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Artículo de método

Lentivirales mediación producción de ratones transgénicos: un método Simple y altamente eficiente para el estudio directo de los fundadores

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DOI:

10.3791/57609

7 de octubre de 2018

En este artículo

Resumen

Aquí, presentamos un protocolo para promover la integración del transgén y la producción de ratones transgénicos fundador con alta eficacia por una simple inyección de lentivirales vector en el espacio perivitelino de un ovocito fertilizado.

Resumen

Durante casi 40 años, inyección pronuclear de ADN representa el método estándar para generar ratones transgénicos con la integración aleatoria de transgenes. Un procedimiento de rutina se utiliza extensamente en todo el mundo y su principal limitación reside en la pobre eficacia de la integración del transgén, resultando en un bajo rendimiento de los animales del fundador. Sólo pequeño porcentaje de animales nacidos después de la implantación de óvulos fertilizados inyectados ha integrado el transgén. Por el contrario, vectores lentivirales son poderosas herramientas para la transferencia de genes integradora y su uso para transducir ovocitos fertilizados permite producción altamente eficiente del fundador de ratones transgénicos con un rendimiento promedio superior al 70%. Además, cualquier cepa de ratón se puede utilizar para producir animales transgénicos y la penetrancia de la expresión del transgén es extremadamente alto, por encima del 80% con transgénesis mediada lentivirales comparado con microinyección de DNA. El tamaño del fragmento de ADN que puede ser carga por el vector lentivirales se limita a 10 kb y representa la principal limitación de este método. Usando un simple y fácil de realizar el procedimiento de inyección debajo de la zona pelúcida de ovocitos fertilizados, pueden producir más de 50 animales del fundador en una sola sesión de microinyección. Dicho método está altamente adaptado para llevar a cabo, directamente en los animales de fundador, rápida ganancia y pérdida de estudios de la función o a regiones de ADN genómicas de pantalla por su capacidad para controlar y regular la expresión génica en vivo.

Introducción

El trabajo pionero de Gordon et al. en 1980 demostró que después de la implantación en ratones seudopreñadas, la inyección de DNA de plásmido en la masculina pronúcleos de ovocitos fertilizados puede rendir la producción de animales transgénicos que integran el plásmido de ADN1. La demostración que mamíferos transgénicos pueden ser generados tuvo un enorme impacto en Ciencias de la vida mundiales, abriendo el camino a nuevos campos de investigación tanto en ciencias básicas y ciencias biomédicas traslacionales. En las últimas cuatro décadas, microinyección de ADN se ha convertido en una práctica habitual. Aunque se han produci....

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Protocolo

Todos los procedimientos que incluyen trabajo animal han obtenido aprobación ética y han sido autorizados por el Ministerio francés de investigación y educación bajo el número APAFIS #5094-20 v6 16032916219274 y 05311.02. El Animalario ICM PHENOPARC ha sido acreditado por el Ministerio francés de agricultura bajo el número de acreditación B75 13 19. El protocolo general requiere realizar cada procedimiento dentro de un marco de tiempo exacto que se resume en la figura 1.

1. animal compra y preparación de compuestos básicos

  1. Compra de animales
    1. Ordenar 25 machos vasectomizados B6CBAF1/JRj que son....

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Resultados

Animales transgénicos fueron generados usando el protocolo presentado aquí. Representante resultados tanto ubicua y expresión de transgenes específicos tipo de célula se ilustran.

Expresión constitutiva de transgenes

Promotores ubicuos son herramientas de investigación básica para expresar transgenes en forma sostenida y eficaz. Estos promotores se uti.......

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Discusión

La inyección perivitelino de vectores lentivirales en ovocitos fertilizados descritos aquí dio lugar a la producción de embriones transgénicos que rindió más del 70% de los embriones transgénicos en relación con el número total de embriones colectados. Este resultado es consistente con informes anteriores y ejemplifica la especificidad del procedimiento2,7,10,11,12<.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen ningún conflicto de interés que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos a Magali Dumont y Rolando Meloni para lectura crítica del manuscrito y iVector y Phenoparc ICM corazones para asistencia técnica en la producción de vectores lentivirales y animal vivienda respectivamente. Este trabajo fue financiado por el Instituto Hospitalo-Universitaire de Neurociencias Translationnelles de París, IHU-A-ICM, Avenir Investissements ANR-10-IAIHU-06. P.R. recibidas fondos para la Asociación de Langue Française pour l ' Etude du diabetes et des Maladies Métaboliques (ALFEDIAM) y un conjunto JDRF / INSERM conceder.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
PMSG 50UISigmaG4527
hCG 5000UISigmaCG5-1VL
NaClSigma7982
100 mm placa de PetriDutsher353003
4 pocillos Plato NuncDutsher56469Plato de FIV
M2 medioSigmaM7167
M16 medioSigmaM7292
0,22 y micro; m Filtro de jeringaDutsher146611
Enzima hialuronidasa 30mgSigmaH4272embrión de ratón probado
Serynge de insulinaVWR613-3867Terumo Myjector
Pinzas curvasMoria2183
Tijeras curvasMoriaMC26
Conjuntos de tubos de aspiración para pipetas microcapilares calibradasSigmaA5177-5EA
Capilares de vidrio de borosilicato AparatoHarvardGC 100-10
Extractor de micropipetas horizontalNarishigePN-30
MicroforgeNarishigeMF-900
Microscopio invertidoNikonTransferman NK2 5188Hoffman modulación iluminación de contraste
MicromanipuladorEppendorfCelltram aire
Controlador de pipeta de retenciónEppendorfFemtojet
Aceite mineralSigmaM8410embrión de ratón probado
MicroinyectorEppendorfFemtojetSe puede utilizar para inyectar ADN o vectores virales
Pinza Dumont # 5MoriaMC 40
vannas micro tijerasMoria9600
IsofluranocentravetISO005ISO-VET 100% 250ml
ocrygelcentravetOCR002
Povidone iodurecentravetVET001vetedine 120ml
BuprenorfinacentravetBUP002Buprecare 0,3Mg/ml 10ml
Tris-HClSigmaT5941Clorhidrato de Trizma
EDTASigmaE9884
SDSSigma436143
NaClSigmaS7653proteinasa en polvo
KSigmaP2308 
oneTaq kitNEBM0480L
PrimersEurogentec
Tira de 8 tubo de PCR4titude4ti-0781
termociclador de 96 pocillosApplied Biosystems4375786Veriti Genomic
DNA mini kitinvitrogenK1820-02
Nanodrop 2000Thermo ScientificND-2000C 
qPCR Master mixRoche4887352001SYBR Green 
Placa multipocillo 384Roche5217555001
instrumento qPCR 384 pocilloRoche5015243001LightCycler 480

Referencias

  1. Gordon, J. W., Scangos, G. A., Plotkin, D. J., Barbosa, J. A., Ruddle, F. H. Genetic transformation of mouse embryos by microinjection of purified DNA. Proceedings of the National Academy of Science USA. 77 (12), 7380-7384 (1980).
  2. Bock, T. A., Orlic, D., Dunbar, C. E., Broxmeyer, H. E., Bodine, D. M.

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Transg nesis lentiviralinyecci n perivitelinaanimales fundadoresvectores lentiviralest cnica de microinyecci ntransferencia de embrionesdisecci n del oviductomedio M16medio M2