Protocolo para la evaluación de los efectos relativos de medio ambiente y la genética en el asta y el crecimiento del cuerpo para una larga vida cérvidos

Summary

Diferencias fenotípicas entre las poblaciones de cérvidos pueden estar relacionados con genética de la población o nutrición; discerniendo que es difícil en la naturaleza. Este protocolo describe cómo se diseñó un estudio controlado donde se eliminó la variación nutricional. Encontramos que variación fenotípica de venado de cola blanca del hombre más fue limitado por la nutrición que genética.

Abstract

Fenotipo de cérvidos puede colocarse en una de dos categorías: eficacia, que promueve la supervivencia crecimiento morfométrico extravagantes y lujo, que promueve el crecimiento del cuerpo y armas de gran tamaño. Las poblaciones de una misma especie muestran cada fenotipo dependiendo de las condiciones ambientales. Aunque tamaño cuerno y cuerpo de hombre venado cola blanca (Odocoileus virginianus) varía según la región fisiográfica en Mississippi, Estados Unidos y esta fuertemente correlacionado con la variación regional en calidad nutricional, los efectos de la genética de población de las poblaciones nativas y los esfuerzos de re-stocking anteriores no pueden tenerse en cuenta. Este protocolo describe cómo se diseñó un estudio controlado, donde se controlan otros factores que influyen en el fenotipo, como la edad y la nutrición. Llevamos capturados hembras y cervatillos de seis meses de tres regiones fisiográficas distintas en Mississippi, Estados Unidos a la Mississippi estado oxidado Dawkins Memorial ciervos unidad de la Universidad. Ciervos de la misma región fueron criados para producir una segunda generación de crías, lo que nos permite evaluar las respuestas generacionales y efectos maternos. Ciervos de todos comieron la misma calidad (20% de proteína cruda ciervos de la pelotilla) dieta ad libitum. Únicamente había marcado a cada recién nacido y registrado pie de masa, traseras de cuerpo y longitud de cuerpo total. Cada caída posterior, sedado personas mediante inyección remota y muestra el mismo morfometría plus las cornamentas de los adultos. Se encontró que todos morfometría aumentó en tamaño de primera a segunda generación, con compensación total de tamaño de la cornamenta (variación regional no presente) y una compensación parcial de la masa del cuerpo (algunas pruebas de variación regional) evidente en la segunda generación. Segunda generación de machos que originaron de la peor calidad suelo región muestra un aumento de 40% en el tamaño de la cornamenta y un aumento de 25% en la masa corporal en comparación con sus contrapartes silvestres cosechadas. Nuestros resultados sugieren que la variación fenotípica de salvaje macho venado cola blanca en Mississippi están más relacionados con las diferencias en calidad nutricional que la genética de la población.

Introduction

Factores ambientales, que experiencias de una madre durante la gestación y la lactancia pueden influir en fenotipo de su descendencia, independiente del genotipo^1,2,3. Las madres que habitan en ambientes de alta calidad probablemente producirá crías que presentan un fenotipo de lujo (gran cornamenta y cuerpo tamaño⁴), mientras que las madres que habitan en un entorno de baja calidad pueden producir crías que presentan un fenotipo de eficiencia (pequeños cuernos y cuerpo tamaño⁴). Por lo tanto, persistir en un entorno de alta calidad puede permitir que una madre producir descendencia masculina con grandes características fenotípicas, que pueden influir directamente en oportunidades reproductivas^{5,6,7,8 de la descendencia} e indirectamente influir en la aptitud inclusiva de la madre.

Aunque la nutrición influye directamente en las características fenotípicas a través de taxa (americanus de Ursus, arctos de Ursus⁹; FuscusI Mackloti ¹⁰; Larus michahellis ¹¹), varios factores pueden afectar fenotipos de venado cola blanca en Mississippi, Estados Unidos. Tamaño de la cornamenta y el cuerpo son un tercio más grande para algunas poblaciones en comparación con otros¹². Esta variación se correlaciona fuertemente con forraje calidad^13,14; los machos más grandes se encuentran en áreas con la mayor calidad de forraje. Sin embargo, los esfuerzos de restauración histórica de venado cola blanca en Mississippi puedan haber llevado a los cuellos de botella genéticos o fundador efectos^15,16, que puede explicar también parte de la variación regional observada en fenotipo de venado cola blanca.

Proporcionamos el protocolo que utilizamos para el control de calidad nutricional de los capturados venado cola blanca, que nos permitió evaluar si fenotipo masculino está limitada por la genética de la población. Este protocolo también nos permitió evaluar si quedando efectos maternos estaban presentes en nuestras poblaciones. Nuestro diseño controlado es preferente a los estudios realizados en poblaciones que van gratis, que se limitan a usar las variables ambientales como un proxy para restricción nutricional^3,17. Nuestro diseño controlado permite también otras variables como potencial crónico estrés social relacionados con interacciones a mantenerse constante todos los individuos son sometidos a viviendas similares y las prácticas de cría. Además, porque la nutrición influye directamente en otros aspectos de la historia de la vida desde reproducción hasta supervivencia^18,19, control de la nutrición permite investigadores evaluar otras variables que afectan aspectos de la historia de la vida mamífera. Protocolos similares se han descrito para evaluar cuestiones relacionadas con aspectos de la historia de la vida de otros ungulados en América del norte (e.g., ^20,21).

Protocol

Declaración de Ética: El Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad Estatal de Mississippi aprobó todas las técnicas de captura, manejo y marcaje bajo los protocolos 04-068, 07-036, 10-033 y 13-034.

1. Establecer sitios de captura, inmovilizar y transportar venados de cola blanca salvajes

1. Identifique las propiedades públicas y privadas que están inscritas en el Programa de Asistencia para el Manejo de Venados²² y establezca ≥29 sitios de captura en tres regiones de origen en Mississippi, EE. UU.
   1. Identifique varios lugares de captura dentro de cada región de origen para garantizar que se capture el rango de variación genética presente en la población regional.
   2. Nota: Aquí, las regiones de origen incluyeron el Delta, que comprende casi el 17% de la superficie total de la tierra en Mississippi, EE. UU., y se considera una región de suelo de alta calidad con la agricultura como uso principal de la tierra^23,24. Todos los animales de estudio fueron capturados en esta región dentro de la distribución de O. v. virginianus²⁵. Otras regiones incluyeron la región de Loess delgado (Loess delgado superior e inferior combinados), que comprende casi el 14% de la superficie total de tierra en Mississippi, EE. UU. y se considera una región de suelo de calidad media. La agricultura también es un uso primario de la tierra en la región de Thin Loess, aunque no tan frecuente como en el Delta^23,24. Todos los animales de estudio fueron capturados en esta región dentro de la distribución de O. v. virginianus²¹. Por último, la región de suelo de la llanura costera inferior (LCP) comprende casi el 22% de Mississippi y está clasificada como una región de suelo de baja calidad. Los principales usos de la tierra en el LCP son la producción de madera de pino y el pastoreo de ganado^23,24. El LCP también se superpone a la distribución geográfica de O. v. osceola; cuatro de las seis poblaciones de origen estaban dentro de los 21 km de esta distribución²⁵. Esta subespecie fue descrita como más pequeña que O. v. virginianus²⁶.

Figura 1: Poblaciones de origen. Regiones fisiográficas donde se capturaron madres preñadas y cervatillos en Mississippi, EE. UU. Esta cifra ha sido modificada de reference³¹. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

2. Seleccionar sitios potenciales de captura que cumplan con los siguientes criterios: características del hábitat propicias para el movimiento de los ciervos, proximidad a caminos de acceso y distribución en el área de estudio.
   NOTA: Los sitios de captura deben permitir la ocultación del técnico de captura.
   1. Sitios de cebo con unos 10 kg de maíz sin cáscara para atraer a los ciervos a visitar y evaluar el uso en función del consumo de cebo y de los ciervos fotografiados por cámaras sensibles al movimiento. Traslade a sitios alternativos si los ciervos no asisten a los sitios cebados dentro de los 5 a 7 días.
3. Durante los eventos de captura, siéntese en un "estrado" oculto.
   1. Colóquese a unos 20 m a sotavento de la pila de cebo, teniendo en cuenta la dirección del viento predominante para que los ciervos que se acerquen al cebo puedan oler menos al técnico de captura.
      NOTA: Se prefieren los soportes elevados y se requieren arneses de seguridad. Hay varias variaciones de soportes con una variedad de fuentes comerciales y el uso varía según las preferencias personales. Por ejemplo, un soporte de bloqueo incluiría asientos con una escalera de acceso unida a un árbol con correas. Los soportes de escalada portátiles pueden ser transportados por el técnico de captura y permiten una mayor movilidad, ya que el técnico puede elegir un árbol específico una vez que llega al sitio de captura. Los soportes de escalada portátiles están limitados a su uso en árboles rectos sin ramas hasta la altura elegida.
4. Utilice una pistola de dardos junto con un dardo de radiotelemetría de 3 cc para administrar una mezcla de HCl de teletamina (4,4 mg/kg) y HCl de xilacina (2,2 mg/kg).
   1. Programe los esfuerzos de captura para que coincidan con el ciclo de actividad crepuscular típico de los ciervos²⁷. Comience cada intento de captura 2-3 horas antes de la puesta del sol.
   2. Continúe capturando eventos durante 2-3 horas después de la puesta del sol usando gafas de visión nocturna y un láser de punto rojo para la colocación de disparos si los ciervos no se capturan durante el día.
   3. Dispare a los ciervos cuando estén de costado y parados.
      NOTA: El cuarto trasero del ciervo es el objetivo porque tiene un tejido muscular significativo y se encuentra lejos del corazón y los pulmones.
   4. Espere unos 15 minutos para que los animales objetivo lanzados (cervatillos de seis meses de edad de ambos sexos o hembras adultas preñadas) estén completamente inmovilizados antes de localizarlos con un equipo de radiotelemetría direccional.
   5. Confirme que las personas están sedadas verificando los reflejos oculares (parpadeo). A continuación, aplique un ungüento oftálmico en los ojos y venda los ojos de los ciervos para reducir el estrés.
      NOTA: La pérdida de termorregulación es una consecuencia de la inmovilización.
   6. Use un termómetro rectal para evaluar la temperatura corporal después de la recuperación. Calentar a los ciervos con mantas térmicas si la temperatura del animal es inferior a 37,7 °C. Enfriar a los ciervos con bolsas de hielo si la temperatura del animal es superior a 40,0 °C.
   7. Coloque a los ciervos en posición esternal en una camilla de estilo militar y transpórtelos desde el lugar de captura hasta un remolque cerrado.
   8. Después de colocar al ciervo en el remolque, invierta los efectos de la xilacina HCl con 0,125 mg/kg de yohimbina HCl²⁸.
   9. Transportar todos los ciervos capturados a la instalación de cautiverio deseada (por ejemplo, la Unidad de Ciervos Rusty Dawkins Memorial de la Universidad Estatal de Mississippi; MSU Deer Unit) y manténgalos separados por región de origen.

2. Instalaciones en cautividad y prácticas generales de cría de animales de investigación

NOTA: La Unidad de Ciervos de MSU se subdivide en cinco corrales de 0,4 a 0,8 ha.

1. Cubra cada lado de cada bolígrafo con un paño de sombra para que actúe como una barrera visual y física entre los bolígrafos. La tela de sombra ayuda a reducir las lesiones y proporciona sombra durante los meses de verano.
2. Coloque 1-2 persianas de caja elevadas en un extremo de cada corral para facilitar los eventos de lanzamiento durante la recopilación de datos.
3. Coloque dos comederos tipo comedero en extremos separados de cada corral para reducir la competencia por la comida entre los ciervos. También proporcione un bebedero en cada corral.
4. Proporcionar a los ciervos una dieta de alta calidad (20% de pellets de ciervo de proteína bruta) ad libitum.
   NOTA: Aquí, se incluyen forrajes adicionales disponibles dentro de los corrales (Trifolium spp) y festuca (Festuca spp) junto con pastos y hierbas voluntarias.
5. Si están presentes, mantenga los forrajes disponibles dentro de los corrales utilizando una mezcla de herbicidas para controlar las malezas de hoja ancha y los pastos utilizando las dosis de mezcla que se encuentran en las etiquetas respectivas><. NOTA: Es probable que sea necesario usar instalaciones fuera del campus para albergar a hombres de ≥5.5 meses de edad. Estas instalaciones consistían en dos corrales de 0,7 ha en cada una de las tres propiedades con prácticas de cría similares a la Unidad de Ciervos de MSU.

Figura 2: Ubicaciones de instalaciones cautivas. Área de estudio donde se ubicaron las instalaciones satélite y la Unidad de Venados de la Universidad Estatal de Mississippi (MSU). Las áreas sombreadas indican los condados de Oktibbeha (A), Noxubee (B), Attala (C), Scott (D) y Copiah (E), Mississippi, EE. UU. Esta figura ha sido modificada de reference³⁴. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

3. Control de parásitos y enfermedades

1. Monitoree los animales de investigación para detectar parásitos de lombrices intestinales (Strongyloides spp) utilizando la flotación fecal con parásitos medidos como huevos por gramo (EPG).
   1. Si está presente en niveles altos, proporcione control de parásitos mediante la administración de un desparasitante granulado (ingrediente activo fenbendazol) a una tasa de aproximadamente 0,77 kg de desparasitante granulado por 22,7 kg de alimento durante el mes de mayo.
   2. Si los niveles de parásitos permanecen altos después del tratamiento inicial, utilice un tratamiento de vertido de ivermectina (5 mg/mL)²⁹, mezclado a una tasa de 2 mL/0,45 kg y administre a los animales a una tasa de 0,45 kg de alimento tratado por 45,4 kg de masa animal.
      NOTA: La enfermedad hemorrágica epizoótica es a veces una enfermedad viral letal transmitida por un mosquito picador (Culicoides spp) durante los meses de verano y otoño. Si está presente, trate el centro de investigación con insecticida (insecticida de volumen ultrabajo al 5%) 2-3 veces por semana desde el 1 de julio hasta el 1 de octubre para disminuir la prevalencia de los vectores entre los animales de investigación. Rocíe este insecticida dentro de cada corral y alrededor del perímetro de la instalación unos 90 minutos antes de la puesta del sol oficial a través de un nebulizador. Los métodos preferidos para el control de parásitos y enfermedades son únicos para cada instalación en cautiverio. Se debe consultar a los veterinarios durante cualquier investigación sobre la vida silvestre en cautiverio para garantizar la salud y la seguridad de los animales.

4. Recopilación de datos

Figura 3: Recopilación de datos de cervatillos recién nacidos. Midiendo la longitud de la pata trasera de un cervatillo recién nacido en la Unidad de Ciervos Rusty Dawkins Memorial de la Universidad Estatal de Mississippi en el condado de Oktibbeha, Mississippi, EE. UU. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

1. Busque cervatillos en las instalaciones de cautiverio diariamente durante la temporada de parto.
   1. Marque de manera única a los cervatillos recién nacidos con marcas auriculares de plástico medianas utilizando un marcador de orejas con antibiótico aplicado en el extremo masculino de la etiqueta para prevenir una posible infección. Coloque la marca en la oreja alrededor del centro de la oreja del cervatillo.
   2. Mida la masa corporal (más cercana a 0,01 kg) con una báscula digital para colgar y mida la longitud de la pata trasera y la longitud total del cuerpo (mm más cercano).
   3. Recoja muestras de cabello y envíelas a un sitio remoto para la asignación de paternidad (consulte la Tabla de Materiales).
      NOTA: La asignación de parentesco se realizó utilizando ADN basado en una base de datos de lenguaje de consulta estructurado personalizado, no estadístico y patentada. En la comparación de alelos por pares, el sitio de asignación de parentesco remoto asignó parentesco cuando excluyó a todos menos a un padre y una madre en función de un alelo compartido de cada padre en todos los loci evaluados (B. G. Cassidy, comunicación personal). Este método de asignación de parentesco también se utilizó en investigaciones previas realizadas en ciervos de cola blanca en cautiverio^30,31.
   4. Administrar 2 cc de toxoide Clostridium perfringens tipos C y D y antitoxina Clostridium perfringens tipos C y D por vía subcutánea y administrar 0,3 cc/kg de ivermectina en propilenglicol (Escuela de Veterinaria de la Universidad Estatal de Mississippi, Mississippi, EE.UU.) por vía oral a cada cervatillo.
2. Inmovilizar químicamente a los varones adultos (≥1,5 años) durante los meses de octubre y noviembre para la recolección de datos.
   1. Inmovilice a los adultos encerrados usando la misma combinación de HCl de teletamina y HCl de xilacina que se usa para la captura de animales silvestres (paso 1.4).
   2. Durante los eventos de sedación, camine con el técnico que se lanzará hacia el extremo del corral donde se encuentran las persianas elevadas. Tener un solo técnico en cada una de las dos persianas.
   3. Haga que la persona que acompañó al técnico a la persiana camine de regreso al extremo opuesto del corral.
      NOTA: Los ciervos se alejan de estos técnicos y se ubican frente a las persianas donde los técnicos están en posición de tomar tiros éticos a cada ciervo.
   4. Dispare a los ciervos cuando estén de costado e inmóviles (sección 1.4).
   5. Espere unos 15 minutos para que los animales lanzados a los dardos estén completamente inmovilizados antes de acercarse.
   6. Confirme que las personas están sedadas verificando los reflejos oculares (parpadeo). Aplique ungüento oftálmico en los ojos y venda los ojos de los ciervos para reducir el estrés.
   7. Después de que los dardos seden con éxito a un ciervo individual, controle las tasas vitales de los ciervos.
      1. Use un termómetro rectal para evaluar la temperatura corporal después de la recuperación. Calentar a los ciervos con mantas térmicas si la temperatura del animal es inferior a 37,7 °C. Enfriar a los ciervos con bolsas de hielo si la temperatura del animal es superior a 40,0 °C.
   8. Cargue al ciervo en una camilla de estilo militar y transpórtelo en un vehículo utilitario a un área de recolección de datos predeterminada.
   9. Una vez transportado, registre las mismas medidas morfométricas registradas al nacer (paso 4.1).
      1. Mida la masa corporal (0,01 kg más cercanos) con una báscula colgante digital y mida la longitud de la pata trasera y la longitud corporal total (mm más cercana).
         NOTA: Los ciervos individuales reaccionan de manera diferente a la combinación de medicamentos utilizados durante los eventos de sedación, por lo que administre aproximadamente 0,1-0,3 cc de la mezcla de HCl de teletamina y xilacina HCl (dependiendo de la masa corporal de un ciervo individual) si un individuo sale de la sedación antes de que se complete la recopilación de datos.
   10. Administre cantidades adecuadas de antibiótico, ivermectina, una vacuna clostidrial y una vacuna contra la leptospirosis a todos los ciervos después de que sean transportados a la zona de recogida de datos (véanse las secciones 1 y 3).
3. Tome tres medidas de la cornamenta de los machos adultos con una cinta métrica de asta mientras el animal está sedado.
   1. Mida la dispersión interior (la distancia más amplia entre las vigas principales), la circunferencia basal (el diámetro más pequeño ubicado entre la rebaba y la púa G1) y la longitud del haz principal (distancia desde la base de la cornamenta hasta la punta de la viga principal) de las astas antes de la extracción de la cornamenta.
   2. Retire las astas unos 3 cm por encima de la rebaba con una sierra recíproca. No retire las astas de menos de 3 cm.

Figura 4: Recopilación de datos de machos adultos. Extracción de la cornamenta mediante sierra recíproca de un ciervo cola blanca macho adulto en cautiverio. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

4. Después de recoger todos los datos de la persona sedada, coloque al ciervo en el corral adecuado y administre 0,125 mg/kg de yohimbina HCl²⁸ o 4,0 mg/kg de tolazolina HCl³² para revertir los efectos de la xilacina HCl. Vigile a las personas para asegurarse de que permanezcan en posición esternal hasta que salgan de la sedación y estén completamente alerta.
   NOTA: Si ocurren complicaciones y los animales deben ser sacrificados, entonces la eutanasia por dislocación cerebral a través de un aturdidor de perno y el corte de la vena yugular son medios éticos para despachar al animal.
5. Lleve la cornamenta a un área designada para terminar de medir el tamaño de la cornamenta.
   1. Mida cada púa individual que sobresale de la viga principal (G1, G2, G3, etc.) y los puntos anormales adicionales con la ayuda de un alambre.
      NOTA: Los puntos que no tienen una contraparte coincidente en la viga principal opuesta o que no son consistentes con la definición de un juego de astas típico se definen mediante el Boone and Crockett Club³³.
   2. Enrolle el cable alrededor de donde la púa se cruza con la viga principal y marque ese punto como referencia.
   3. Mida desde este punto de referencia hasta la punta de la púa y repita para cada púa.
   4. Recopile las mediciones de circunferencia restantes identificando el punto más pequeño entre las púas G1 y G2 (circunferencia H2), las púas G2 y G3 (circunferencia H3) y las púas G3 y G4 si están presentes (circunferencia H4).
   5. Si la púa G4 no está presente, mida la distancia entre el punto medio de la púa G3 y el extremo de la viga principal y mida la circunferencia H4 en el punto medio.
   6. Mida menos de cuatro circunferencias cuando las astas contengan menos de tres dientes.
      NOTA: Por ejemplo, un haz principal con dos puntos típicos incluye solo tres medidas de circunferencia. Las personas pueden usar otras pautas (Safari Club International) para calcular el tamaño de la cornamenta; sin embargo, se deben utilizar métodos consistentes para cada animal para que la comparación sea válida.
   7. Después de realizar todas las mediciones, calcule una puntuación de cornamenta similar a la puntuación bruta atípica de Boone y Crockett³³.
   8. Pesar la cornamenta con una precisión de 0,1 g utilizando una báscula digital científica y asignar una masa crítica mínima de 1 g para los animales de primer año con cornamenta inferior a 3 cm.
6. Inmovilizar químicamente a los juveniles encerrados aproximadamente a los 5,5 meses de edad utilizando los mismos métodos para los adultos (sección 4.2) y marcar a los juveniles con una marca auricular de plástico grande (paso 4.1.1).
   1. Utilizar las mismas dosis de mezcla de fármacos para inmovilizar a los adultos en cautividad que se utilizan para inmovilizar a los ciervos salvajes (sección 1).
   2. Recoja las mismas medidas recogidas al nacer (paso 4.1.2) y administre los mismos profilácticos que los adultos (sección 4.2).
      NOTA: Después de que se hayan recopilado todos los datos, transporte a cada macho juvenil a su instalación satélite asignada al azar a través de un remolque.

5. Producción de descendencia de primera y segunda generación

1. Clasificar los cervatillos de seis meses de edad capturados en el medio silvestre y las crías nacidas en la instalación en cautiverio de madres capturadas en el medio silvestre como individuos de primera generación.
2. Durante la temporada de reproducción, coloque dos machos con 7-16 hembras para una proporción promedio de sexos reproductivos de un macho por cada ocho hembras.
   NOTA: Seleccione los machos reproductores de las instalaciones satélite en función de la apariencia física, porque los machos más sanos (cornamenta y tamaño corporal más grandes) tienen más probabilidades de atender a las hembras durante la totalidad de la temporada de reproducción sin sufrir lesiones debido a la naturaleza agresiva de los machos durante la temporada de reproducción.
   1. Solo permita que los ciervos se reproduzcan con otros individuos de la misma región de origen (por ejemplo, los machos del Delta crían hembras del Delta, los machos de Loess delgado crían hembras de Loess delgado y los machos LCP crían machos LCP).
3. Clasificar a los ciervos concebidos por padres de primera generación como crías de segunda generación. Cría a estos individuos en cautiverio desde su nacimiento y aliméntalos con la misma dieta de alta calidad que sus padres.
   NOTA: Las hembras pueden producir descendencia durante varios años, pero generalmente con diferentes sementales cada año. Recopilar los mismos datos sobre la descendencia de segunda generación que los recopilados sobre los individuos de primera generación y los capturados en el medio silvestre.

Results

Individual edad, calidad nutricional y genética influyen en fenotipo macho venado de cola blanca. Nuestro diseño del estudio permitió controlar la calidad de los ciervos de nutrición estaban consumiendo y nos permitió identificar la edad de cada ciervo para comparaciones válidas dentro de clases del año. Controlando la nutrición y la edad con nuestro estudio de diseño, mejor pudimos entender si población genética fueron restringiendo el fenotipo de los machos de las poblaciones de estudio...

Discussion

Hay varios pasos asociados con nuestro protocolo; sin embargo, hay cuatro pasos críticos que deben tomarse para asegurar el éxito con este protocolo. En primer lugar, durante la captura de ciervos salvajes, debe haber varios lugares de captura a lo largo de una región de la fuente (paso 1.1.1). Tener varias ubicaciones captura asegura que cualquier variabilidad genética asociada a la región de la fuente se representará entre ciervos. En segundo lugar, los ciervos deben mantenerse separados por región de origen durante la...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
Arnés
soporte
maíz
de tierra
modelo 196	Proyector Pneu-Dart, Pensilvania, EE. UU.
Dardos de radiotelemetría de 3cc	(Pneu-Dart, Pensilvania, EE. UU.)
Varios tamaños Dardos	(Pneu-Dart, Pensilvania, EE.UU.)
Teletamina HCl	(Telazol, Fort Dodge Animal Health, Iowa, EE. UU.)
Xilacina HCl	(West Texas Rx Pharmacy, Amarillo, Texas, EE. UU.)
Yhoimbine HCl
Tolazoline HCl
Gurney
Estilo Militar
Tela de sombra
ciervo	(Purina AntlerMax Criador Profesional de Alta Energía 59UB, Purina, Missouri, EE. UU.)
Comederos
Trébol comercial	(Durana Clover, Pennington Seed Co., Georgia, EE. UU.)
Festuca comercial	(Max-Q Fescue, Pennington Seed Co., Georgia, EE. UU.)
Mantas
Bolsas de hielo Control de malezas de
hoja ancha (2, 4-DB Herbacide, Butyrac 200)
Control de césped	(Poast Herbacide, BASF Co.)
Desparasitante granulado	Safeguard Co.,		ingrediente activo fenbendazol
Parasite Pour-on Treatment	(Ivomec, Merial Co.)
Insecticida	Riptide, McLaughlin Gormley King Co.)
Marcas auriculares de plástico medianas y grandes	(Allflex, Texas, EE. UU.)
Sitio remoto que asignó la paternidad	Gerente de Soluciones para Animales de DNA Solutions (DNA Solutions, Oklahoma, EE. UU.)
Báscula colgante digital	(Moultrie, EBSCO Industries, Inc.)
Cinta métrica
Clostridium perfringens tipos C y D toxoide esencial 3	(Colorado Serum Co.)
Clostridium perfringens Tipos C y D Antitoxina Origen Equino	(Colorado Serum Co.)
Ivermectina en antibiótico de propilenglicol
	(Nuflor, Schuering-Plough Animal Health Corp., Nueva Jersey, EE. UU.)
Ivermectina	(Norbrook Labratories, LTD., Down, Irlanda del Norte, Reino Unido)
	Vision 7 con SPUR, Ivesco LLC, Iowa, EE. UU.)
Vacuna contra la leptospirosis	(Leptoferm-5, Pfizer, Inc., Nueva York, EE. UU.)
Remolque para transporte
Sierra alternativa	(DEWALT, Maryland, EE. UU.)
Escala Digital Científica	(Global Industrail, Global Equipment Company Inc)
Cinta
Fogger
Etiquetas de plástico para las orejas	(Allflex, Texas, EE. UU.)
Etiquetador de orejas de plástico	(Allflex, Texas, EE. UU.)