Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Espectroscopia de la fuerza de las moléculas de proteína sola utilizando un microscopio de fuerza atómica

8.6K vistas

DOI:

10.3791/55989

28 de febrero de 2019

En este artículo

Resumen

Se describen los procedimientos y estrategias para medir las propiedades mecánicas y las vías despliegue mecánicas de las moléculas de proteína sola utilizando un microscopio de fuerza atómica. También mostramos resultados representativos como referencia para la selección y justificación de las grabaciones de molécula única de proteína buena.

Resumen

La determinación del proceso de plegado de las proteínas de su secuencia de aminoácidos en su estructura 3D nativa es un problema importante en biología. Microscopía de fuerza atómica (AFM) puede solucionar este problema permitiendo el estiramiento y relajación de las moléculas de proteína única, que da una evidencia directa de despliegue y refolding características específicas. Basada en AFM solo-molécula-espectroscopia de fuerza (AFM-SMF) proporciona un medio para medir consistentemente alta energía conformaciones de las proteínas que no son posibles en las mediciones (bioquímicos) a granel tradicionales. Aunque numerosos artículos fueron publicados para mostrar principios de AFM-SMF, no es fácil llevar a cabo experimentos de SMF debido a la falta de un protocolo de manera exhaustiva completa. En este estudio, nos ilustran brevemente los principios de la AFM y detalle ampliamente los protocolos, procedimientos y análisis de datos como guía para lograr buenos resultados de los experimentos de SMF. Demostramos representante SMF resultados de proteína único mecánico despliegue mediciones y proporcionar resolución de problemas estrategias algunos comúnmente encontrado problemas.

Introducción

Avances en espectroscopía de fuerza sola molécula (SMF) por AFM permitieron manipulación mecánica y caracterización precisa de las moléculas de proteína sola. Esta caracterización ha producido nuevos insights sobre proteína mecánica1,2, proteína plegable3, de las interacciones proteína-ligando4, de las interacciones proteína-proteína5, y basados en proteína de ingeniería materiales6,7,8. SMF es especialmente útil para el estudio de proteína desple....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Protocolo

1. preparación de la proteína

  1. Clonación de ADN.
    1. Sintetizar una secuencia de ADN de interés, por ejemplo, la secuencia de ADN de NI10C10, o aislar mediante PCR del organismo anfitrión mediante técnicas de biología molecular estándar11. Flanquean el gen de interés, con sitios de restricción durante la síntesis o mediante la colocación de sitios en el extremo 5' de los cebadores de la PCR para corresponder a un módulo en el plásmido pEMI91 (Addgene #74888)12.
    2. Digerir por separado el plásmido pEMI9112 y la secuencia de ADN de int....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

Resultados representativos de este protocolo se muestran en la figura 2. Ambos paneles muestran las curvas de fuerza representativa-extensión de proteínas. La parte superior muestra los resultados de una poliproteína I91, mientras que la parte inferior muestra la proteína I91 flanqueando un proteína de interés, la molécula de10C de NI. Estas grabaciones muestran la fuerza característica de I91 (200 pN) y el incremento de la longitud del contorno (2.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Discusión

Un paso crítico en el protocolo es el uso de una poliproteína, descrito en el paso 1.1.2, que sirve como un control positivo a la "huella digital" eventos de una sola molécula. Generalmente, allí debe ser desplegar eventos de las proteínas de la poliproteína (I91, esto significa una fuerza de despliegue de unos 200 pN y contorno incremento de longitud de aproximadamente 28 nm) a concluir inequívocamente que la proteína de interés se ha revelado. Por ejemplo, cuando la proteína del interés está flanqueada por tres dominio.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por la National Science Foundation Becas MCB-1244297 y MCB-1517245 a PEM.

....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Discos de muestra AFM, 15 mm de diámetroTed Pella, Inc.16218Sirve como base para sustrato de vidrio
Cubreobjetos de vidrio redondos, 15 mm de diámetro No.1 GruesoTed Pella, Inc.26024sirven como sustrato de vidrio y base para
las pestañas adhesivas de recubrimiento deTed Pella, Inc.16079Pegar en los discos de muestra AFM para proporcionar una cara adhesiva para fijar cubreobjetos
de vidrio Conjunto de cabezal multimodo STDBruker Nano Inc.1B75CCabezal AFM
Soporte de sonda de vidrioBruker Nano Inc.MTFML-V2Soporte de sonda de vidrio para escaneo en fluido con el AFM MultiMode.  
Sondas AFM de MicroleverBruker Nano Inc.Voladizos de nitruro de silicio MLCT con puntas de nitruro de silicio, ideales para modos de imagen de contacto
Sondas AFM con puntas recubiertas de AuBruker Nano Inc.OBL-10Voladizos para tirar de proteínas con baja fuerza de despliegue
Tarjeta de adquisición de datos (DAQ) multifunción, 16 bits, 1 MS/s (multicanal), 1,25 MS/s (1 canal), 32 entradas analógicasde datos PCI-6259National Instrumentspara señales de cabezal AFM y actuadores piezoeléctricos
LISA Actuadores de etapa piezoeléctricos lineales LISAPhysik Instrumente LPP-753.11CActuador piezoeléctrico para controlar la posición del sustrato y realizar mediciones de tracción
XY Piezo StagePhysik Instrumente LPP-541.2CDActuador piezoeléctrico para controlar la posición del sustrato y escanear la superficie del sustrato
oro Adquisición de

Referencias

  1. Rief, M., Gautel, M., Oesterhelt, F., Fernandez, J. M., Gaub, H. E. Reversible Unfolding of Individual Titin Immunoglobulin Domains by AFM. Science. 276 (5315), 1109-1112 (1997).
  2. Fisher, T. E., Oberhauser, A. F., Carrion-Vazquez, M., Marszalek, P. E., Fernandez, J. M. Th....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Microscop a de fuerza at micaEspectroscop a de fuerza de mol cula nicaDesplegamiento de prote nasEstabilidad de prote nasModelo de cadena similar a gusanoAn lisis de poliprote nasCalibraci n del cantileverMedici n de la fuerzaConcentraci n de prote nasSoftware de AFM