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Artículo de método

Expresión, purificación y actividad antimicrobiana de S100A12

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DOI:

10.3791/55557

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13 de mayo de 2017

En este artículo

Resumen

Aquí, se presenta un método para expresar y purificar S100A12 (calgranulina C). Se describe un protocolo para medir su actividad antimicrobiana contra el patógeno humano H. pylori .

Resumen

Las proteínas de la calgranulina son mediadores importantes de la inmunidad innata y son miembros de la clase S100 de la familia EF de proteínas de unión al calcio. Algunas proteínas S100 tienen la capacidad de unirse a los metales de transición con alta afinidad y efectivamente secuestrarlos lejos de patógenos microbianos invasores en un proceso que se denomina "inmunidad nutricional". S100A12 (EN-RAGE) se une tanto al zinc como al cobre y es muy abundante en las células inmunes innatas, como los macrófagos y los neutrófilos. Presentamos un método refinado para la expresión, enriquecimiento y purificación de S100A12 en su configuración activa de unión a metal. La utilización de esta proteína en el crecimiento bacteriano y análisis de viabilidad revela que S100A12 tiene actividad antimicrobiana contra el patógeno bacteriano , Helicobacter pylori . La actividad antimicrobiana se basa en la actividad de unión a zinc de S100A12, que quelates nutrientes de zinc, por lo tanto hambrientos H. pylori que requiere zinc para el crecimiento y pRoliferation.

Introducción

Las proteínas S100 son una clase de la familia EF-mano de proteínas vinculantes de calcio con una amplia gama de funciones [ 1] . Se expresan de una manera específica de tejidos y células, y regulan un amplio espectro de funciones celulares 2 , 3 . Únicas a las proteínas de unión al calcio, las proteínas S100 exhiben funciones intracelulares y extracelulares 4 , 5 . Dentro de la célula, Ca 2 + vinculante induce un cambio conformacional que expone una superficie hidrófoba que se dirige específicamente a los socios de ....

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Protocolo

1. Expresión de S100A12

  1. Transformar células BL21 DE3 competentes con un plásmido pGEMEX-S100a12 usando un protocolo de choque térmico estándar 18 . Añadir 1 a 5 μL de plásmido a 50 μL de bacterias en un tubo de microcentrífuga sobre hielo. Incubar durante 20 min.
  2. Caliente las células a 42 ° C durante 30 s.
  3. Incubar las células en hielo durante 2 min.
  4. Agregue 500 μl de medio SOC a las células. Incubar a 37 ° C con agitación a 250 rpm en un agitador orbital durante 1 h.
  5. Placa 150 μL de la reacción de transformación en medio LB-agar (suplementado con 100 μg / ml de ampicilina). Incubar durante 12-....

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Resultados

S100A12 expresión y purificación

Una purificación en tres etapas produjo ~ 40 mg de S100A12 recombinante a partir de 50 ml de cultivo bacteriano. El primer paso fue una precipitación con sulfato de amonio de proteínas endógenas de E. coli . Este paso fue seguido por cromatografía de intercambio aniónico ( Figura 1A ). La proteína es rastreada por una SDS-PAGE teñida con Coomassie Brillia.......

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Discusión

Se presenta un protocolo eficaz tanto para la expresión como para la purificación de S100A12 humano. El sistema de expresión de E. coli es la herramienta más común usada para la producción de proteínas recombinantes, particularmente cuando se requieren cantidades de mg para estudios bioquímicos y biofísicos. Una mejora clave del procedimiento descrito aquí es el uso de medios de autoinducción 26 que aumenta el rendimiento de proteína purificada por un factor de casi treinta en comparació.......

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Divulgaciones

Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Agradecimientos

Esta investigación fue apoyada por el Departamento de Asuntos de Veteranos Premio de Desarrollo de Carrera 1IK2BX001701, CTSA premio UL1TR000445 del Centro Nacional para el Avance Translational Sciences, la Fundación Nacional de Ciencias Premio Números 1547757 y 1400969, y el NIH concesión GM05551. Su contenido es exclusivamente responsabilidad de los autores y no necesariamente representan puntos de vista oficiales del Centro Nacional para el Avance de las Ciencias Translacionales o los Institutos Nacionales de Salud.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
S100A12 Expresión
Células de expresión
BL 21 (DE3) células competentesNew England BiolabsC25271
medio de autoinducción
Extracto de levaduraProductos de investigación InternacionalY20020-250.0
NaClProductos de Investigación InternacionalS23020-500.0
InvestigaciónTriptonaInternacional T60060-250.0
FeCl3Sigma-AldrichF2877
MgSO4Productos deInvestigación InternacionalM65240-100.0
Na2HPO4Research Products InternationalS23100-500.0
KH2PO4Research Products InternationalP41200-500.0
NH4ClResearch Products InternationalA20424-500.0
Na2SO4Research Products InternationalS25150-500.0
GlycerolResearch Products InternationalG22020-1.0
D-glucoseResearch Products InternationalG32040-500.0
lactosaSigma-AldrichL2643
agente de selección
ampicilinaProductos de investigación InternationalA40040-5.0
S100A12 Purificación
AKTA Sistema de cromatografía de inicioGE29-220-94
HiTrap Q Sepharaose Fast FlowGE17-5156-01
HiPrep 16/60 S-200 HRGE17-1166-01
Espectrofotómetro Nanodrop liteThermo Fisher ScientificND-LITE
Tris BaseResearch Products InternationalT60040-1000.0
H. pylori Culture
Placas de agarLab Supply CompanyBBL221261
Caldo de BrucellaSigma-AldrichB3051
Colesterol (250x)Thermo Fisher Scientific 12531018
NaClSigma-Aldrich793566
CaCl2Sigma-AldrichC4901
β-mercaptoetanolSigma-AldrichM6250
Tris BaseSigma-AldrichT1503
Cloruro de zincSigma-Aldrich229997
Componentes delProductos de de sangre

Referencias

  1. Schiopu, A., Cotoi, O. S. S100A8 and S100A9: DAMPs at the crossroads between innate immunity, traditional risk factors, and cardiovascular disease. Mediators Inflamm. 2013, 828354(2013).
  2. Chen, B., et al.

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Purificación de S100A12secuestro de zincprecipitación con sulfato de amoniocromatografía de intercambio aniónicocromatografía de exclusión molecularanálisis por SDS-PAGEensayo de H. pyloriproteína de unión a metalesinmunidad nutricional