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Artículo de método

Microinyección de la proteína CRISPR/Cas9 en bagre de canal, Ictalurus punctatus, embriones de Gene Editing

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DOI:

10.3791/56275

20 de enero de 2018

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Se presenta un protocolo de microinyección simple y eficiente para la edición de genes en embriones de bagre de canal usando el sistema CRISPR/Cas9. En este protocolo, guía RNAs y proteínas Cas9 fueron microinyectados en la yema de una célula de embriones. Este protocolo ha sido validada por la anulación de dos genes relacionados con la inmune de bagre de canal.

Resumen

Se ha secuenciado el genoma completo del bagre de canal, Ictalurus punctatus, conduciendo a mayores oportunidades para estudiar la función genética de bagre de canal. Golpe de gracia del gene se ha utilizado para el estudio de estos genes funciones en vivo. El cluster regularmente otro proteínas cortas repeticiones palindrómico/CRISPR asociado 9 (CRISPR/Cas9) el sistema es una potente herramienta para editar secuencias genómicas de ADN para alterar la función génica. Mientras que el enfoque tradicional ha sido introducir CRISPR/Cas9 mRNA en los embriones de la célula a través de microinyección, esto puede ser un proceso lento e ineficiente en el bagre. Aquí, se describe un protocolo detallado para microinyección de embriones de bagre de canal con CRISPR/Cas9 proteína. Brevemente, óvulos y espermatozoides fueron recogida y luego artificial fertilización realizada. Los huevos fertilizados se transfirieron a una placa de Petri que contenga solución de Holtfreter. Volumen de inyección fue calibrado y luego guía RNAs/Cas9 dirigido a los toll/interleukin-1 dominio-que contienen adaptador (TICAM 1) de la molécula del gene del receptor y ramnosa Unión lectina (RBL) gene fueron microinyectados en la yema de los embriones de una célula. El golpe de gracia del gene era acertado como indels fueron confirmados por secuenciación del ADN. Las alteraciones de la secuencia de la proteína prevista debido a estas mutaciones incluyen mutágeno ' frameshift ' y truncarán de la proteína debido a codones de parada prematura.

Introducción

Microinyección es una técnica de laboratorio común utilizada para entregar una pequeña cantidad de una sustancia tales como DNA, RNA, proteínas y otras macromoléculas en células o embriones a través de un capilar de vidrio1. Microinyección se realiza mediante la instalación de equipos especiales incluyendo un microinyector, instrumental quirúrgico y un microscopio2. La técnica se ha utilizado por los investigadores para modificar genéticamente muchos organismos a través de la generación de transgénicos, knockouts de genes y terapia genética, con el objetivo de comprender la dinámica de componentes intracelulares

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Protocolo

Este experimento se llevó a cabo en la unidad de investigación de genética de peces, centro de investigación de pesquerías de E. W. Shell, Universidad de Auburn, Alabama. Todos los protocolos experimentales utilizados en este experimento fueron aprobados por la Universidad de Auburn institucional Animal Care y Comité uso (IACUC-AU) antes de inicia el experimento. Una lista de la maquinaria y equipo utilizado en este experimento puede encontrarse en la tabla de materiales. Los siguientes son los pasos y procedimientos para la preparación y microinyección de embriones de una célula de bagre de canal como se ilustra en la figura 1.

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Resultados

Para demostrar la eficacia del Protocolo de microinyección, fueron microinyectados gRNAs diseñados para atacar el bagre de canal toll/interleukin-1 dominio-que contienen adaptador (TICAM1) de la molécula del gene del receptor y ramnosa Unión lectina (RBL) gene.

TICAM 1
Secuencia de la DNA de vectores de las colonias individuales de productos PCR combinados, clonados revelaron las mutaciones indel inducidas en.......

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Discusión

Se presentó un protocolo detallado para microinyección de embriones de bagre de canal para lograr el golpe de gracia del gene. Inyección de proteína CRISPR/Cas9 en la yema de huevo es mucho más sencilla, ahorra tiempo y no requiere formación amplia en comparación con microinjecting el blastodisc del embrión de una célula, que es la técnica común para la mayoría de la transferencia de genes y gene edición con pescado 30 , 42. el protocolo actual demostró para ser .......

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Divulgaciones

Los autores declaran que no tienen ningún conflicto de interés.

Agradecimientos

Esta investigación fue financiada por premio de USDA-NIFA 2015-67015-23488 a Roger Cone. Los autores agradecen a Dr. Ronald Phelps para la descripción de los criterios de selección común cría en el video. Ahmed Elaswad y Karim Khalil gustaría agradecer egipcio Cultural y educativa oficina en Washington para la financiación de su investigación de doctorado.

....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Implante ReproboostCentro de BiotecnologíaMarina Análogo de la hormona liberadora de hormona luteinizante (LHRHa) para la inducción de la ovulación en hembras de bagre de canal
TRICAINE-SWestern Chemical. Inc.Para la sedación de peces reproductores durante la inyección de hormonas y la extracción de huevos.
Rojo de fenolSigma-AldrichP02900,5%, filtrado estéril
Microscopio estereoscópicoOlympus 213709Para la visualización de los óvulos durante la microinyección
MicroinyectorASI-Instrumentación científica aplicada Modelo MPPI-3Para la administración del material de inyección en los embriones
MicromanipuladorASI-Instrumentación Científica Aplicada Modelo MM33 Para sujetar y controlar el movimiento de la aguja de inyección.
Microcargador EppendorfEppendorf5242956.003Para cargar solución inyectable en agujas de microinyección.
Extractor de agujas verticalDavid Kopf InstrumentsModelo 720Para tirar de agujas de microinyección Cas9
proteína PNABio Inc. CP01Proteína Cas9 recombinante de Streptococcus pyrogenes.
Expandir el sistema de PCR PLUS de alta fidelidad  Roche Diagnostics, EE. UU.Para PCR y amplificación de plantillas de ADN para su uso en la preparación de ARNg
Capilares de vidrio de borosilicatoFisher Scientific1 mm de diámetro exterior (OD), para la fabricación de agujas de microinyección.
Placa de PetriVWR25384-302Para sujetar los embriones durante la microinyección.
CriscoThe J.M. Smucker CompanyManteca vegetal para recubrir sartenes de desove y placas de Petri.
La solución de Holtfreterhizo59 mM de NaCl, 0,67 mM de KCl, 2,4 mM de NaHCO3, 0,76 mM de CaCl2, 1,67 mM de MgSO4 para incubar los embriones microinyectados hasta la eclosión.
Hiclato de doxiciclina USP (monohidrato)Letco Medical690904Antibiótico añadido a la solución de Holtfreter a 10 ppm para prevenir infecciones bacterianas.
en casa

Referencias

  1. Hammer, R. E., et al. Production of transgenic rabbits, sheep and pigs by microinjection. Nature. 315, 680-683 (1985).
  2. Komarova, Y., Peloquin, J., Borisy, G. Components of a microinjection system. , Cold Spring Harb. Protoc. 935-939 (2011).
  3. Du, S. J., et al.

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Noqueo g nicoprotocolo de microinyecci ninyecci n de embrionesgen TICAM1gen RBLARN gu asoluci n de Holtfreter