave, o con canales de microfluidos PDMS creadas con cinta adhesiva de fabricación (Figura 1)
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Mientras que la fotolitografía convencional es una técnica bien establecida para la realización de moldes de litografía blanda, el equipo, los materiales y las habilidades necesarias para utilizar la fotolitografía convencional no están fácilmente disponibles para la mayoría de los laboratorios. Para los laboratorios que no tienen acceso a estos recursos, hemos presentado la fabricación de cinta adhesiva como un método de creación de moldes con características relativamente simples para dispositivos de microfluidos. Est.......
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Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.
Los fondos para esta investigación fue proporcionado por la Comisión de New Jersey en la médula espinal de Investigación (NJCSCR) (a FHK), otorgar CSCR14IRG005 (a BLF), NIH subvención R15NS087501 (a CHC), y la Fundación FM Kirby (a ETA).
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Herramientas de dibujo CAD CorelDRAW X4 Corel | Corporation, Canadá | X4 versión 14.0.0.701 | Herramienta CAD utilizada para dibujar el diseño del dispositivo microfluídico |
| Impresora láser HP | Hewlett Packard, CA | 1739629 | Se utiliza para imprimir el diseño de un dispositivo microfluídico para la técnica de cinta adhesiva |
| Bel-Art Dessicator | Fisher Scientific, MA | 08-594-16B | Se utiliza para desgasificar la mezcla |
| de PDMSCinta adhesiva adhesiva Scotch | Producto 3M, MN | Cinta 600 | Utilizada para fabricar cinta adhesiva Master |
| PDMS Sylgard 184 | Dow Corning, MI | 1064291 | Polímero de fundición |
| Placa de Petri | Fisher Scientific, MA | 08-772-23 | Se utiliza para mantener el molde para fundir con PDMS |
| Bisturí de acero inoxidable con cuchilla (# 11) | Feather Safety Razor Co. Ltd. Japón | 2976 # 11 | Utilizado para cortar el PDMS |
| Pinzas | Ted Pella, CA | 5627-07 | Se utilizan para manipular el molde de PDMS durante el pelado |
| de portaobjetos de vidrio | Fisher Scientific, MA | 12-546-2 | Se utilizan como superficie para modelar el sustrato |
| Portaobjetos de vidrio | Fisher Scientific, MA | 12-544-4 | Se utilizan como superficie para modelar el |
| sustrato Rodillo de goma | Dick Blick Art Materials, IL | 40104-1004 | Se utiliza para fijar cinta adhesiva en el vidrio sin atrapar burbujas de aire |
| Escritor de máscaras láser | Heidelberg Instruments, Alemania | DWL66fs | Se utiliza para fabricar una máscara de cuarzo utilizada en el proceso de fabricación de fotolitografía |
| EVG Mask Aligner (herramienta de exposición UV de fotolitografía) | EV Group, Alemania | EVG 620T(B) | Se utiliza para exponer la fotorresistencia a la luz ultravioleta |
| Spin Coater Headway | Headway Research Inc, TX | PWM32-PS-CB15PL | Se utiliza para recubrir la fotorresistencia en la oblea de silicio |
| Fotorresistias SU-8 50 | MicroChem, MA | Y131269 | Fotorresistencia negativa utilizada para la fabricación de moldes |
| SU-8 Devloper | MicroChem, MA | Y020100 | Revelador fotorresistente |
| Tridecafluoro-1,1,2,2-Tetrahidrooctil-1-Triclorosilano | UCT Especialidades, PA | T2492-KG | Recubre el molde para evitar la adhesión de PDMS |
| Isopropanol | Sigma-Aldrich, MO | 190764 | Solvente de limpieza |
| Etanol Sigma-Aldrich, MO | 24102 | Solvente de esterilización Bromuro | |
| de poli-D-lisina (PDL) | Sigma-Aldrich, MO | P0899-10MG | La solución de PDL se hace a 0,1 mg / mL en tampón de tetraborato de sodio |
| Laminin | Sigma-Aldrich, MO | L2020 | Laminina alícuota en 10 µ L alícuotas y diluido a 20 µ g/µ L en PBS antes de usar |
| BSA | Fisher Scientific, MA | BP1605100 | Cultivo celular |
| C2C12 Línea celular de mioblastos | ATCC, VA | CRL-1722 | Se utiliza para demostrar el patrón de C2C12 |
| Línea celular PC12 | ATCC, VA | CRL-1721 | Se utiliza para demostrar el patrón de PC12 |
| Colágeno tipo 1, cola de rata | BD Biosciences | 40236 | Cultivo celular |
| DMEM | GIBCO, MA | 11965-084 | Cultivo celular |
| Suero de caballo, inactivado por calor | Fisher Scientific, MA | 26050-070 | Cultivo celular |
| Isotiocianato de faloidina-tetrametilrodamina B (TRITC) | Sigma-Aldrich, MO | P1951 | Para marcar células |
| Calceína-AM Kit de ensayo de células muertas vivas | Invitrogen, MA | L-3224 Ensayo de | viabilidad celular |
| Biopsia Perforadora de orificio | Ted Pella, CA | 15110-10 | Agujero perforado en PDMS |
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