Method Article

G2-seq: Una alto rendimiento basado en la secuencia técnica para identificar replicación tardía de regiones del genoma

DOI:

10.3791/56286

March 22nd, 2018

In This Article

Summary

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Describimos una técnica para combinar la citometría de flujo y la secuenciación de alto rendimiento para identificar regiones finales replicación del genoma.

Abstract

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Numerosas técnicas se han desarrollado para seguir el progreso de la replicación del ADN a través de la fase S del ciclo celular. La mayoría de estas técnicas se han dirigido hacia la aclaración de la ubicación y el momento de inicio de la duplicación del genoma en lugar de su realización. Sin embargo, es fundamental que entendemos regiones del genoma que son última completar la replicación, porque estas regiones sufren niveles elevados de rotura cromosómica y mutación, y han sido asociados con la enfermedad y el envejecimiento. Aquí describimos cómo hemos ampliado una técnica que se ha utilizado para vigilar la iniciación de la replicación en cambio identificar las regiones del genoma última replicación completa. Este enfoque se basa en una combinación de citometría de flujo y la secuenciación de alto rendimiento. Aunque este informe se centra en la aplicación de esta técnica a la levadura, el enfoque puede utilizarse con cualquier célula que se puede ordenar en un citómetro de flujo según el contenido de ADN.

Introduction

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Replicación del genoma eucariota se inicia en múltiples sitios discretos, llamados origen de replicación, de que la replicación horquillas proceden en ambas direcciones (revisados en Fragkos et al., 20151). Orígenes varían en su tiempo y eficiencia de la cocción, y se han desarrollado varias técnicas para supervisar la actividad de origen de replicación y aclarar las causas de esta variación. De niveles de single-stranded DNA2, que se forma alrededor de origen activo, puede inferirse la actividad de orígenes individuales o mediante el uso de electroforesis en 2D para supervisar la replicación específica intermed....

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Protocol

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1. preparación de células de flujo Cytometry clasificación

  1. Inocular tubos de ensayo de 15 mL que contiene 8 mL de caldo YEPD tal que los cultivos alcanzan una densidad de 5 x 106 a 1.5 x 107 células por mL después de crecimiento durante la noche (véase la discusión Nota 1).
  2. Desactivación de las células de levadura (1.400 x g, a temperatura ambiente o 4 ° C) en un tubo de centrífuga de 15 mL tapón durante 5 min, resuspender las células en etanol al de 70% 1.5 mL y transfiéralo a un tubo de microcentrífuga 1.6 mL, dejando este sit 1 h a temperatura ambiente o por lo menos 3 h de hielo ( se puede almacenar indefinidamente a 4 ° C....

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Results

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Hemos utilizado el procedimiento descrito anteriormente para identificar sitios de replicación tardíos en levadura de florecimiento. Prueba este planteamiento con una región de replicación finales conocida en un cromosoma artificial demostró la técnica exacta y fiable. Nuestros resultados también han demostrado la importancia biológica de la oportuna terminación de la replicación, mostrando que una región replicación tardía en el cromosoma 7, que identificamos como replicación de fines so.......

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Discussion

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Mientras que esta técnica es robusta y relativamente directo, una atención especial debería destinarse a los siguientes:

(1) recomendamos que las culturas crecen durante al menos 12 h antes de llegar a la fase de registro, ya que las diferencias se manifiestan en ciclo celular distribuciones si las culturas son cosechadas después de haber alcanzado la densidad deseada a 4 h después de la inoculación. Nuestra hipótesis es que una distribución de ciclo celular que ha alcanzado un equilibrio rela.......

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Disclosures

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Los autores no tienen nada que revelar.

Acknowledgements

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Este trabajo fue financiado por beca NIH GM117446 a A.B.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Kit de ADN genómico YeaStarGenesee Scientific11-323
1 µ M SYTOX GreenThermoFisher57020resuspender en 50 mM de citrato de sodio, pH 7,2
50 mM citrato de sodio, pH 7,2
Solución de ARNasa (0,25 mg / mL)SigmaR65130,25 mg / mL RNasa resuspendida en 50 mM de citrato de sodio, pH 7,2, hervir la solución de ARNasa durante 10 minutos solo antes del primer uso, y a partir de entonces almacenar a -20°
solución de proteinasa K (20 mg / mL)ThermoFisher / Invitrogen25530-015resuspender en 10 mM Tris, pH 7.5, 2 mM CaCl2, 50% glicerol, almacenar a -20 grados; C
Modelo 50 Desmembradorsónico Fisher ScientificFB50A220
BD Biosciences FACSAria IIBD Biosciences644832
Columnas Zymo-spin IIIZymo ResearchC1005
Qubit dsDNA HS Kit de ensayoThermoFisherQ32851
Qubit 3.0 FluorímetroThermoFisherQ33216
Covaris Modelo LE220 Ultrasonido FocalizadoCovaris500219
Illumina TruSeq DNA LT Kit de preparación de muestrasIllumina15026486
Illumina HiSeq 2500 instrumentoIlluminaSY– 401 y ndash; 2501
software de alineación gsnapsoftware de código abierto / Genentechhttp://research-pub.gene.com/gmap

References

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  1. Fragkos, M., Ganier, O., Coulombe, P., Mechali, M. DNA replication origin activation in space and time. Nat Rev Mol Cell Biol. 16, 360-374 (2015).
  2. Santocanale, C., Diffley, J. F. A Mec1- and Rad53-dependent checkpoint controls late-firing origins of DNA replication. Na....

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Late Replicating RegionsFlow CytometryHigh Throughput SequencingDNA ReplicationCell Cycle SortingGenomic DNA ExtractionYeast Genomic AnalysisSir2 DeacetylaseTY Element CappingSliding Window Analysis

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