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Artículo de método

Nitrógeno cavitación y centrifugación diferencial permite el monitoreo de la distribución periférica de proteínas de membrana en células cultivadas

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DOI:

10.3791/56037

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18 de agosto de 2017

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En este artículo

Resumen

Aquí presentamos los protocolos para la homogeneización de detergente libre de células de mamíferos cultivadas basado en nitrógeno cavitación y posterior separación de las proteínas citosólicas y membrana-limitan por ultracentrifugación. Este método es ideal para el monitoreo de la partición de proteínas periféricas de membrana entre soluble y fracciones de la membrana.

Resumen

Las células cultivadas son útiles para estudiar la distribución subcelular de proteínas, incluyendo proteínas de membrana periférica. Codificada genéticamente fluorescente etiquetadas proteínas han revolucionado el estudio de la distribución subcelular de la proteína. Sin embargo, es difícil cuantificar la distribución con microscopia fluorescente, especialmente cuando las proteínas son parcialmente citosólicas. Por otra parte, a menudo es importante para el estudio de proteínas endógenas. Bioquímicos de ensayos como immunoblots siguen siendo el estándar de oro para la cuantificación de la distribución de la proteína después de fraccionamiento subcelular. Aunque existen kits comerciales que tienen como objetivo aislar citosólica o ciertas fracciones de la membrana, la mayoría de estos kits se basa en la extracción con detergentes, que puede ser inadecuado para el estudio de proteínas de membrana periférica que se extraen fácilmente las membranas. Aquí presentamos un protocolo libre de detergente para celular homogeneización por nitrógeno cavitación y posterior separación de las proteínas citosólicas y membrana-limitan por ultracentrifugación. Confirman la separación de orgánulos subcelulares en soluble y fracciones de pellets a través de diferentes tipos de células y comparar la extracción de proteínas entre varios métodos de homogeneización mecánica no-base de detergente común. Entre varias ventajas de nitrógeno la cavitación es la superior eficacia de disrupción celular con daño mínimo de físico y químico delicada organelos. Combinado con ultracentrifugación, nitrógeno la cavitación es un método excelente para examinar el cambio de las proteínas periféricas de membrana entre citosólica y fracciones de la membrana.

Introducción

Proteínas celulares se pueden dividir en dos clases: los que están asociados a membranas y aquellos que no son. No-membrana las proteínas asociadas se encuentran en el citosol, nucleoplasia y lumina de orgánulos como el retículo endoplásmico (ER). Hay dos clases de proteínas asociadas a membrana, integrales y periféricas. Proteínas integrales de membrana también son conocidas como proteínas transmembranales porque uno o más segmentos de la cadena polipeptídica atraviesa la membrana, por lo general como una α-hélice compuesta de aminoácidos hidrofóbicos. Proteínas transmembranales co-translationally se insertan en las membranas en el curso de su biosíntesis y permanece....

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Protocolo

1. buffer y preparaciones de equipo

  1. enfriar 45 mL celular interrupción bombas, tubos de 15 mL y tubos de ultracentrifugación a 4 ° C.
  2. Preparación y 25 mL de buffer de homogenización por 2 x 10 7 células a 4 ° C. agregar una proteasa inhibidor tableta antes de uso.
    Nota: Reservas de homogeneización normalmente contienen KCl en vez de NaCl para mejor reflejar la composición sal intracelular. Buffer de homogeneización utilizado en este protocolo se compone de 10 mM HEPES, pH 7.4, 10 mM KCl y 1,5 mM de MgCl 2 (en lo sucesivo como buffer de homogeneización hipotónica). Almacenadores intermediarios la mayoría pueden ser adap....

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Resultados

La figura 2 muestra la partición de proteínas celulares del PNS en la fracción citosólica soluble (S) o fracción de la pelotilla de membrana (P). Examinamos tres líneas de células representativas de diferentes tipos de células: HEK-293 (epiteliales), NIH-3T3 (fibroblastos) y Jurkat (linfocito). Inhibidores de disociación de guanina de Rho (RhoGDI) y receptor de manosa-6-fosfato catión independiente (CIMPR) fueron utilizados como controles positivos para citos.......

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Discusión

Son múltiples las ventajas de la cavitación de nitrógeno sobre otros métodos de alteración mecánica. Quizás el beneficio más significativo es su capacidad para suavemente y eficientemente homogeneizar a muestras. Los principios físicos de descompresión enfría muestras en lugar de generar daño de calentamiento local como ultrasonidos y fricción/cizallamiento basado en técnicas. La cavitación también es extremadamente eficaz en alterar la membrana plasmática. Porque el nitrógeno de las burbujas se generan dentro de cada cé.......

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Divulgaciones

Los autores declaran que no tienen intereses financieros que compiten.

Agradecimientos

Este trabajo fue financiado por GM055279, CA116034 y CA163489.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Recipiente de disrupción celular (45 mL)Parr Instrument4639Bomba de cavitación de nitrógeno
Homogeneizador Dounce (2 mL)Kontes885300-0002Mortero y tubo Dounce
Jeringa de insulina U-100 28G½Becton Dickinson329461Needle Anticuerpo
Atg12Santa Cruz271688Anticuerpo de ratón, uso con dilución 1:1000
β-anticuerpo de actinaSanta Cruz47778Anticuerpo de ratón, uso con dilución 1:1000
β-anticuerpo de tubulinaDSHBE7-sAnticuerpo de ratón, uso con una dilución de 1:5000
Anticuerpo de calnexinaSanta Cruz23954Anticuerpo de ratón, uso con una dilución de 1:1000
Anticuerpo contra la calregulina373863 Santa CruzAnticuerpo de ratón, uso con una dilución de 1:1000
Anticuerpo contra la catalasa271803 de Santa CruzAnticuerpo de ratón, uso con una dilución de 1:1000
Anticuerpo CIMPRAbcam124767Anticuerpo de conejo, uso con una dilución de 1:1000
Anticuerpo EEA1Santa Cruz137130Anticuerpo de ratón, uso con dilución 1:1000
Anticuerpo EGFRSanta Cruz373746Anticuerpo de ratón, uso con dilución 1:1000
Anticuerpo F0-ATPasaSanta Cruz514419Anticuerpo anticuerpo de ratón, uso con dilución 1:1000
Anticuerpo F1-ATPasaSanta Cruz55597Anticuerpo de ratón, uso con dilución 1:1000
AnticuerpofibrilarinaSanta Cruz374022Anticuerpo de ratón, uso con una dilución de 1:200
Anticuerpo contra Golgin 97Anticuerpo de ratón Santa Cruz59820uso con dilución de 1:1000
Anticuerpo HDAC1Santa Cruz81598Anticuerpo de ratón, uso con una dilución de 1:1000
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AnticuerpoLamin A/CSanta Cruz376248Anticuerpo de ratón, uso con una dilución de 1:1000
Anticuerpo LAMP1DSHBH4A3-cAnticuerpo de ratón, uso con una dilución de 1:1000
Na+/K+ Anticuerpo ATPasaSanta Cruz48345Anticuerpo de ratón, uso con dilución 1:1000
Anticuerpo Rab7Abcam137029Anticuerpo de conejo, uso con una dilución de 1:1000
Rab9 anticuerpoThermoMA3-067Anticuerpo de ratón, uso con una dilución de 1:1000
Anticuerpo RCAS1398052 Santa CruzAnticuerpo de ratón, uso con dilución de 1:1000
Anticuerpo RhoGDISanta Cruz360Anticuerpo de conejo, uso con una dilución de 1:3000
Anticuerpo S6 de proteína ribosómicaSanta Cruz74459Anticuerpo de ratón, uso con dilución de 1:1000
Anticuerpo Sec61aSanta Cruz12322Anticuerpo de cabra, uso en dilución 1:1000
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Referencias

  1. Miyawaki, A. Proteins on the move: insights gained from fluorescent protein technologies. Nat Rev Mol Cell Biol. 12 (10), 656-668 (2011).
  2. Bunger, S., Roblick, U. J., Habermann, J. K. Comparison of five commercial extraction kits for subsequen....

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