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Artículo de método

Aislar los linfocitos desde el sistema de inmune Intestinal pequeño ratón

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DOI:

10.3791/57281

28 de febrero de 2018

En este artículo

Resumen

Aquí describimos un protocolo detallado para el aislamiento de los linfocitos de los sitios inductivos como el tejido linfoide asociado a intestino de Peyer y los ganglios linfáticos mesentéricos drenantes y los sitios efectores incluyendo la lámina propia y la epitelio intestinal del pequeño sistema inmune intestinal.

Resumen

El sistema inmune intestinal juega un papel esencial en el mantenimiento de la función de barrera del tracto gastrointestinal mediante la generación de respuestas tolerantes a antígenos dietéticos y bacterias comensales mientras que montar una respuesta inmune efectiva a enteropatógeno microbios. Además, ha quedado claro que la inmunidad local intestinal tiene un profundo impacto en la inmunidad sistémica y distante. Por lo tanto, es importante estudiar cómo se induce una respuesta inmune intestinal y lo que es los resultados inmunológicos de la respuesta. Aquí, se describe un protocolo detallado para el aislamiento de los linfocitos del intestino inductivo como de Peyer tejido linfoide asociado a intestino y ganglios linfáticos mesentéricos drenantes y efectoras como la lámina propia y la epitelio intestinal. Esta técnica asegura el aislamiento de un gran número de linfocitos de los tejidos intestinales pequeñas con óptima pureza, viabilidad y mínima contaminación compartimentación dentro de las limitaciones de tiempo aceptable. La capacidad técnica para aislar los linfocitos y otras células inmunes de los tejidos intestinales permite la comprensión de la respuesta inmune a infecciones gastrointestinales, cánceres y enfermedades inflamatorias.

Introducción

El tracto gastrointestinal (GI) tiene muchos pliegues y protuberancias que representa la interfaz más grande separando el cuerpo interno y el ambiente externo. El sistema inmune intestinal juega un papel esencial en el mantenimiento de la función de barrera del tracto gastrointestinal. Está constantemente expuesto a antígenos dietéticos, las bacterias comensales y microbios patógenos. Como tal, debe seguir siendo tolerante a antígenos alimentarios y bacterias comensales conservando la capacidad de generar rápidamente una respuesta inmune efectiva a microbios enteropatógeno1. El sistema inmune intestinal puede dividirse anatómicamente en inducti....

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Protocolo

Todos los experimentos en animales eran realizados de conformidad con las directrices del Instituto Nacional de salud y aprobados por el pedregoso del arroyo Universidad institucional Animal cuidado y uso.

Nota: Asegúrese de que todas las aprobaciones se conceden antes de realizar procedimientos.

1. preparación de la solución

  1. HGPG (HEPES, L-glutamina, penicilina/estreptomicina y gentamicina), 100 ×
    1. Mezclar 59,6 g HEPES (500 mM final), 14,6 g de L-glutamina 200 mM (final), 1 × 106 U penicilina (2.000 U/mL final), la estreptomicina 1 g (2 mg/mL final) y gentamicina 2....

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Resultados

Se muestra una representación esquemática del Protocolo (figura 1). Los linfocitos de la mucosa intestinal inductiva y sitios efectores se organizan claramente. Peyer de parches (PP) y nodos de linfa mesentéricos (MLN) contienen linfocitos en áreas bien organizadas de células T y folículos de células B, mientras que el epitelio intestinal contiene linfocitos que se distribuyen más difusamente. La lámina propia (LP) contiene linfocitos difusamente distribuidos.......

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Discusión

Se presenta un protocolo detallado para el aislamiento de los linfocitos desde el intestinal mucosa inductivo (MLN y PP) y efectores (compartimiento de LP y IEL). El protocolo ha sido desarrollado para equilibrar la entrada (tiempo) y salida (viabilidad y rendimiento) para maximizar la productividad y resultados. El protocolo también asegura la mínima contaminación compartimentación entre LP y IEL compartimientos.

Varios protocolos para el aislamiento de las células inmunes del intestino de ra.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

B.S.S. es apoyado por subvenciones de NIH (R01 AI076457) y fondos aportados por la Universidad de Stony Brook. Z.Q. es apoyado por los NIH grant (K12 GM102778).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
HEPESFisher ScientificBP310-500
L-glutamina Sigma-aldrichG3126-100G
Penicilina-EstreptomicinaLife Technologies15140-122
GentamicinaLife Technologies15710-072
Hidróxido de sodioFisher ScientificS318-500
RPMI 1640 LifeTechnologies21870-076
Bicarbonato de sodioFisher ScientificS233-500
Suero fetal bovinoLife Technologies26140-079
10x Solución salina equilibrada de HanksSigma-aldrichH4641-500ML
1,4-DitioeritritolSigma-aldrichD9680-5G
0.5M EDTA, pH 8.0Life Technologies15575-020
Cloruro de calcio hexahidratadoSigma-aldrich21108-500G
Cloruro de magnesio hexahidratadoSigma-aldrichM2670-100G
Colgenasa, Tipo ILife Technologies17100-017
DG solución madre de gradiente (Percoll) GE Healthcare17-0891-01
Tampón de lisis de glóbulos rojosBiolegend420301
70-µ Filtro de células M Corning352350
14 mL Tubo de polipropileno de fondo redondoMatraz Corning352059
Erlenmeyer Kimble26500R-50mL
Agitador magnéticoThermo Fisher50094596
Barra agitadoraFisher Scientific14-512-148

Referencias

  1. Hooper, L. V., Macpherson, A. J. Immune adaptations that maintain homeostasis with the intestinal microbiota. Nat Rev Immunol. 10 (3), 159-169 (2010).
  2. Brandtzaeg, P., Kiyono, H., Pabst, R., Russell, M. W. Terminology: nomenclature of mucosa-associated lymphoid tissue.....

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

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