Artículo de método

Protocolo para la evaluación de los efectos relativos de medio ambiente y la genética en el asta y el crecimiento del cuerpo para una larga vida cérvidos

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DOI:

10.3791/56059

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8 de agosto de 2017

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1Department of Wildlife, Fisheries and Aquaculture, Mississippi State University, 2Department of Natural Resource Management, South Dakota State University, 3Mississippi Department of Wildlife, Fisheries and Parks

En este artículo

Resumen

Diferencias fenotípicas entre las poblaciones de cérvidos pueden estar relacionados con genética de la población o nutrición; discerniendo que es difícil en la naturaleza. Este protocolo describe cómo se diseñó un estudio controlado donde se eliminó la variación nutricional. Encontramos que variación fenotípica de venado de cola blanca del hombre más fue limitado por la nutrición que genética.

Resumen

Fenotipo de cérvidos puede colocarse en una de dos categorías: eficacia, que promueve la supervivencia crecimiento morfométrico extravagantes y lujo, que promueve el crecimiento del cuerpo y armas de gran tamaño. Las poblaciones de una misma especie muestran cada fenotipo dependiendo de las condiciones ambientales. Aunque tamaño cuerno y cuerpo de hombre venado cola blanca (Odocoileus virginianus) varía según la región fisiográfica en Mississippi, Estados Unidos y esta fuertemente correlacionado con la variación regional en calidad nutricional, los efectos de la genética de población de las poblaciones nativas y los esfuerzos de re-stocking anteriores no pueden tenerse en cuenta. Este protocolo describe cómo se diseñó un estudio controlado, donde se controlan otros factores que influyen en el fenotipo, como la edad y la nutrición. Llevamos capturados hembras y cervatillos de seis meses de tres regiones fisiográficas distintas en Mississippi, Estados Unidos a la Mississippi estado oxidado Dawkins Memorial ciervos unidad de la Universidad. Ciervos de la misma región fueron criados para producir una segunda generación de crías, lo que nos permite evaluar las respuestas generacionales y efectos maternos. Ciervos de todos comieron la misma calidad (20% de proteína cruda ciervos de la pelotilla) dieta ad libitum. Únicamente había marcado a cada recién nacido y registrado pie de masa, traseras de cuerpo y longitud de cuerpo total. Cada caída posterior, sedado personas mediante inyección remota y muestra el mismo morfometría plus las cornamentas de los adultos. Se encontró que todos morfometría aumentó en tamaño de primera a segunda generación, con compensación total de tamaño de la cornamenta (variación regional no presente) y una compensación parcial de la masa del cuerpo (algunas pruebas de variación regional) evidente en la segunda generación. Segunda generación de machos que originaron de la peor calidad suelo región muestra un aumento de 40% en el tamaño de la cornamenta y un aumento de 25% en la masa corporal en comparación con sus contrapartes silvestres cosechadas. Nuestros resultados sugieren que la variación fenotípica de salvaje macho venado cola blanca en Mississippi están más relacionados con las diferencias en calidad nutricional que la genética de la población.

Introducción

Factores ambientales, que experiencias de una madre durante la gestación y la lactancia pueden influir en fenotipo de su descendencia, independiente del genotipo1,2,3. Las madres que habitan en ambientes de alta calidad probablemente producirá crías que presentan un fenotipo de lujo (gran cornamenta y cuerpo tamaño4), mientras que las madres que habitan en un entorno de baja calidad pueden producir crías que presentan un fenotipo de eficiencia (pequeños cuernos y cuerpo tamaño4). Por lo tanto, persistir en un entorno de alta calidad puede permitir que una madre producir descendencia masculina con grandes características fenotípicas, que pueden influir directamente en oportunidades reproductivas5,6,7,8 de la descendencia e indirectamente influir en la aptitud inclusiva de la madre.

Aunque la nutrición influye directamente en las características fenotípicas a través de taxa (americanus de Ursus, arctos de Ursus9; FuscusI Mackloti 10; Larus michahellis 11), varios factores pueden afectar fenotipos de venado cola blanca en Mississippi, Estados Unidos. Tamaño de la cornamenta y el cuerpo son un tercio más grande para algunas poblaciones en comparación con otros12. Esta variación se correlaciona fuertemente con forraje calidad13,14; los machos más grandes se encuentran en áreas con la mayor calidad de forraje. Sin embargo, los esfuerzos de restauración histórica de venado cola blanca en Mississippi puedan haber llevado a los cuellos de botella genéticos o fundador efectos15,16, que puede explicar también parte de la variación regional observada en fenotipo de venado cola blanca.

Proporcionamos el protocolo que utilizamos para el control de calidad nutricional de los capturados venado cola blanca, que nos permitió evaluar si fenotipo masculino está limitada por la genética de la población. Este protocolo también nos permitió evaluar si quedando efectos maternos estaban presentes en nuestras poblaciones. Nuestro diseño controlado es preferente a los estudios realizados en poblaciones que van gratis, que se limitan a usar las variables ambientales como un proxy para restricción nutricional3,17. Nuestro diseño controlado permite también otras variables como potencial crónico estrés social relacionados con interacciones a mantenerse constante todos los individuos son sometidos a viviendas similares y las prácticas de cría. Además, porque la nutrición influye directamente en otros aspectos de la historia de la vida desde reproducción hasta supervivencia18,19, control de la nutrición permite investigadores evaluar otras variables que afectan aspectos de la historia de la vida mamífera. Protocolos similares se han descrito para evaluar cuestiones relacionadas con aspectos de la historia de la vida de otros ungulados en América del norte (e.g., 20,21).

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Protocolo

Declaración de ética: El Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad Estatal de Mississippi aprobó todas las técnicas de captura, manipulación y marcado bajo los protocolos 04-068, 07-036, 10-033 y 13-034.

1. Establecer sitios de captura, inmovilizar y transportar ciervos de cola blanca silvestres

  1. Identifique propiedades públicas y privadas inscritas en el Programa de Asistencia para la Gestión del Venado22 y establezca al menos 29 sitios de captura en tres regiones fuente en Mississippi, EE. UU.
    1. Identifique varios lugares de captura dentro de cada región fuente para asegurar que se capture el rango de variación genética presente en la población regional.
    2. Nota: En este caso, las regiones fuente incluyeron el Delta, que comprende casi el 17 % del área total de tierra en Mississippi, EE. UU., y se considera una región de suelo de alta calidad con la agricultura como uso principal del suelo23,24. Todos los animales de estudio fueron capturados en esta región dentro de la distribución de O. v. virginianus25. Otras regiones incluyeron la región de Loess Delgado (Loess Delgado superior e inferior combinado), que comprende casi el 14 % del área total de tierra en Mississippi, EE. UU., y se considera una región de suelo de calidad media. La agricultura también es un uso principal del suelo en la región de Loess Delgado, aunque no tan predominante como en el Delta23,24. Todos los animales de estudio fueron capturados en esta región dentro de la distribución de O. v. virginianus21. Por último, la región de suelos de la Llanura Costera Inferior (LCP) comprende casi el 22 % de Mississippi y se clasifica como una región de suelo de baja calidad. Los usos principales del suelo en la LCP son la producción de madera de pino y el pastoreo de ganado23,24. La LCP también se superpone con la distribución geográfica de O. v. osceola; cuatro de las seis poblaciones fuente se encontraban a menos de 21 km de esta distribución25. Esta subespecie fue descrita como más pequeña que O. v. virginianus26.

Mapa de regiones de origen del suelo; Delta, Llanura Costera Inferior, Loess Delgado; diagrama geográfico.
Figura 1: Poblaciones de Origen. Regiones fisográficas donde se capturaron hembras preñadas y cervatillos en Mississippi, EE. UU. Esta figura ha sido modificada a partir de la referencia31. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

  1. Seleccione sitios potenciales de captura que cumplan los siguientes criterios: características del hábitat favorables para el movimiento de los ciervos, proximidad a caminos para facilitar el acceso y distribución a lo largo del área de estudio.
    NOTA: Los sitios de captura deben permitir el ocultamiento del técnico de captura.
    1. Use cebos con aproximadamente 10 kg de maíz desgranado para atraer a los ciervos y evalúe su uso mediante el consumo del cebo y las fotografías de ciervos tomadas por cámaras sensibles al movimiento. Cambie a sitios alternativos si los ciervos no acuden a los sitios cebados dentro de los 5-7 días.
  2. Durante los eventos de captura, siéntese en un "puesto" oculto.
    1. Coloque el puesto aproximadamente a 20 m a sotavento del montón de cebo, teniendo en cuenta la dirección predominante del viento para que los ciervos que se acerquen al cebo tengan menos probabilidades de oler al técnico de captura.
      NOTA: Se prefieren fuertemente los puestos elevados, y se requiere el uso de arneses de seguridad. Existen varias variantes de puestos disponibles en diversas fuentes comerciales, y su uso varía según la preferencia personal. Por ejemplo, un puesto fijo incluye asiento y escalera para acceder, sujeto a un árbol mediante correas. Los puestos portátiles de escalada pueden ser transportados por el técnico de captura y permiten mayor movilidad, ya que este puede elegir un árbol específico al llegar al sitio de captura. Los puestos portátiles de escalada solo pueden usarse en árboles rectos sin ramas hasta la altura deseada.
  3. Utilice una pistola de dardos acoplada a un dardo de telemetría de radio de 3 cc para administrar una mezcla de tiletamina HCl (4,4 mg/kg) y xilazina HCl (2,2 mg/kg).
    1. Planifique los esfuerzos de captura para que coincidan con el ciclo típico de actividad crepuscular de los ciervos27. Comience cada intento de captura 2-3 h antes del atardecer.
    2. Continúe los eventos de captura durante 2-3 h después del atardecer, utilizando gafas de visión nocturna y un láser de punto rojo para la colocación del disparo si no se captura a los ciervos durante las horas de luz diurna.
    3. Dispare a los ciervos cuando estén de costado y estacionarios.
      NOTA: La nalga del ciervo es el objetivo porque tiene tejido muscular abundante y está alejada del corazón y los pulmones.
    4. Espere aproximadamente 15 min para que los animales dardados (corzos de seis meses de edad, de cualquier sexo, o hembras adultas preñadas) se inmovilicen completamente antes de localizarlos con equipo de telemetría direccional.
    5. Confirme que los individuos están sedados comprobando los reflejos oculares (parpadeo). Luego, aplique una pomada oftálmica en los ojos y venda los ojos del ciervo para reducir el estrés.
      NOTA: La pérdida de termorregulación es una consecuencia de la inmovilización.
    6. Utilice un termómetro rectal para evaluar la temperatura corporal tras la recuperación. Caliente al ciervo con mantas térmicas si su temperatura está por debajo de 37,7 °C. Enfríe al ciervo con bolsas de hielo si su temperatura está por encima de 40,0 °C.
    7. Coloque al ciervo en posición esternal sobre una camilla tipo militar y trasládelo desde el lugar de captura hasta un remolque cerrado.
    8. Después de colocar al ciervo en el remolque, invierta los efectos de la xilazina HCl con 0,125 mg/kg de yohimbina HCl28.
    9. Transporte a todos los ciervos capturados hasta la instalación cautiva deseada (por ejemplo, Unidad Conmemorativa de Ciervos Rusty Dawkins de la Universidad Estatal de Mississippi; MSU Deer Unit) y manténgalos separados según su región de origen.

2. Instalaciones de cautiverio y prácticas generales de manejo de animales de investigación

NOTA: La Unidad de Ciervos de MSU está subdividida en cinco corrales de 0,4 a 0,8 ha.

  1. Cubra todos los lados de cada corral con tela de sombra para actuar como barrera visual y física entre corrales. La tela de sombra ayuda a reducir lesiones y proporciona sombra durante los meses de verano.
  2. Coloque 1-2 puestos elevados tipo caja en un extremo de cada corral para facilitar los eventos de dardos durante la recolección de datos.
  3. Coloque dos comederos tipo bebedero en extremos opuestos de cada corral para reducir la competencia por la comida entre los ciervos. También proporcione un bebedero de agua en cada corral.
  4. Proporcione a los ciervos una dieta de alta calidad (peletes para ciervos con 20% de proteína bruta) ad libitum.
    NOTA: En este caso, los forrajes adicionales disponibles dentro de los corrales incluyeron (Trifolium spp) y festuca (Festuca spp), junto con gramíneas y hierbas espontáneas.
  5. De estar presentes, mantenga los forrajes disponibles dentro de los corrales utilizando una mezcla de herbicidas para controlar malezas de hoja ancha y gramíneas, aplicando las tasas indicadas en las etiquetas respectivas.
    NOTA: Es probable que se necesiten instalaciones fuera del campus para alojar machos de ≥5,5 meses de edad. Estas instalaciones consistieron en dos corrales de 0,7 ha en cada una de tres propiedades, con prácticas de manejo similares a las del Unidad de Ciervos de MSU.

Mapa de los estados de EE. UU. que resalta los condados de Mississippi; diagrama de distribución geográfica.
Figura 2: Ubicaciones de las Instalaciones de Confinamiento. Área de estudio donde se encontraban las instalaciones satélite y la Unidad de Ciervos de la Universidad Estatal de Mississippi (MSU). Las áreas sombreadas indican los condados de Oktibbeha (A), Noxubee (B), Attala (C), Scott (D) y Copiah (E), en Mississippi, EE. UU. Esta figura ha sido modificada a partir de la referencia34. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

3. Control de parásitos y enfermedades

  1. Monitoree a los animales de investigación para detectar parásitos de gusanos redondos (Strongyloides spp) mediante flotación fecal, midiendo los parásitos como huevos por gramo (EPG).
    1. Si están presentes en niveles altos, realice control de parásitos administrando un vermífugo en forma de gránulos (ingrediente activo fenbendazol) a una dosis de aproximadamente 0,77 kg de gránulos por cada 22,7 kg de alimento durante el mes de mayo.
    2. Si los niveles de parásitos permanecen altos tras el tratamiento inicial, utilice un tratamiento tópico con ivermectina (5 mg/mL)29, mezclado a una proporción de 2 mL/0,45 kg, y adminístrelo a los animales a razón de 0,45 kg de alimento tratado por cada 45,4 kg de masa corporal.
      NOTA: La enfermedad hemorrágica epizoótica es una enfermedad viral a veces letal transmitida por un mosquito picaflor (Culicoides spp) durante los meses de verano y otoño. Si está presente, trate la instalación de investigación con insecticida (insecticida al 5% de volumen ultra bajo) de 2 a 3 veces por semana desde el 1 de julio hasta el 1 de octubre para reducir la prevalencia de los vectores entre los animales de investigación. Rocíe este insecticida dentro de cada corral y alrededor del perímetro de la instalación aproximadamente 90 minutos antes de la puesta oficial del sol mediante un generador de niebla. Los métodos preferidos para el control de parásitos y enfermedades son únicos para cada instalación de cautiverio. Debe consultarse con veterinarios durante cualquier investigación con fauna silvestre en cautiverio para garantizar la salud y seguridad de los animales.

4. Recolección de datos

Estudio de anatomía de ciervos, midiendo la longitud de la pata con una cinta métrica, investigación de campo, biología silvestre.
Figura 3: Recolección de Datos de Cérvidos Recién Nacidos. Medición de la longitud del pie trasero de un cervatillo recién nacido en la Unidad de Ciervos Memorial Rusty Dawkins de la Universidad Estatal de Mississippi, en el condado de Oktibbeha, Mississippi, EE. UU. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

  1. Busque crías diariamente en la instalación de cautiverio durante la temporada de parto.
    1. Marque de forma única a las crías recién nacidas con etiquetas plásticas medianas en las orejas, utilizando un aplicador de etiquetas con antibiótico aplicado en el extremo macho de la etiqueta para prevenir posibles infecciones. Coloque la etiqueta aproximadamente en el centro de la oreja de la cría.
    2. Mida la masa corporal (hasta 0,01 kg) con una balanza digital colgante y mida la longitud del pie trasero y la longitud total del cuerpo (hasta el milímetro más cercano).
    3. Recoja muestras de pelo y envíelas a un sitio remoto para la asignación de parentesco (véase la Tabla de Materiales).
      NOTA: La asignación de parentesco se realizó mediante ADN, basándose en una base de datos propietaria, no estadística y con lenguaje de consulta estructurado personalizado. En la comparación de alelos por pares, el sitio remoto de asignación de parentesco determinó el parentesco al excluir a todos los padres excepto un macho y una hembra, basándose en un alelo compartido de cada progenitor en todos los loci analizados (B. G. Cassidy, comunicación personal). Este método de asignación de parentesco también se utilizó en investigaciones previas realizadas con ciervos cola blanca en cautiverio30,31.
    4. Administre 2 cc de toxoide contra Clostridium perfringens tipos C y D y antitoxina contra Clostridium perfringens tipos C y D por vía subcutánea, y administre 0,3 cc/kg de ivermectina en propilenglicol (Mississippi State University Veterinarian School, Mississippi, USA) por vía oral a cada cría.
  2. Inmovilice químicamente a los machos adultos (≥1,5 años) durante octubre y noviembre para la recolección de datos.
    1. Inmovilice a los adultos encerrados utilizando la misma combinación de clorhidrato de tiletamina y clorhidrato de xilacina empleada para la captura de animales silvestres (paso 1.4).
    2. Durante los eventos de sedación, lleve al técnico que realizará el disparo hasta el extremo del corral donde se encuentran los puestos elevados. Ubique un solo técnico en cada uno de los dos puestos.
    3. El individuo que acompañó al técnico hasta el puesto debe regresar al extremo opuesto del corral.
      NOTA: Los ciervos se alejan de estos técnicos y se colocan frente a los puestos, donde los técnicos están en posición de realizar disparos éticos sobre cada ciervo.
    4. Realice disparos sobre los ciervos cuando estén de costado y estacionarios (sección 1.4).
    5. Espere aproximadamente 15 minutos a que los animales alcanzados por el dardo queden completamente inmovilizados antes de acercarse.
    6. Confirme que los individuos están sedados comprobando los reflejos oculares (parpadeo). Aplique una pomada oftálmica en los ojos y venda los ojos del ciervo para reducir el estrés.
    7. Después de que los técnicos hayan sedado con éxito a un ciervo individual, supervise las constantes vitales del animal.
      1. Utilice un termómetro rectal para evaluar la temperatura corporal tras la recuperación. Caliente al ciervo con mantas calientes si su temperatura está por debajo de 37,7 °C. Enfríe al ciervo con paquetes de hielo si su temperatura está por encima de 40,0 °C.
    8. Cargue al ciervo en una camilla de estilo militar y trasládelo mediante un vehículo todo terreno a un área predeterminada de recolección de datos.
    9. Una vez trasladado, registre las mismas mediciones morfométricas tomadas al nacer (paso 4.1).
      1. Mida la masa corporal (hasta 0,01 kg) con una balanza digital colgante y mida la longitud del pie trasero y la longitud total del cuerpo (hasta el milímetro más cercano).
        NOTA: Los ciervos individuales reaccionan de manera diferente a la combinación de fármacos utilizada durante los eventos de sedación, por lo que debe administrar aproximadamente 0,1-0,3 cc de la mezcla de clorhidrato de tiletamina y clorhidrato de xilacina (según la masa corporal de cada ciervo) si un individuo sale de la sedación antes de que finalice la recolección de datos.
    10. Administre cantidades adecuadas según el tamaño de antibiótico, ivermectina, una vacuna contra clostridiosis y una vacuna contra leptospirosis a todos los ciervos después de que sean trasladados al área de recolección de datos (véanse las secciones 1 y 3).
  3. Realice tres mediciones de astas en machos adultos utilizando una cinta métrica para astas mientras el animal está sedado.
    1. Mida la separación interna (distancia más ancha entre las ramas principales), la circunferencia basal (diámetro más pequeño ubicado entre el reborde y la primera punta G1) y la longitud de la rama principal (distancia desde la base del asta hasta la punta de la rama principal) de los astas antes de su extracción.
    2. Extraiga los astas aproximadamente 3 cm por encima del reborde utilizando una sierra de vaivén. No extraiga astas a menos de 3 cm del reborde.

Procedimiento veterinario en vida silvestre que utiliza una herramienta eléctrica para la extracción de astas, método de conservación.
Figura 4: Recolección de Datos de Machos Adultos. Extracción de astas mediante sierra alternativa en un ciervo cola blanca macho adulto en cautiverio. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

  1. Después de recopilar todos los datos del individuo sedado, coloque el ciervo en el corral adecuado y administre ya sea 0,125 mg/kg de clorhidrato de yohimbina28 o 4,0 mg/kg de clorhidrato de tolazolina32 para revertir los efectos del clorhidrato de xilazina. Monitoree a los individuos para asegurarse de que permanezcan en posición esternal hasta que salgan de la sedación y estén completamente alerta.
    NOTA: Si ocurren complicaciones y los animales deben ser sacrificados, entonces la eutanasia mediante dislocación cerebral con un disparador de perno y la sección de la vena yugular son métodos éticos para sacrificar al animal.
  2. Lleve los astas a un área designada para terminar de medir su tamaño.
    1. Mida cada punta individual que sobresale del asta principal (G1, G2, G3, etc.) y los puntos anormales adicionales con ayuda de un alambre.
      NOTA: Los puntos que no tienen un contrapunto correspondiente en el asta principal opuesta o que no son consistentes con la definición de un conjunto típico de astas están definidos por el Boone and Crockett Club33.
    2. Envuelva el alambre alrededor del punto donde la punta intersecta el asta principal y marque ese punto como referencia.
    3. Mida desde este punto de referencia hasta la punta de cada punta y repita para cada una.
    4. Obtenga las mediciones restantes de circunferencia identificando el punto más estrecho entre las puntas G1 y G2 (circunferencia H2), entre las puntas G2 y G3 (circunferencia H3), y entre las puntas G3 y G4 si están presentes (circunferencia H4).
    5. Si la punta G4 no está presente, mida la distancia entre el punto medio de la punta G3 y el extremo del asta principal, y mida la circunferencia H4 en el punto medio.
    6. Realice menos de cuatro mediciones de circunferencia cuando los astas tengan menos de tres puntas.
      NOTA: Por ejemplo, un asta principal con dos puntos típicos incluye solo tres mediciones de circunferencia. Los individuos pueden utilizar otras guías (Safari Club International) para calcular el tamaño de los astas; sin embargo, deben utilizarse métodos consistentes para cada animal para obtener comparaciones válidas.
    7. Después de realizar todas las mediciones, calcule una puntuación de astas similar a la puntuación Boone y Crockett bruta atípica33.
    8. Pese los astas con una precisión de 0,1 g utilizando una balanza digital científica y asigne una masa crítica mínima de 1 g a los animales de primer año con astas más cortas que 3 cm.
  3. Inmovilice químicamente a los juveniles encerrados a una edad aproximada de 5,5 meses utilizando los mismos métodos que para los adultos (sección 4.2) y marque a los juveniles con una etiqueta plástica grande en la oreja (paso 4.1.1).
    1. Utilice las mismas tasas de mezcla de fármacos para inmovilizar a los adultos en cautiverio que las usadas para inmovilizar ciervos silvestres (sección 1).
    2. Recopile las mismas mediciones obtenidas al nacer (paso 4.1.2) y administre los mismos profilácticos que a los adultos (sección 4.2).
      NOTA: Después de recopilar todos los datos, transporte a cada macho juvenil a su instalación satélite asignada aleatoriamente mediante remolque.

5. Producción de descendencia de primera y segunda generación

  1. Clasifique las crías de seis meses de edad capturadas en estado silvestre y la descendencia nacida en las instalaciones de cautiverio a partir de hembras capturadas en estado silvestre como individuos de primera generación.
  2. Durante la temporada de reproducción, coloque dos machos con 7-16 hembras para obtener una proporción sexual promedio de un macho por cada ocho hembras.
    NOTA: Seleccione los machos reproductores de instalaciones satélite basándose en su apariencia física, ya que los machos más sanos (con astas más grandes y mayor tamaño corporal) tienen mayor probabilidad de cubrir a las hembras durante toda la temporada de reproducción sin sufrir lesiones debido al comportamiento agresivo de los machos en esta época.
    1. Permita que los ciervos se reproduzcan únicamente con otros individuos procedentes de la misma región de origen (por ejemplo, machos Delta con hembras Delta, machos Thin Loess con hembras Thin Loess, y machos LCP con hembras LCP).
  3. Clasifique a los ciervos concebidos por padres de primera generación como descendencia de segunda generación. Críe a estos individuos en cautiverio desde su nacimiento y alimente con la misma dieta de alta calidad que reciben sus padres.
    NOTA: Las hembras pueden producir descendencia durante varios años, pero normalmente con sementales diferentes cada año. Recolecte los mismos datos en la descendencia de segunda generación que en los individuos de primera generación y capturados en estado silvestre.

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Resultados

Individual edad, calidad nutricional y genética influyen en fenotipo macho venado de cola blanca. Nuestro diseño del estudio permitió controlar la calidad de los ciervos de nutrición estaban consumiendo y nos permitió identificar la edad de cada ciervo para comparaciones válidas dentro de clases del año. Controlando la nutrición y la edad con nuestro estudio de diseño, mejor pudimos entender si población genética fueron restringiendo el fenotipo de los machos de las poblaciones de estudio...

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Discusión

Hay varios pasos asociados con nuestro protocolo; sin embargo, hay cuatro pasos críticos que deben tomarse para asegurar el éxito con este protocolo. En primer lugar, durante la captura de ciervos salvajes, debe haber varios lugares de captura a lo largo de una región de la fuente (paso 1.1.1). Tener varias ubicaciones captura asegura que cualquier variabilidad genética asociada a la región de la fuente se representará entre ciervos. En segundo lugar, los ciervos deben mantenerse separados por región de origen durante la...

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos al Departamento de Mississippi de la vida silvestre, pesca y parques (MDWFP) apoyo financiero con recursos de la ayuda Federal en la ley de restauración de vida silvestre (W-48-61). Agradecemos a biólogos MDWFP W. McKinley, A. Blaylock, Gary A. y L. Wilf por su amplia participación en la recolección de datos. También agradecemos a S. Tucker como Coordinador de instalaciones y varios estudiantes graduados y técnicos por su ayuda para recogida de datos. Este manuscrito es contribución WFA427 del bosque de la Universidad Estatal de Mississippi y centro de investigación de vida silvestre.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Arnés
soporte
maíz
de tierra
modelo 196Proyector Pneu-Dart, Pensilvania, EE. UU.
Dardos de radiotelemetría de 3cc(Pneu-Dart, Pensilvania, EE. UU.)
Varios tamaños Dardos (Pneu-Dart, Pensilvania, EE.UU.)
Teletamina HCl (Telazol, Fort Dodge Animal Health, Iowa, EE. UU.)
Xilacina HCl (West Texas Rx Pharmacy, Amarillo, Texas, EE. UU.)
Yhoimbine HCl
Tolazoline HCl
Gurney
Estilo Militar
Tela de sombra
ciervo (Purina AntlerMax Criador Profesional de Alta Energía 59UB, Purina, Missouri, EE. UU.)
Comederos
Trébol comercial (Durana Clover, Pennington Seed Co., Georgia, EE. UU.)
Festuca comercial (Max-Q Fescue, Pennington Seed Co., Georgia, EE. UU.)
Mantas
Bolsas de hielo Control de malezas de
hoja ancha (2, 4-DB Herbacide, Butyrac 200)
Control de césped (Poast Herbacide, BASF Co.)
Desparasitante granuladoSafeguard Co., ingrediente activo fenbendazol
Parasite Pour-on Treatment (Ivomec, Merial Co.)
InsecticidaRiptide, McLaughlin Gormley King Co.) 
Marcas auriculares de plástico medianas y grandes (Allflex, Texas, EE. UU.)
Sitio remoto que asignó la paternidadGerente de Soluciones para Animales de DNA Solutions (DNA Solutions, Oklahoma, EE. UU.)
Báscula colgante digital (Moultrie, EBSCO Industries, Inc.) 
Cinta métrica
Clostridium perfringens tipos C y D toxoide esencial 3 (Colorado Serum Co.)
Clostridium perfringens Tipos C y D Antitoxina Origen Equino(Colorado Serum Co.)
Ivermectina en antibiótico de propilenglicol
(Nuflor, Schuering-Plough Animal Health Corp., Nueva Jersey, EE. UU.)
Ivermectina  (Norbrook Labratories, LTD., Down, Irlanda del Norte, Reino Unido)
Vision 7 con SPUR, Ivesco LLC, Iowa, EE. UU.)
Vacuna contra la leptospirosis (Leptoferm-5, Pfizer, Inc., Nueva York, EE. UU.)
Remolque para transporte
Sierra alternativa (DEWALT, Maryland, EE. UU.)
Escala Digital Científica (Global Industrail, Global Equipment Company Inc)
Cinta
Fogger
Etiquetas de plástico para las orejas (Allflex, Texas, EE. UU.)
Etiquetador de orejas de plástico(Allflex, Texas, EE. UU.)
de seguridad de elevado de desgranado ciego 20% Proteína bruta Pellets de de estilo comederoVacuna clostidrial(métrica de asta

Referencias

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  2. Forchhammer, M. C., Clutton-Brock, T. H., Lindstrom, J., Albon, S. D. Climate andpopulation density induce long-term cohort variation in a northern ungulate. J Anim Ecol. 70 (5), 721-729 (2001).
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