Artículo de método

Desarrollo de cuerpos embrionarios libres de suero derivados de HiPSC para la interrogación de cultivos de células madre tridimensionales usando ensayos fisiológicamente relevantes

DOI:

10.3791/55799

20 de julio de 2017

En este artículo

Resumen

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Aquí presentamos un protocolo para desarrollar un sistema tridimensional (3-D) de células madre pluripotentes inducidas por el hombre (HiPSCs) llamado cuerpo embrioide libre de suero (SFEB). Este modelo tridimensional puede ser utilizado como un cultivo de corte organotípico para modelar el desarrollo cortical humano y para la interrogación fisiológica del desarrollo de circuitos neuronales.

Resumen

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Aunque una serie de modelos de enfermedades in vitro se han desarrollado utilizando hiPSCs, una limitación es que estos sistemas bidimensionales (2-D) pueden no representar la subyacente cytoarchitectural y complejidad funcional de los individuos afectados portadores de las variantes de enfermedad sospechosos. Modelos convencionales 2-D siguen siendo incompletas representaciones de in vivo- como las estructuras y no captar adecuadamente la complejidad del cerebro. Por lo tanto, hay una necesidad emergente de más modelos basados ​​en HiPSC 3-D que puedan recapitular mejor las interacciones y funciones celulares vistas en un sistema in vivo .

Aquí presentamos un protocolo para desarrollar un sistema 3-D de hiPSC indiferenciados basados ​​en el cuerpo embrioide libre de suero (SFEB). Este modelo tridimensional refleja aspectos de un neocórtex ventralizado en desarrollo y permite estudiar las funciones integrales de las células neurales vivas y el tejido intacto tales como la migración, la conectividad, la comunicación y la alfombraCión. Específicamente, demostramos que los SFEBs que usan nuestro protocolo pueden ser interrogados utilizando ensayos basados ​​en células fisiológicamente relevantes y de alto contenido como imágenes de calcio y registros de múltiples electrodos (MEA) sin criosección. En el caso de las grabaciones de MEA, demostramos que los SFEBs aumentan tanto la actividad de pico como la actividad de ruptura a nivel de la red durante el cultivo a largo plazo. Este protocolo SFEB proporciona un sistema robusto y escalable para el estudio del desarrollo de la formación de redes en un modelo tridimensional que captura aspectos del desarrollo cortical temprano.

Introducción

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Hemos informado anteriormente de un sistema modelo 3D, generado a partir de pacientes derivados de las células madre pluripotentes inducidas por humanos (HiPSCs) que recapitula algunos aspectos de la primera red cortical desarrollo 1 . Este modelo tridimensional, un cuerpo embrionario libre de suero (SFEB), mejora los modelos hiPSC anteriores de agregación simple 2 , 3 . Un creciente cuerpo de trabajo está revelando que las estructuras tridimensionales como nuestro SFEBs, los aspectos aproximados de desarrollo neural comúnmente observados in vivo y en un momento anterior de lo....

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Protocolo

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1. Generación de células progenitoras neurales

  1. Mantener los hiPSCs derivados de fibroblastos y PBMCs en placas de 6 pocillos en una capa celular de alimentador embrionario de ratón (MEF) irradiada con γ en medio iPSC humano suplementado con moléculas pequeñas (véase la Tabla de Materiales).
    NOTA: El mantenimiento diario es una versión modificada de los procedimientos anteriores 1 , 16 .
    1. Placa 6 x 10 5 MEFs en cada pocillo de una placa de cultivo de tejido de 6 pocillos en un medio recomendado de 300 μl / pocillo (siguiendo el protocolo del fabricante).

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Resultados

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Los SFEB cultivados usando nuestra técnica dieron tejido con características morfológicas que se asemejan a una zona subventricular cortical precoz repleta de extensas neuronas Tuj1 positivas, así como progenitores neurales ( Figura 3A ). Se observaron numerosas rosetas corticales en desarrollo en las capas externas y capas internas del SFEB ( Figura 3B ). El borde exterior del SFEB se asemeja a una placa cortical en desarrollo .......

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Discusión

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El protocolo descrito aquí proporciona las condiciones para diferenciar una fuente hiPSC en una estructura tridimensional que recapitula una etapa temprana de desarrollo de la corteza frontal. Este procedimiento produce estructuras que pueden ser interrogadas para electrofisiología, al tiempo que son susceptibles de microscopía. La morfología final del SFEB se asemeja a la de los cultivos organotípicos del corte cerebral y permite una imagen confocal detallada de alta calidad. Este protocolo puede generar con éxito SFEB.......

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Divulgaciones

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Los autores no tienen intereses financieros en competencia.

Agradecimientos

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Damos las gracias a Elizabeth Benevides por corregir el artículo. Damos las gracias a los Dres. John Hussman y Gene Blatt por sus útiles discusiones y comentarios.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
SFEB Diferenciación neuronal Medios de cultivo celular. Reactivos. Componentes 
STEMdiff Neural Induction Medium (hiPSC Media)STEMCELL Technologies0-5835250 mL
PluriQ ES-DMEM Medium (MEF Media)GlobalStemGSM-2001
NameCompany  Número de catálogoComments
>DM1 Media Components
D-MEM/F-12 (1x), Glutamax líquido, 1:1Invitrogen10565018385 mL
Suero Knockout ReemplazoInvitrogen1082802820% 100 mL
Pluma/StrepInvitrogen151401225 mL
Glutamax 200 mMInvitrogen350500615 mL
MEM Solución de Aminoácidos No Esenciales 10 mM (100x),Invitrogen111400505 mL
2-Mercaptoetanol (1,000x),Invitrogen21985023900 μ L
NombreCompany  Número de catálogoComments
>DM2 Media Components
D-MEM/F-12 (1x), Glutamax líquido, 1:1Invitrogen10565018500 mL
Glutamax 200 mMInvitrogen350500615 mL
/StrepInvitrogen151401225 mL
N-2 Suplemento (100x),Invitrogen1750204810 mL
NombreCompañía  Número de catálogoComments
DM3 Media Components
NEUROBASAL Medium (1x), líquidoInvitrogen21103049500 mL
B-27 Suplemento Menos Vitamina A (50x), líquidoInvitrogen1258701010 mL
Glutamax 200 mMInvitrogen350500615 mL
/EstreptococoInvitrogen151401225 mL
NameCompany  Número de catálogoComments
>Moléculas pequeñas
ThiazovivinStemgent04-00172 μ M
SB431542Stemgent04-0010-101:1.000 (10 μ M)
VástagoDorsomorfina04-00241 μ M
LDN-193189Potencia04-0074-10250 nM
Y27632 (ROCKi)Potencia04-0012-1010 μ M
NombreCompany  >Número de catálogoComments
>Recombinant Protiens
DKK-1Peprotech120-30200 ng/mL
NameCompany  Número de catálogoComments
>Componentes/Materiales
Cell Culture insertos 0.4 μ M,MillicellPICM0RG50
Fibroblastos embrionariosGlobalStemGSC-6301G
V de 96 pocillos con tapasEvergreen222-8031-01V
StemPro Accutase Reactivo de disociación celularThermoFisherA1110501
TritonX-100ThermoFisher85111
Solución salina tamponada con fosfato (PBS)ThermoFisher10010023500 mL
Suero de burro normalJackson Labs017-000-121
Medio L-15 de LeibovitzThermoFisher11415114500 mL
DRAQ5 (marcador nuclear)ThermoFisher65-0880-96
Placas MEAAxion BiosystemsM768-GL1-30Pt200
6 pocillos de fondo planoFalcon353046
NombreCompany  Número de catálogoComments
>Anticuerpo
NestinMilliporeMAB5326
Brn-2Protein tech14596-1-AP
VGLUT1Synaptic Systems135 303
Pax6abcamab5790
Calretininaabcamab702
Calbindinabcamab11426
CoupTFIIR& D SystemsPPH714700
Nkx 2.1abcamab12650
Tuj1abcamab41489
ReelinMilliporeMAB5364
Tbr1MilliporeMAB2261
NFHDakoM0762
líquido líquido Pen líquido Pen de ratón de 30 mm de diámetroFondo en

Referencias

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Nestor, M. W., et al. Differentiation of serum-free embryoid bodies from human induced pluripotent stem cells into networks. Stem Cell Res. 10 (3), 454-463 (2013).
  2. Eiraku, M., et al.

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