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Artículo de método

Tirando de nanotubos de membrana de las vesículas unilaminar gigante

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DOI:

10.3791/56086

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7 de diciembre de 2017

 ,  ,  , 

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Muchas proteínas en la célula de sensación e inducen curvatura de la membrana. Se describe un método para nanotubos de membrana de las vesículas de lípidos para el estudio de la interacción de proteínas o cualquier molécula activa de curvatura con membranas curvo in vitro.

Resumen

La remodelación de la membrana celular es una parte integral de muchos fenómenos celulares, como la endocitosis, trata de personas, la formación de filopodios, etcetera. Muchas proteínas diferentes se asocian con membranas curvadas debido a su capacidad para sentir o inducir la curvatura de la membrana. Por lo general, estos procesos implican una multitud de proteínas haciéndolos demasiado complejo para estudiar cuantitativamente en la célula. Se describe un protocolo para la reconstitución de una membrana curvada en vitro, imitando una estructura celular curva, como el cuello endocítico. Una vesícula unilaminar gigante (GUV) se utiliza como un modelo de una membrana celular, cuya presión interna y tensión superficial son controlado con la aspiración de la micropipeta. Aplicación de una fuerza de tracción de punto en el GUV usando pinzas ópticas crea un nanotubo de alta curvatura conectado a una membrana plana. Este método se ha utilizado tradicionalmente para medir las propiedades mecánicas fundamentales de las membranas de lípidos, como la rigidez de flexión. En los últimos años se ha ampliado para estudiar cómo las proteínas interactúan con la curvatura de la membrana y la forma en que afectan la forma y la mecánica de las membranas. Un sistema que combina la micromanipulación, microinyección, pinza óptica y microscopía confocal permite medición de la curvatura de la membrana, membrana tensión y la densidad superficial de las proteínas, al mismo tiempo. De estas mediciones, se pueden deducir muchas propiedades mecánicas y morfológicas importantes sistema de proteínas de la membrana. Además, nos pone a un protocolo de creación 2.fino en presencia de concentraciones fisiológicas de sal y un método de cuantificación de la densidad superficial de las proteínas en la membrana de intensidades de fluorescencia de etiquetado proteínas y lípidos.

Introducción

Muchos procesos celulares, tales como endocitosis, trata de personas, la formación de filopodios, infección, etc., se acompañan de un cambio drástico en la forma de las membranas celulares1,2. En la célula, una serie de proteínas participa en estos procesos por Unión a la membrana y alterar su forma. Los ejemplos más notables son los miembros de la familia de proteínas Amphiphysin/Bin/Rvs (BAR), que contiene una característica intrínsecamente curvada barra dominio3,4,5,6

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Protocolo

1. preparación de 2.fino por Electroformation en los cables de la pinta

  1. Limpiar la cámara de electroformation (ver Introducción y figura 1A) y Pt-alambres con un disolvente orgánico como etanol o acetona para eliminar los lípidos y con agua para lavar las sales.
    Nota: Le sugerimos fondo enjugando el residuo con tejido impregnado de etanol entonces sonicando en acetona, etanol, agua, cada 5 minutos.
  2. Preparar una mezcla de lípidos de una composición de lípidos deseada en 1 mg/mL en cloroformo. La mezcla debe contener ~ 0,05% fracción molar de un lípido conjugado con biotina (p. ej., 1,2-diste....

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Resultados

El experimento de tirar tubo puede dar información vital mecánica sobre la membrana. En la ausencia de proteínas u otras moléculas que la fuerza de la pareja con la curvatura de la membrana, la membrana y radio del tubo puede tener relación con la tensión de membrana aplicando el hamiltoniano Canham-Helfrich ecuación a un tubo tiró de un GUV50,51

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Discusión

El método de tirar tubos de 2.fino proporciona rica información sobre el sistema de la proteína de la membrana, no sólo los medios para medir las propiedades mecánicas fundamentales de la membrana, pero ayuda a arrojar luz sobre el acoplamiento entre las proteínas y membrana curvatura. Como comentamos en la introducción, existen otras técnicas para medir los efectos de las proteínas de membrana curva, incubando las proteínas con liposomas de sub-micron anclados a una superficie pasivada18,

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Los autores agradecen a Benoit Sorre, Damien Cuvelier, Pierre Nassoy, François Quemeneur y Gil Toombes por sus contribuciones esenciales para establecer el método de nanotubos en el grupo. El grupo de P.B. pertenece al consorcio CNRS CellTiss, el Labex CelTisPhyBio (ANR-11-LABX0038) y a las Ciencias de París et Lettres (ANR-10-IDEX-0001-02). C. F. Tsai fue financiado por los EMBO compañerismo a largo plazo (ALTF 1527-2014) y las acciones Marie Curie (H2020-MSCA-IF-2014, proyecto membrana-ezrin-actina). M.S. es un Junior Fellow de la sociedad de becarios de Simons.

....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
1,2-dioleoil-sn-glicero-3-fosfatidilcolina (DOPC)Avanti850375Ejemplo de lípido utilizado en los datos de la Figura 3
1,2-distearoyl-sn-glicero-3-fosfoetanolamina-N-[biotinil(polietilenglicol)-2000] [DSPE-PEG(2000)-biotina]Avanti880129lípido biotinilado
BODIPY-TR-C5-ceramidaSondas moleculares (ThermoFisher)D7540lípido fluorescente
BODIPY- FLC5-hexadecanoyl fosfatidilcolina (HPC*)Sondas moleculares (ThermoFisher)Lípido fluorescente para la calibración
de proteínas huevo L-&alfa;-fosfatidilcolina (eggPC)Avanti840051utiliza para calibrar la constante de radio del tubo
β-caseína de la leche bovina (>99%)Sigma AldrichC6905utilizado para pasivar la micropipeta y el cámara experimental
SacarosaSigma AldrichS7903
D(+) glucosaSigma AldrichG7021
NaClSigma AldrichS7653
TrisSigma Aldrich
Losern/a
Pt-hilos, 0,5 mm de diámetro, 99,99% puroGoodfellow USAPT005139utiliza para
generadorn/autilizado para crear corriente para
sellador de masilla de electroformaciónVitrex (de CML Francia)CRIT 140013utiliza para sellar la cámara de electroformación
baño sonicadorn/aútil para limpiar la cámara de electroformación, pero no crucial
Microscopio invertido Nikon TE2000, sistema confocal eC1 (Nikon), con dos líneas láser (λ = 488 nm y 543 nm); pinzas ópticas inducidas por un láser de onda continua de fibra de iterbio de 5 W (λ > 1070 nm; IPG GmBH Alemania)un ejemplo de un sistema de microscopía confocal equipado con pinzas ópticas
micromanipuladoresn/a
capilares de borosilicato (con radios internos y externos de 0,78 mm y 1 mm, respectivamente)Harvard apparatus30-0036
extractor de micropipetasSutter InstrumentP-2100
microforgeNarishigeMF-800
Physik Instrumenten/a
perlas recubiertas de poliestireno estreptavidina (diámetro 3,2 y micro; m)SpherotechSVP-30-5
de la densidad Osmómetro 10708976001 el de función de electroformación GUV el GUV Actuador piezoeléctrico

Referencias

  1. McMahon, H. T., Gallop, J. L. Membrane curvature and mechanisms of dynamic cell membrane remodelling. Nature. 438 (7068), 590-596 (2005).
  2. Johannes, L., Wunder, C., Bassereau, P. Bending "on the rocks"--a cocktail of biophysical modules to build e....

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