Artículo de método

La perfusión como un método para la visualización vascular Ambystoma mexicanum

DOI:

10.3791/55740

16 de junio de 2017

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En este artículo

Resumen

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Usando una técnica lipofílica de tinción de perclorato de 1,1'-Dioctadecy-3,3,3 ', 3'-tetrametilindocarbocianina (DiI), Ambystoma mexicanum puede someterse a perfusión vascular para permitir una fácil visualización de la vasculatura.

Resumen

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Las técnicas de perfusión se han utilizado durante siglos para visualizar la circulación de los tejidos. Axolotl (Ambystoma mexicanum) es una especie de salamandra que ha surgido como un modelo esencial para los estudios de regeneración. Poco se sabe acerca de cómo se produce la revascularización en el contexto de la regeneración en estos animales. Aquí presentamos un método simple para la visualización de la vasculatura en axolotl vía perfusión de 1,1'-Dioctadecy-3,3,3 ', 3'-tetrametilindocarbocianina perclorato (DiI). DiI es un colorante de carbocianina lipofílico que se inserta en la membrana plasmática de las células endoteliales instantáneamente. La perfusión se realiza usando una bomba peristáltica de tal manera que DiI entra en la circulación a través de la aorta. Durante la perfusión, el colorante fluye a través de los vasos sanguíneos del axolotl e incorpora en la bicapa lipídica de las células endoteliales vasculares al contacto. El procedimiento de perfusión dura aproximadamente una hora para un axolotl de ocho pulgadas. Inmediatamente después de la perfusión,Th DiI, el axolotl se puede visualizar con un microscopio confocal fluorescente. El DiI emite luz en el rango naranja-rojo cuando se excita con un filtro fluorescente verde. Este procedimiento de perfusión DiI puede usarse para visualizar la estructura vascular de los axolotes o para demostrar patrones de revascularización en tejidos regeneradores.

Introducción

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La visualización de la vasculatura desempeña un papel vital en la comprensión de la estructura y función de los organismos a través de muchas especies. A partir del siglo XVI con Leonardo da Vinci, se han estudiado modelos y representaciones gráficas de la circulación 1 . Usando ceras y moldes de caucho, los tejidos fueron perfundidos para crear modelos tridimensionales de la vasculatura, lo que permitió el estudio de la organogénesis y la patogénesis [ 1 , 2] . Las resinas y las ceras se colorearon con tintes tales como tinta India o rojo carmín para permitir su fácil visua....

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Protocolo

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Todos axolotl experimentación se realizó de acuerdo con Brigham y Women's Hospital (BWH) Institucional Cuidado de Animales y el Comité de Uso.

1. Configure Experimento de Perfusión

  1. Coloque un axolotl adulto en un recipiente de plástico lleno de solución de tricaína al 0,1% (MS222) durante 15-20 min o hasta anestesiar completamente. Asegúrese de que el recipiente esté lleno de suficiente solución de tricaína de modo que el axolotl esté completamente sumergido.
    Nota: Todos los procedimientos deben realizarse de acuerdo con las pautas institucionales de cuidado de los animales. En BWH, un axolotl se considera anestesiad....

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Resultados

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Con la tinción DiI, la vasculatura del axolotl se puede visualizar fácilmente. Los vasos sanguíneos de los animales perfundidos con el colorante lipófilo son inmediatamente visibles bajo un microscopio fluorescente confocal. La figura 1 .1-1.5 es una representación esquemática del protocolo de perfusión. Después de la perfusión con el colorante rosa brillante, un axolotl perfectamente perfundido aparecerá rosa. Usando un filtro fluorescente .......

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Discusión

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La visualización de la vasculatura del axolotl puede lograrse con éxito mediante la perfusión con el colorante de carbocianina lipófilo, DiI. En este estudio se describe un nuevo protocolo para la perfusión del axolotl con DiI utilizando una bomba peristáltica. También se muestra la posterior visualización de la vasculatura axolotl utilizando un microscopio confocal fluorescente. Este protocolo fue una adaptación del protocolo de perfusión DiI de roedor observado en Li et al. 7 , sin emb.......

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Divulgaciones

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Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

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Esta investigación fue apoyada por el Brigham & Women's Hospital y la March of Dimes. Los autores desean agradecer a todos los miembros del Whited Lab por su apoyo y asesoramiento.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Bomba peristáltica Marshall Scientific RD-RP1
Tubo de perfusiónExcelon Lab & Tubo de vacío436901705tamaño S1A
27g aguja de mariposaEXELint Medical Products26709
NaClAmericanBio7647-14-5
KClAmericanBio7747-40-7
Na2HPO4 AmericanBio7558-79-4
NaH2PO4AmericanBio10049-21-5
Agua
HCl AmericanBio7647-01-0
GlucosaThermoFischerA2494001
1,1′-Dioctadecil-3,3,3′,3′- perclorato de tetrametilindocarbocianinaSigma Aldrich468495
Etanol (100% vol/vol)Sigma Aldrich64-17-5
Foreceps quirúrgicos MedlineMDG0748741
Marco de espuma de poliestirenocualquier cuadrado
Tijeras quirúrgicasMedlineDYND04025
Bisturí MedlineMDS15210
Almohadilla absorbenteAvacare MedicalPKUFSx
Toallas de papel Pipeta
de transferencia desechable estándarFisherbrand50216954
Soporte de abrazaderaAdafruit291
Etil 3-aminobenzoato metanosulfonatoSigma AldrichE10521Tricaine polvo
Ajolote
MgSO4AmericanBio10034-99-8
CaCl2Sigma AldrichC1016-100G
NaHCO3Sigma AldrichS5761-500G
Tanques deTamaño variable apropiado para el ajolote
ParaformaldehídoSigma Aldrich30525-89-4
Axolotl
Microscopio Leica LeicaM165 FC
ET-CY3 Filtro fluorescenteLeicaM205FA/M165FC
MS-222
destilada de espuma de poliestireno con un corte en forma de ajoloteadulto plástico

Referencias

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  1. Giuvarasteanu, I. Scanning electron microscopy of vascular corrosion casts - standard method for studying microvessels. Rom J Morphol Embryo. 48 (3), 257-261 (2007).
  2. Hasan, M. R., Herz, J., Hermann, D. M., Doeppner, T. R.

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Etiquetas

Vasculatura del ajolotebomba perist lticamicroscop a confocalcanulaci n a rticacolorante fluorescentetinci n endotelialperfusi n tisularestudios de regeneraci n

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