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Artículo de método

Total aislamiento y cultivo In Vitro de Intramolluscan etapas de la humano platija de la sangre Schistosoma Mansoni

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DOI:

10.3791/56345

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14 de enero de 2018

En este artículo

Resumen

Este artículo describe un protocolo para el aislamiento axénico a gran escala y la colección de miracidia nadan de la humana platija de la sangre mansoni de Schistosoma y su posterior procesado para la introducción en cultivo en vitro .

Resumen

Humanas sangre trematodos, Schistosoma spp., tienen un ciclo de vida complejo que comprende las fases del desarrollo asexuales y sexuales dentro de un caracol intermedio y mamífero huésped definitivo, respectivamente. La capacidad para aislar y sostener las etapas del ciclo de vida diferente bajo condiciones de cultivo en vitro ha facilitado enormemente las investigaciones de los mecanismos celulares, bioquímicos y moleculares de regulación de host, el desarrollo y crecimiento del parásito interacciones. Transmisión de la esquistosomiasis requiere reproducción asexual y el desarrollo de múltiples etapas larvales en el host de caracol; desde el miracidium contagiosa, a través de esporocisto primaria y secundaria, a la etapa final de cercarial que es contagioso a los seres humanos. En este trabajo presentamos un protocolo paso a paso para la eclosión total y aislamiento del mansoni del schistosoma miracidia de huevos obtenidos de hígados de ratones infectados y su posterior introducción en cultivo en vitro . Se prevé que el protocolo detallado anime a nuevos investigadores y ampliar este importante campo de investigación de esquistosoma.

Introducción

El ser humano sangre platijas Schistosoma spp., son los agentes causativos de la esquistosomiasis, una enfermedad tropical desatendida que afecta a un estimado de 230 millones de personas en todo el mundo1. La especie más difundida, Schistosoma mansoni, se distribuye geográficamente en América del sur, el archipiélago Caribe, Oriente Medio y África subsahariana2. El ciclo de vida de S. mansoniy otros esquistosomas, es complejo, que implica un mamífero hospedador definitivo y los caracoles de agua dulce del género Biomphalaria que sirven como hospederos intermediarios obligados.

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Protocolo

Todos los procedimientos experimentales y cuidado de los animales fueron aprobados por el Comité de uso de la Universidad de Wisconsin-Madison bajo protocolo y atención institucional del Animal no. V005717. El siguiente protocolo consiste en trabajar en un centro de bioseguridad nivel 2 (BSL2) para patógenos humanos, aunque ninguna de las etapas de esquistosoma, representadas en este protocolo son infecciosas para los seres humanos o de otros mamíferos. Seguir las políticas institucionales para el manejo de grupo de riesgo 2 (RG2) patógenos humanos.

Nota: Utilizamos mujer ratones Swiss-Webster (6 - semanas de edad) debido a su mayor suscept....

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Resultados

La gran mayoría de miracidia normalmente habrán sido recogida en las dos primeras "cosechas". Incubación de miracidia aislado en CEMB + desencadena el proceso de transformación de miracidio-sporocyst (Figura 4A- C). En la primera hora siguiente traslado a cultura pozos que contienen CBSS +, la mayoría de miracidia deje nadar (Figura 4A). A las 6 h en cultura, miracidia estamos activamente vertimiento sus placas e.......

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Discusión

Miracidia de S. mansoni, aislados y manipulados como se describe en este documento, puede infectar solamente el anfitrión intermedio del caracol y por lo tanto no representan un riesgo biológico humano durante esta fase de desarrollo larvario. Sin embargo, para evitar la exposición accidental, infección de los caracoles, debe tenerse cuidado para realizar aislamientos miracidial en una ubicación diferente de áreas donde especies de caracoles Biomphalaria susceptibles pueden ser presente o mantenido. Un .......

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Divulgaciones

Autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Financiado en parte por subvenciones de NIH RO1AI015503. Ratones infectados de schistosome fueron proporcionados por del NIAID esquistosomiasis Resource Center en el Instituto de investigaciones biomédicas (Rockville, MD) a través de NIH NIAID contrato HHSN272201000005I para la distribución a través de recursos del BEI.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Chernina (CBSS+)Para 1 litro de solución
2,8 g de cloruro de sodioFisher ScientificS271-3Disuelva las sales, excepto el cloruro de calcio, y 
0,15 g de cloruro de potasio Sigma-AldrichP5405azúcares en 800 mL ddH2O
0,07 g de fosfato de sodio, dibásico anhidroFisher ScientificS374-500Disolver el cloruro de calcio por separado en 200 
0,45 g de sulfato de magnesio heptahidratado Sigma-AldrichM1880mL ddH2O
0,53 g cloruro de calcio dihidratado;Mallinckrodt4160Agregue lentamente el soln de calcio al soln de sal/azúcar con 
0,05 g de bicarbonato de sodio   Fisher ScientificS233-3con mezcla constante
1 g de glucosaMP Biomedicals152527Ajuste a pH 7.2 y filtre la esterilización con a 
1 g de trehalosaSigma-AldrichT01670.22 µ m Filtro desechable con tapa de botella 10
mL 100X penicilina/estreptomicinaHycloneSV30010Agregue penicilina filtrada y estreptomicina soln 
uso previo
Incompleto Bge  medio (Ibge)Para solución de 900 mL
220 mL Schneider' s Drosophila medio modificadoLonza04-351QMezcle el medio de Schneider con 680 mL ddH2O
4,5 g de hidrolizado enzimático de lactoalbúminaSigma-AldrichL9010Agregue hidrolizado de lactoalbúmina y galactosa
1,3 g de galactosaSigma-AldrichG0625Ajuste a pH 7.2 y filtre la esterilización usando un 0.22 µ m
Filtro de tapa de biberón desechable preesterilizado
Medio Bge completo (cBge)Para 100 mL de solución
90 mL Medio BgePara inactivar el calor FBS: Incubar FBS descongelado en 
Suero fetal bovino (FBS) (Optima)Atlanta BiologicalsS12450baño de agua a 60° C durante 1 hora mientras suavemente 
1 mL 100X penicilina/estreptomicinaHycloneSV30010girando el frasco cada 10 min
FBS alícuota inactivado por calor en tubos de 15 mL 
y almacenar a -20&nb;C.  Mezcle medio + FBS y
filtro esterilizar con un filtro de 0.22 µ m pre-esterilizado 
Filtro de tapa de botella desechable 
Agregue penicilina y estreptomicina antes de usar
Agua de estanque (solución madre)1 L de solución madre
12,5 g de carbonato de calcioFisher ScientificC64-500Mezcle todas las sales en 1 litro de ddH2O
1,25 g de carbonato de magnesioFisher ScientificM27-500Tenga en cuenta que las sales no tendrán completamente  
1,25 g  cloruro de sodioFisher ScientificS271-3disuelto. Agitar vigorosamente para suspender                               
0,25 g  cloruro de potasioSigma-AldrichP5405sales antes de hacer el soln   
Agua del estanque (solución de trabajo)1,5 L de solución
0,8 mL de agua de estanque con solución madre (agitar antes del uso) en               Mezcle el caldo con ddH2O
1500 mL de ddH2OEsterilice el agua del estanque mediante autoclave (lento 
1,5 mL de penicilina/estreptomicina 100X HycloneSV30010Agregue penicilina y estreptomicina antes de su uso
(1.2% NaCl)1.5L de solución
18 g de cloruro de sodio en 1500 mL de ddH2OFisher ScientificS271-3Solución salina para autoclave para esterilizar
1,5 mL de penicilina/estreptomicina 100XHycloneSV30010Agregue penicilina y estreptomicina antes de su uso
Equipo y material adicional: 
7-L cámaraSiguiendo el protocolo aprobado por la IACUC n.º V001551
RatonesTaconic BiosciencesSwiss-Webster, hembra, 6 semanas de edad, murino   
Tanque <>2 y reguladorlibre de patógenos
placa de cultivo de tejidos de 24 pocillosTPP92424
Matraces
Fuente de luz (150W)Chiu Tech CorpModelo F0-150
Centrífuga, refrigerada, cubo oscilanteCentrífuga EppendorfModelo 5810R
frascos (250 mL)Nalgene
de 15 mL, estérilesCorning430053
Pipetas de transferencia desechables estériles Fisher Scientific 1371120
0.22 y micro; m Filtro de tapa de botella desechable preesterilizado EMD MilliporeSCGPS05RE
Batidora de acero inoxidableWaring CommercialModel 51BL31
Vaso batidora, capacidad de 100 mLWaring Commercial
Microscopio compuesto invertidoNikon Instruments Eclipse TE300
incompleto de eutanasia para ratones aforados de 1 LTubos de centrífuga

Referencias

  1. Colley, D. G., Bustinduy, A. L., Secor, W. E., King, C. H. Human schistosomiasis. Lancet. 383, 2253-2264 (2014).
  2. WHO. Schistosomiasis: number of people treated worldwide in 2013. Wkly. Epidemiol. Rec. 5 (90), 25-32 (2015).
  3. Yoshino, T. P., Gourbal, B., Théron, A. Schistosoma sporocysts.

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Aislamiento de miracidiosProcesamiento de tejido hepáticoExtracción de huevosLavado por centrifugaciónAtracción con agua de estanqueSolución salina equilibrada de CherninPlaca de cultivo tisularCiclo de vida del parásito