Method Article

Bioindicación para el examen de idoneidad del entorno de corriente joven agua dulce mejillones utilizando métodos de exposición In Situ de la perla

DOI:

10.3791/57446

⸱

September 5th, 2018

 ,  ,  ,  ,  , 
1Faculty of Environmental Sciences, Czech University of Life Sciences Prague, 2T. G. Masaryk Water Research Institute, 3Department of Zoology and Fisheries, Faculty of Agrobiology, Food and Natural Resources, Czech University of Life Sciences Prague

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bioindications in situ permiten la determinación de la idoneidad de un medio ambiente para las especies en peligro de extinción del mejillón. Describimos dos métodos basados en la exposición juvenil de agua dulce mejillones de perla en jaulas a hábitats oligotróficos río. Ambos métodos están implementados en variantes para aguas abiertas y ambientes de agua hiporréica.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Conocimiento de la aptitud de hábitat para mejillones de agua dulce es un paso importante en la conservación de este grupo de especies en peligro de extinción. Se describe un protocolo para llevar a cabo en situ pruebas de exposición juvenil dentro de cuencas de río oligotrófico sobre períodos de un mes y tres meses. Se presentan dos métodos (en ambas modificaciones) para evaluar la tasa de crecimiento y supervivencia juvenil. Los métodos y modificaciones difieren en valor de la bioindicación de la localidad y cada uno tiene sus beneficios, así como limitaciones. El método de jaula de arena funciona con un conjunto grande de individuos, pero sólo algunas de las personas se miden y se evalúan los resultados a granel. En el método de la jaula de malla, los individuos se guardan y se mide por separado, pero bajo número individual es evaluado. La modificación de la exposición de aguas abiertas es relativamente fácil de aplicar; se muestra el crecimiento menores potenciales de sitios y también puede ser eficaz para pruebas de toxicidad de agua. La modificación de la exposición dentro de la cama necesita una alta carga de trabajo pero está más cerca de las condiciones de un ambiente juvenil natural y es mejor por informar de la conveniencia real de localidades. Por otra parte, se necesitan más repeticiones en esta modificación debido a su variabilidad de ambiente alta hiporréica.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La exposición de organismos experimentales en situ con la subsecuente evaluación de su condición es una manera posible de obtener información sobre la calidad ambiental y (especialmente) la idoneidad del sitio para una especie. Dentro de los animales, tal bioindicación es aplicable sobre todo para los pequeños invertebrados que son capaces de vivir en un espacio acotado limitado. Las etapas jóvenes de bivalvos (Bivalvia) son un tal organismo conveniente grupo1.

Bivalvos de la familia Unionidae son un componente muy importante de los ecosistemas acuáticos2. Sin embargo, estas especies son a menudo de extinción, especialmente en arroyos y ríos. Algunos de ellos son caracterizados como 'especie de paraguas' cuya conservación está estrechamente relacionada con la conservación del biotopo de toda corriente y que requieren un amplio enfoque3. Estos animales tienen un ciclo de vida asociado con muchos componentes del medio ambiente, del agua química4,5 a los cambios en las poblaciones de peces que sirven de anfitriones de larvas de mejillón6. Porque los juveniles de mejillón a menudo representan una fase crítica del ciclo de vida del mejillón, la idoneidad del sitio para su desarrollo en esta etapa es crucial para un desarrollo de la población de especies exitosas en una localidad.

El mejillón de agua dulce perla (FWPM, Margaritifera margaritifera; Unionida, Bivalvia) es un bivalvo críticamente en peligro de extinción que ocurren en oligotróficas corrientes europeas. Sus números han caído drásticamente durante los 20 del sigloXX a través del área de ocurrencia. Parece que la actual caída en la reproducción de especies en la mayoría de las poblaciones Europa central es principalmente causada por muy baja a cero la supervivencia de los alevines durante los primeros años de su vida. Se supone que FWPMs juveniles vivan muchos años en el superficial hiporréica zona7, que las condiciones y su variabilidad todavía no están bien descritas. Por otra parte, hasta su segundo año de vida, los juveniles sólo tienen una dimensión de hasta 1 mm, por lo que son muy difíciles de encontrar en grandes volúmenes de sedimentos bajo condiciones naturales8. Por lo tanto, experimentos con jóvenes cautivos son necesarios para el estudio de su ecología.

Dentro de la Checa Plan de acción para el mejillón de agua dulce perla9, hay miles de juveniles de levantamiento cada año a partir de un programa de crianza seminaturales. Sin embargo, hay una pregunta que lugares y hábitats son convenientes para población exitosa apoyo por estos menores o para la reintroducción de especies posibles. En situ bioindications presentan una forma de encontrar la respuesta.

A pesar de que las tasas de supervivencia inconsistente de mejillones juveniles en jaulas de exposición se observaron en algunos trabajos anteriores que cuestionaba la idoneidad de mejillones juveniles como bioindicadores10, varios estudios recientes han confirmado la aplicabilidad de los métodos de exposición juvenil para calidad del agua prueba11,12,13. Además, se ha demostrado que varios factores necesitan ser considerados al interpretar los resultados de estos estudios particulares, como el origen común14 y los efectos persistentes de larvas condiciones15.

Surge la pregunta de cómo instalar experimentales juveniles en las localidades de prueba y evaluar más eficazmente su condición. La primera aplicación rigurosa del situ exposición métodos con FWPMs juveniles fue publicada por Buddensiek16. Personas FWPM menores se mantuvieron en jaulas de hoja, expuestos en el flujo libre de agua de arroyos, y su supervivencia y crecimiento se cuantificaron después de varias semanas de exposición. El método fue desarrollado originalmente como un método de cría semi artificial, pero el autor también ha destacado su aplicabilidad para la evaluación de los requerimientos de hábitat y calidad del agua. Aunque la supervivencia de juveniles de FWPM es naturalmente muy baja en una escala de meses/años y sólo un muy pequeño número de animales a sobrevivir, la tasa de supervivencia puede ser un buen marcador del efecto ambiental en una escala de varias semanas16. En años de investigación, se desarrollaron métodos de exposición a hábitats de retención experimental mejillones juveniles en secuencia y para evaluar sus tasas de crecimiento y supervivencia; Estos incluyen cajas de arena17, silos de mejillón basados en una surgencia principio18y varios otros exposición jaulas (resumidos por goma de mascar y colegas)11. Porque los juveniles ocurren naturalmente en hiporréica superficial zona7, la aplicación de dispositivos experimentales dentro de la parte inferior de la corriente es muy deseable.

En nuestro artículo, describimos el uso de dos dispositivos de exposición de FWPMs: i) modificado Buddensiek jaulas de hoja ("jaulas de malla") que permite bioindicación pruebas en condiciones de hyporheal; y ii) cajas de arena Hruška ("jaulas de arena"). El protocolo describe la aplicación de ambos métodos en condiciones de agua e hiporréica abiertas (es decir, cuatro variantes de la exposición se describen). Los métodos fueron gradualmente modificados y ampliados en más de 15 años de aplicación en el Plan de acción de Checa para mejillón de agua dulce perla9 y verificados por una serie de experimentos.

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Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. jaula de malla

Nota: Vea la figura 1.

  1. Preparar material
    1. Preparar el material para la parte de laboratorio del experimento: ~ 1-2 L del río del agua por jaula de malla, jaulas de malla (1 carrocería de plástico, 2 cubiertas de plástico, 2 hojas de tamices técnicos especiales con 340 μm poros, 4 tornillos y 4 tuercas por jaula), alicates , una llave, Pipetas Pasteur, un colador, una cámara digital, un trinocular microscopio estéreo del zumbido, una cuadrícula de calibración (equipo de microscopio), 5 placas de Petri de 50 mm de diámetro, vasos, 2 platos de plástico de disección (~ 25 cm x 15 cm x 3 - 5 cm) y una caja de plástico.
    2. Para realizar la instalación de hyporheal, preparar un tubo de goma y una malla de 100 μm de poro y una botella de squirt. Para la construcción del dispositivo, consulte archivo complementario 1: S.1. Construcción de jaulas de malla.
  2. Montar la parte inferior y la parte central de las jaulas de malla. Montar la parte de la jaula que encierra a los individuos. Inserte en primer lugar, una cubierta de plástico y una hoja del plástico tamiz, finalmente la cañería del cuerpo en la parte superior. Utilice cuatro tornillos para sujetarla.
  3. Preparación de material biológico
    1. Poner la jaula de malla en el plato de plástico que contiene agua del río. Asegúrese de que las cámaras están medio llenos. Tomar los juveniles FWPM (ver 1 archivo complementario: S.6. Material biológico) fuera de la caja aislada térmicamente y ponerlos en la caja Petri.
      Nota: Asegúrese de que los cambios bruscos de temperatura no excedan ~ 2 ° C.
    2. Usando un frasco rociador y un colador, tamizar a través de los juveniles para eliminar los detritus.
  4. Configurar el microscopio y la cámara. Realizar una calibración de los instrumentos (ver complementaria archivo1: S. 5. Microscopio y fototécnica). Coloque una placa de Petri que contiene un poco de agua bajo el microscopio.
  5. Poner a los juveniles en jaulas (trabajo experimental de laboratorio)
    1. Utilice una pipeta Pasteur para quitar a un individuo de una placa Petri y colóquelo con cuidado en la placa Petri al microscopio.
    2. Comprobar aptitud del individuo dentro del ocular (~ 40 aumentos).
      Nota: Gimnasio "Bueno" significa que el individuo se mueve, gira de lado a lado, empuja el pie fuera de la cáscara, etc. quitar muerto o baja aptitud individuos con un Pasteur pipeta y coloque en una placa Petri separadas (FWPM en aves jóvenes con un abierto Shell, sin movimiento, el pie no está hacia afuera, una cáscara fragmentada, juveniles que flotan descontroladamente en el agua, una visible descomposición de la cáscara, descalcificación parcial).
    3. Tomar dos fotografías de un FWPM individual mostrando buena aptitud mediante un aumento constante de ~ 80 X. Ver archivo adicional 1: S.5. Microscopio y fototécnica. Guardar las fotos.
      Nota: Para una buena medida de su longitud, el menor debe colocarse longitudinalmente (vista lateral). El objetivo principal es tomar una fotografía de alta calidad de la longitud máxima de cáscara lo suficientemente bueno para hacer un análisis de la imagen después.
    4. Inserte al juvenil en la cámara apropiada en la jaula tan pronto como se toman las imágenes. Registrar los números de las fotos y la cámara.
    5. Repita este paso con cada uno individual para todas las cámaras usadas en la jaula de malla.
      Nota: vea archivo complementario 1: S.1. Construcción de jaulas de malla.
    6. Una vez todas las cámaras usadas mejillones perla, poner el tamiz plástico de la jaula, luego suavemente colocar la tapa de plástico y fijar todas las piezas junto con las tuercas.
    7. En el caso de una instalación en una zona hiporréica, pasar uno de los extremos de la manguera a través de una de las cámaras y fijarlo en esta posición, luego tomar la malla antiobstrucción y atar en el extremo inferior (ver 1 archivo complementario: S.1. Construcción de jaulas de malla).
  6. Juveniles de la tienda
    1. Poner la jaula en la caja de plástico con el agua del río, para que los juveniles se sumergen totalmente y mantienen en el envase térmico. Antes de la instalación, deje que los juveniles se adaptan a la en situ río temperatura del agua en el lugar de instalación (gradual enfriamiento, máx. 5 ° C en 24 h).
  7. Instalar jaulas de malla
    1. Preparar el material de campo, incluyendo las jaulas de malla con los juveniles, picos de acero, pernos y tuercas de metal, una llave, dataloggers de temperatura de campo (ver Tabla de materiales y archivo complementario 1: S.4.2. Medición del agua), una cadena, una cámara, el protocolo de campo, un martillo y una pala.
    2. Transporte de los juveniles FWPM al sitio en un envase térmico de campo (caja aislada), manteniendo una temperatura estable con variaciones < ~ 2 ° C. Poner el envase térmico con las jaulas de malla en el río en el sitio para dejar los juveniles se adaptan a las condiciones ambientales locales (pH, conductividad, etc.).
    3. Instale la malla de la jaula.
      1. Quite la jaula del acoplamiento de envase térmico del campo. Proporcionar con dos espigas de acero y fijar el registrador de datos de campo. Anclar la jaula en un hábitat con condiciones típicas para FWPMs en el área de estudio (por ejemplo, en el borde del flujo de la corriente principal, no en el flujo directo de agua, no en agua estancada, no en luz directa del sol).
        1. Para aguas abiertas, con un par de picos de acero, fijar la jaula hasta el fondo del río; pone a su lado y el nivel con el fondo del río, aguas abajo en un ángulo de 45° al caudal del río, hacia el centro del río. El borde horizontal inferior debe ser unos 10-15 cm por encima de la superficie del fondo del río. Mantener una distancia mínima de 2 m entre cada jaula en una localidad (ver 1 archivo complementario: S.4. Jaulas de mantenimiento).
        2. Para la zona hiporréica, cavar las jaulas en el fondo del río en una posición perpendicular del paisaje, perpendicular a la corriente de agua, para que el borde horizontal superior de la jaula es paralelo a la superficie del fondo del río y las cámaras se encuentran en el hiporréica profundidad que debe ser probada. Saque el extremo superior de la manguera de goma sobre la superficie inferior de la posibilidad de toma de muestras de agua durante el experimento (ver 1 archivo complementario: S.4.2. Medición del agua).
          Nota: Se recomienda realizar controles periódicos y el mantenimiento de las jaulas (ver 1 archivo complementario: S. 4. Jaulas de mantenimiento).
  8. Desinstalar las jaulas y transporte de los juveniles después de la exposición. Para esto, tire las jaulas fuera del agua, limpiar de sedimentos finos y a partir de material reflotada y ponerlos en el campo Envase térmico llenado de agua del río. Transporte de las jaulas inmediatamente al laboratorio e iniciar la evaluación de tasa de mortalidad y el crecimiento.
    Nota: Consulte el archivo complementario de 1: S.3. Duración de la exposición. En el caso de una diferencia de temperatura de más de 5 ° C entre las jaulas y el entorno de laboratorio, es necesario para nivelar la temperatura.
  9. Evaluar el experimento de comprobación de la aptitud / de la vida de cada menor (ver pasos 1.5.2 y 1.5.3) y 2 imagenes de cada menor directo en una placa Petri con un aumento constante de ~ 80 X. Grabar la aptitud y los números de las fotos y cámaras.
  10. Completar el experimento (común a todos los métodos)
    1. Realizar las mediciones en software de análisis de imagen. Utilizar software de análisis de imagen para la determinación de tamaño de cuerpo de cada menor evaluado en tanto las imágenes de entrada (paso 1.5.3) y en las imágenes de salida (paso 1.9). Uso la longitud máxima total shell registró en ambas fotografías como valores de tamaño de cuerpo en la entrada y salida.
    2. Introduzca los valores medidos en el procesador de la tabla y calcular el crecimiento incremento (%) para sobrevivir a cada juvenil.
    3. Estimar la tasa de supervivencia (%) por jaula de malla utilizando el cociente entre el número de individuos sobrevivientes a todos los individuos experimentales en la jaula de malla.
      Nota: Después del experimento, volver a los sobrevivientes para el programa de mejoramiento
      (ver 1 archivo complementario: S.6. Material biológico).

2. Sandy Cage

Nota: Véase la figura 2.

  1. Preparar material
    1. Preparar el material para la parte de laboratorio del experimento: 2 platos de Petri (diámetro ~8.5 cm), Pipetas Pasteur, un colador, 25 L de agua del río, una caja de plástico, tamices (malla de tamaño 1 y 2 mm), una caja de plástico grande (25 L), una jaula arena (véase archivo complementario 1 : S.2. Jaulas de arena construcción), ordenados de una cámara digital, un trinocular disección microscopio estéreo del zumbido, una cuadrícula de calibración (equipo de microscopio), arena del río de la zona de estudio (ver paso 2.1.3) y el protocolo. Véase tabla de materiales y archivo complementario 1: S. 2. Jaulas de arena construcción.
    2. Preparar el material para el proceso de aislamiento: Ronda de contenedores (1 por cada jaula más 1 extra), 2 placas de Petri (diámetro ~ 14 cm), una pipeta de Pasteur, lupas y 1 L de agua del río.
    3. Tamizar la arena de río a través de un tamiz de 2 mm a través de un tamiz de 1 mm para obtener una granulometría de 1-2 mm. secar la arena y se puede guardar en una forma seca hasta que se.
  2. Tomar los juveniles (ver 1 archivo complementario: S.6. Material biológico) del envase térmico y ponerlos en la caja Petri. Usando un frasco rociador y un colador, tamizar a través de los juveniles para eliminar los detritus.
  3. Configurar el microscopio y la cámara (ver 1 archivo complementario: S.5. Microscopio y fototécnica).
  4. Poner a juveniles en jaulas (trabajo experimental de laboratorio)
    1. Coloque la jaula arena en la caja de plástico. Esparcir la arena clasificada (ver paso 2.1.3) hasta un tercio de la altura de la caja de arena. Vierta agua en la caja. Asegúrese que la superficie de la arena unos 10 mm por debajo del nivel de agua. Inserte la caja de arena en la caja de 25 L de agua del río y exponerlo a la misma temperatura que el FWPMs juveniles (ver complementaria 1 archivo: S.6.2. Almacenamiento de material biológico) por 12 h. evitar cualquier exposición de la arena al sol.
    2. Tomar la placa de Petri con los juveniles FWPM preparados.
    3. Comprobar la aptitud de los individuos dentro del ocular (ver paso 1.5.2).
    4. Realizar la documentación fotográfica como sigue. Tomar una fotografía de todos los individuos descubiertos (ver paso 1.5.3) y elegir 10 de las personas mayores. Alternativamente, tomar fotos de todos los menores junto con bajo aumento (40 X) para una evaluación a granel y elegir a las 10 personas más. Guardar todas las fotos y registre sus números.
    5. Usando un frasco rociador, mover a los juveniles FWPM en la caja de arena preparada.
  5. Juveniles de la tienda
    1. Poner la jaula en la caja grande de plástico con agua del río para que la jaula se sumerge completamente y mantener en el envase térmico. Que los juveniles se adaptan a la en situ río temperatura del agua (gradual enfriamiento, máx. 5 ° C por 24 h) antes de la instalación.
  6. Instalar jaulas de arena
    1. Preparar el material para la instalación de campo: jaulas de arena, un envase térmico de campo ~ 25-L, una piedra plana (mínimo 1 kg de peso), una red (malla calibre 10 x 10 mm), una botella de squirt, dataloggers de temperatura de campo (véase Tabla de materiales y archivo complementario 1: Medición de agua S.4.2.), una espada y el protocolo de campo.
    2. Transporte de las jaulas con los juveniles en el sitio en el campo Envase térmico, manteniendo una temperatura estable (cambio de ~ 2 ° C). Poner el campo Envase térmico con las jaulas de arena en el río en el sitio de campo para dejar los juveniles FWPM adaptarse a las condiciones ambientales locales (pH, conductividad, etc.).
    3. Instalar las jaulas de arena en hábitats con condiciones típicas para FWPMs (p. ej., en el borde del flujo de corriente principal en un meandro, no en el flujo de agua directo, no en agua estancada, no en luz directa sol).
      1. Para aguas abiertas, sujetar las jaulas de arena a una piedra plana con una red y colocarlo en el fondo del río. Asegúrese de que el lado más grande de la jaula forma un ángulo de 45° con el flujo.
      2. Para Hyporheal, cavar las jaulas en el fondo del río perpendicular al flujo de agua para que la tapa de la jaula esté nivelado con la superficie del fondo del río.
        Nota: Se recomienda realizar controles periódicos y el mantenimiento de las jaulas (ver 1 archivo complementario: S. 4. 1. controles del sitio).
  7. Desinstalar jaulas y transporte menores después de la exposición
    Nota: vea archivo complementario 1: S.3. Duración de la exposición.
    1. Tire las jaulas fuera del agua, limpiar de material reflotada y ponerlos en el campo Envase térmico llenado de agua del río.
    2. Transporte de las jaulas al laboratorio e iniciar la evaluación de tasa de mortalidad y el crecimiento.
      Nota: En el caso de una diferencia de temperatura de más de 5 ° C entre las jaulas y el entorno de laboratorio, es necesario nivelar la temperatura.
  8. Independientes menores FWPM de arena
    1. Preparar un recipiente redondo con una profundidad de agua de 50 mm (para cada jaula por separado) y un contenedor extra redondo. Trasvasar la arena de la caja de envase redondo. Use un movimiento de remolino para lavar las partículas más ligeras en un contenedor extra.
    2. El contenido de este envase de la muestra poco a poco y buscar juveniles paso a paso usando una pipeta Pasteur y una lupa. Poner a los juveniles en la caja Petri con la pipeta de Pasteur. Repita este paso hasta que el último juvenil se ha encontrado y luego otra 10 veces después del primer hallazgo negativo. Después de cada paso del lavado, agregar agua limpia al envase original con la arena.
      Nota: Especialmente después del primer lavado, correctamente examinar el contenido y limpiar de lastre tales como sedimentos finos y otros aluviones.
  9. Evaluar el experimento
    1. Comprobar la aptitud de cada menor (ver pasos 2.4.3 y 1.5.2) y contar el número de sobrevivientes.
    2. Tomar una foto (ver paso 2.4.4.) de cada individuo por separado, aunque esto significa que hay sin identidad clara de cada individuo. Como alternativa, tomar fotos a granel y elegir un subconjunto de los 10 individuos más crecidos los resultados finales.
      Nota: Ambas posibilidades tienen un valor similar de presentación de informes. Posibilidad 1 tiene una limitación de una mayor carga de trabajo pero también el beneficio de la mayor ampliación de la foto y así también una mayor precisión.
  10. Completa el experimento
    1. Realizar mediciones en software de análisis de imagen. Completar el experimento como en las jaulas de malla (ver paso 1.10) con las siguientes excepciones: evaluar la tasa de crecimiento (%) de cada menor pero evaluar el grupo como un todo en el experimento de la jaula arena.
      Nota: Después de la experiencia, los sobrevivientes deben devolverse para el programa de mejoramiento
      (ver S.6.1 archivo complementario. Selección de un material biológico).

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Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Los cuatro métodos de bioindicación (aguas abiertas arena jaulas, jaulas de arena dentro de la cama, abrir jaulas de malla de agua y jaulas de malla dentro de la cama) se aplicaron para investigar la idoneidad de condiciones de entorno para FWPMs en la cuenca alta del Vltava río (selva de Bohemia, Checo República). Este río representa un lugar residual FWPM en Europa central19. Aquí, presentamos un conjunto de resultados que ilustran los aspectos más importantes de...

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Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tiempo de exposición:

Incluso un mes expuesto malla jaulas mostrar un crecimiento visible que refleja las diferencias entre localidades (figura 3), por lo que son muy útiles para la detección fácil y rápida de una caracterización de la localidad. Sin embargo, la relevancia de los resultados depende del estado a corto plazo de las condiciones, que puede oscilar. En particular, eventos de precipitación corta pueden desempeñar un papel. Por el contrario, contaminación e...

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Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Los autores no tienen nada que revelar.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Michal Bílý y Ondřej P. Simon fueron apoyados por becas de la Universidad Checa de Ciencias vida [interna beca Agencia de Facultad de ciencias ambientales, CULS Praga (42110 1312 3175 (20164236))]. Apoyo Karel Douda provino de la Fundación de la ciencia Checa (13-05872S). Se recogieron datos sobre la bioindicación y presente ocurrencia de mejillones de perla durante la implementación del Plan de acción de Checa de mejillones de agua dulce perla gestionado por la Agencia de conservación de la naturaleza de la República Checa, que está financiado por el gobierno de la República Checa y está disponible en

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
mantenimiento y cuidado del material biológico
Juveniles de mejillón perla de agua dulcecualquierNAde un programa de cría FWPM
cajas de plásticocualquier
thermoboxMERCI212,070,600,030Hay muchas posibilidades. Este es solo un ejemplo.
caja térmica de campo (ca25 l)cualquiercaja fría NA (caja aislada) comúnmente utilizada para el transporte de alimentos
agua de ríocualquier
NA Placas de Petricualquier
con bulbo de globo (goteros)cualquierdiámetro del orificio 1 mm
peróxido de hidrógenocualquierNA
(ca 50 l) para el agua del ríocualquier
cualquierNAcomúnmente utilizado en la cocina
malla jaulas de construcción< / cuerpos de plástico fuertes>
principalescualquier
cubiertas plásticascualquierNA
tamices técnicos especiales 340 y micro; mSeda & ProgressUHELON 20 T tamices
técnicos especiales 100 µ mSeda & ProgressUHELON 67 M
manguera de goma (diámetro 5,5 mm)cualquierNA
cualquier
cualquierNA
cualquierde acero NA
cualquierNA
cualquiervaso
cualquier
Platos de plástico NA (aprox. 25x15x3-5cm)cualquier
cualquierNA
cualquier
cualquier
cualquierNA
cualquierNA
cualquierNA
jaulas arenosas fuertesfuerte
1 mmcualquier
2 mmcualquier
NA tamices técnicos especiales 340 & micro; mSeda & ProgressUHELON 20 T
cajas de plástico con tapa herméticacualquier
cualquierNA
(aprox. 250 x 150 x 100 cm)
cualquierpiedra
cualquierNA
redcualquierNA
arena de ríocualquierNA
contenedores redondoscualquierNA
lupasCarson CarsonCP 60Hay muchas posibilidades. Este es solo un ejemplo
jaulas fuertesregistradores > datos de
temperatura de campoONSETUA-001-64http://www.onsetcomp.com/products/data-loggers/ua-001-64
palacualquierNA
cualquierNAstrong
microscopio estereoscópico con zoom de disección trinocularBresser ópticoICD 10x-160xHay muchas posibilidades. Este es solo un ejemplo.
cámara digital/ ocular electrónicoBresser ópticoMikroCamLab 5MLas posibilidades son muchas. Este es solo un ejemplo.
Cinja de calibraciónAm ScopeSKU: MR100Las posibilidades son muchas. Este es solo un ejemplo.
fuente de alimentación externa con dos guías de luz móvilesArsenal K1309010150021Hay muchas posibilidades. Este es solo un ejemplo.
Software de imagenSoftware ImageJHay muchas posibilidades. Este es solo un ejemplo.
procesador de mesaMS excelHay muchas posibilidades. Este es solo un ejemplo.
NA , , NA pipetas Pasteur de plástico NA NA contenedor de plástico , colador de té de plástico NA, NA tornillo de acero tuerca de acero NA llave clavo pinza de precipitados NA botella de agua NA, protocolo de campo , papelería NA, recipiente de plástico NA, cuerda , martillo , tamiz NA adhesivo termofusible NA caja de plástico caja de plástico grande (aprox. 25 l) plana NA fuerte cepillo de dientes evaluación >< experimento

References

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