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División de célula mamífera en Matrices 3D mediante microscopia de reflexión Confocal cuantitativa

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DOI:

10.3791/56364

29 de noviembre de 2017

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En este artículo

Resumen

Este protocolo eficientemente estudios División de célula mamífera en matrices de colágeno 3D mediante la integración de sincronización de la división celular, monitoreo de eventos de la división de matrices 3D utilizando la técnica de imágenes de células vivas, la microscopia confocal tiempo-resolved de la reflexión cuantitativos y análisis de imágenes.

Resumen

El estudio de mamífero como la división celular está reglamentado en un 3D medio ambiente sigue siendo en gran parte inexplorado a pesar de su importancia fisiológica y significación terapéutica. Posibles razones de la falta de exploración son las limitaciones experimentales y desafíos técnicos que hacen el estudio de la división celular en 3D cultura ineficiente. Aquí, describimos un método basado en la proyección de imagen para estudiar eficientemente mamífera división celular y las interacciones célula-matriz en matrices de colágeno 3D. Las células marcadas con fluorescente H2B se sincronizan mediante la combinación de tratamiento de bloqueo y nocodazole timidina, seguido por una técnica mecánica de agitar. Sincronizado las células entonces están incrustadas en una matriz de colágeno 3D. División de célula se controla mediante microscopía de células vivas. La deformación de las fibras de colágeno durante y después de la división celular, que es un indicador de la célula-matriz de interacción, puede controlarse y cuantificada mediante microscopía de reflexión confocal cuantitativa. El método proporciona un enfoque eficaz y general para estudiar mamífera división celular y las interacciones célula-matriz en un entorno 3D fisiológicamente relevante. Este enfoque no sólo proporciona nuevas penetraciones en la base molecular del desarrollo del tejido normal y las enfermedades, sino que también permite el diseño de nuevos enfoques diagnósticos y terapéuticos.

Introducción

Mitosis de la célula es un evento crítico en la vida celular, la regulación de la que juega un papel crucial en el desarrollo de órganos y tejidos. Mitosis anormales está implicado en las variaciones genéticas naturales, procesos del envejecimiento humano y la progresión del cáncer1,2,3,4,5. El aumento de la tasa de proliferación de células tumorales en comparación con las células normales es una de las características distintivas del cáncer, a pesar de que comportamientos de la célula son muy heterogéneos ....

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Protocolo

El protocolo siempre sigue las pautas de la Homewood institucional Review Board (HIRB).

1. estable expresión de H2B mCherry como marcador de Mitosis celular

  1. Generación de partículas lentivirales de riñón embrionario humano 293T (HEK 293T) las células
    1. Las células HEK 293T en una placa de cultivo celular de 10 cm en la densidad de 5 x 106 células/plato en medio de cultivo celular (de Dulbecco Medium (DMEM) que contienen alta glucosa modificado Eagle (4,5 g/L), piruvato de sodio, 10% suero bovino Fetal (FBS) y 1% de la placa penicilina-estreptomicina (Pen/Strep)). Incubar durante 24 h a 37 ° C y....

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Resultados

El objetivo de este artículo es presentar un método basado en la proyección de imagen para el estudio de procesos de división de célula mamífera en matrices 3D y para cuantificar las interacciones entre la célula y la matriz extracelular 3D durante y después de la división celular. Para facilitar la proyección de imagen de la mitosis celular, incorporamos mCherry H2B en las células MDA-MB-231 mediante transducción lentivirales. H2B conjugados con proteínas fluorescentes se utiliza como un.......

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Discusión

El estudio previo de la división celular en 3D no fue eficiente debido a limitaciones experimentales y desafíos técnicos18,19. Los pasos críticos para el estudio eficaz de la división de célula mamífera en matrices de colágeno 3D son: (1) la incorporación de marcadores mitotic marcados con fluorescencia en las células; (2) la sincronización de la división celular; y (3) el monitoreo de eventos de la división de matrices 3D utilizando la técnica de imágenes de cél.......

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Divulgaciones

Los autores declaran que no tienen intereses financieros que compiten.

Agradecimientos

Este trabajo fue financiado por los NIH concede R01CA174388 y U54CA143868. Los autores desean reconocer la concesión PURA de la Universidad de Johns Hopkins para la ayuda de Chen Wei tong. Este material está basado en trabajo apoyado por la nacional ciencia Fundación graduados beca de investigación bajo la subvención no. 1232825.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Riñón embrionario humano 293TATCC
MDA-MB-231Centro de Oncología de Ciencias Físicas, NIH
DMEMCorning10-013-CV
DMEM en polvoThermoFisher Scientific12100-046
Suero fetal bovinoHycloneSH30910.03
Penicilina-Estreptomicina 100XSigma-AldrichP0781
Fugene HDPromegaE2311
Lipofectamine 2000Life technologies11668-07
Plásmido que codifica H2B-mCherry en un vector lentiviralPlásmido Addgene 21217
TimidinaSigma-AldrichT1895
NocodazolSigma-AldrichM1404
Opti-MEMLife Technologies31985-070
Bicarbonato de sodioGibcoBRL11810-025
HEPESSigma-Aldrich113375-100
ColágenoCorning354236
NaOHJ.T. Bake3722-01
Unidad de filtro de jeringa Millex-HV, 0.45-μ m, PVDF, 33 mmMilliporeSLHVM33RS Microscopio
de epifluorescencia Nikon TE2000ENikonTE2000E
Cascade 1KRoper Scientific
NIS-Elements software de imagen ARNikon Nikon
Nikon A1 microscopio confocalNikonA1
Cámara CCD

Referencias

  1. Ly, D. H., Lockhart, D. J., Lerner, R. A., Schultz, P. G. Mitotic misregulation and human aging. Science. 287 (5462), 2486-2492 (2000).
  2. Gascoigne, K. E., Taylor, S. S. How do anti-mitotic drugs kill cancer cells? J Cell Sci. 122 (Pt 15), 2579-2585 (2009).
  3. Brinkley, B. R.

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Etiquetas

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