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El método de conjunto de réplica: Un enfoque de alto rendimiento para cuantitativamente medida Caenorhabditis elegans vida útil

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DOI:

10.3791/57819

29 de junio de 2018

En este artículo

Resumen

Aquí describimos el método Replica Set, un enfoque cuantitativo medida vida útil/supervivencia de C. elegans y healthspan en forma robusta y de alto rendimiento, permitiendo la proyección de muchas condiciones sin sacrificar la calidad de los datos. Este protocolo detalla la estrategia y proporciona una herramienta de software para análisis de datos de conjunto de réplica.

Resumen

El método de conjunto de réplica es un enfoque para medir cuantitativamente vida útil o la supervivencia de los nematodos Caenorhabditis elegans en un modo de alto rendimiento, permitiendo que un solo investigador para más tratamientos o condiciones sobre la misma cantidad de tiempo sin pérdida de calidad de los datos. El método requiere equipos comunes en la mayoría de los laboratorios trabajando con C. elegans y así es fácil de adoptar. El enfoque se centra en análisis de muestras independientes de una población en cada punto de observación, en lugar de una sola muestra en el tiempo como con métodos tradicionales y longitudinales. Que implica la adición de líquido en los pocillos de una placa multi-bien, que estimula la C. elegans para mover y facilita la cuantificación de cambios en healthspan. Otros importantes beneficios del método Replica Set incluyen la exposición reducida de la superficie del agar a contaminantes en el aire (e.g. moho u hongo), manejo de animales y robustez a esporádicos mal anotar (como llamar a un animal como muerto cuando aún es mínima viva). Para adecuadamente, analizar y visualizar los datos de un experimento de estilo de conjunto de réplica, también se desarrolló una herramienta de software a la medida. Capacidades actuales del software incluyen ploteo de curvas de supervivencia para tanto réplica establecido y tradicional (Kaplan-Meier) experimentos, así como el análisis estadístico de conjunto de réplica. Los protocolos que aquí describen el enfoque experimental tradicional y el método Replica Set, así como un resumen de los análisis de datos correspondientes.

Introducción

Uno de los avances tecnológicos más transformadoras hacia la comprensión de la base genética del envejecimiento era el desarrollo de alimentación basado en RNAi en la C. elegans1; antes del uso experimental de RNAi, muchos fenotipos de envejecimiento no eran genéticamente manejables. Alimentación basado en RNAi se logra a través de la producción de dsRNA dentro de e. coli que coincide con un endógeno mRNA de C. elegans : IPTG induce la transcripción bidireccional a través de una inserción del cDNA de C. elegans u o una porción de un marco de lectura abierto dentro de un plásmido2

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Protocolo

1. tradicional método Scoring C. elegans longevidad

  1. Preparación de los reactivos
    1. Identificar los genes para ser inactivado mediante RNAi basado en la alimentación. Comprar acciones transformadas de HT115 e. coli2 con el clon de ARNi de interés. Por otra parte, subclone del cDNA del gen de interés en el sitio multicloning del plásmido L4440.
      Nota: HT115 es una ARNasa III-deficientes e. coli cepa con actividad polimerasa T7 IPTG inducible, que se utiliza para prevenir la degradación de dsRNA dentro de las bacterias. Para estudios de vida útil que no usan ARNi basado en alimentació....

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Resultados

En el desarrollo de cualquier nueva metodología, es imperativo que el nuevo método recapitula los resultados aceptados de los enfoques anteriores y cumple con el estándar dentro de un campo. Previamente hemos demostrado empíricamente que el conjunto de réplica y los métodos tradicionales de análisis de la vida de C. elegans producen similares resultados20. Tipo C. elegans (N2) mantenidos a 20 ° C por lo general viven entre 20 y 25 días, que observ.......

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Discusión

Los métodos sets tradicionales y réplica requieren la sincronización de animales cronológicamente envejecidas. Se incluye un método que sincroniza animales con tratamiento de hipoclorito de adultos grávidos, donde sólo los huevos fertilizados con el adulto grávido sobreviven el tratamiento. Los embriones eclosionan en suspensión líquida y detención de desarrollo en el primer estadio larval (L1). Después de la siembra L1 animales en alimentos (por ejemplo e. coli expresando dsARN a un gen de interés), an.......

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Divulgaciones

Los autores declaran que no tienen intereses financieros que compiten.

Agradecimientos

La financiación para este trabajo se describe en este manuscrito fue proporcionada por: la oficina de la Universidad de Rochester del rector y la Facultad de medicina y odontología Decanato mediante el centro de Ciencias de la salud innovación computacional (HSCCI); el Ellison médico nuevo de becados de Fundación en Aging Fellowship (AG-NS-0681-10) los fundadores no tenían ningún papel en el diseño del estudio, recopilación de datos y análisis, publicación o preparación del manuscrito.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
IPTG (isopropil beta-D-1-tigalactopiranósido)Gold Bio12481C100
FuDR (5-Fluoro-2'-desoxiuridina)Alfa AesarL16497
Placas de cultivo de 24 pocillosGreiner Bio-One#662102
Placa retangular de un solo pocillo sin tratar, 128x86mmThermo-Fisher242811
600 y micro; L Placas de 96 pocillosGreiner Bio-One#786261
2 ml Placas de 96 pocillosGreiner Bio-One#780286
Junta de placa permeable al aireVWR60941-086
replicador de placas de 96 pinesNunc250520
bactopeptonaVWR90000-368
agar bacteriológicoAffymetrix/USB10906
Biblioteca de clones de ARNi de C. elegans en bacterias HT115- Ahringer Fuente:Bioscience Colecciónde ARNi de C. elegans (Ahringer)Véase también Kamath et. al, Nature 2003.
Biblioteca de clones de ARNi de C. elegans en bacterias HT115- Fuente VidalBioscienceC. elegans ORF-RNAi Resource (Vidal)Véase también Rual et. al, Genome Research 2004. Esta biblioteca también está disponible en Dharmacon.
WormLife- Software para el análisis de supervivencia de conjuntos de réplicasSamuelson LabN/Ahttps://github.com/samuelsonlab-urmc/wormlife
L4440 Plásmido de vector vacíoAddgene1654https://www.addgene.org/1654/
Wormbasehttp://www.wormbase.org/ 
OASIShttps://sbi.postech.ac.kr/oasis2/ 
Prismahttps://www.graphpad.com/scientific-software/prism/ 
Graphpad

Referencias

  1. Timmons, L., Fire, A. Specific interference by ingested dsRNA [10]. Nature. 395 (6705), 854(1998).
  2. Kamath, R. S., Martinez-Campos, M., Zipperlen, P., Fraser, A. G., Ahringer, J. Effectiveness of specific RNA-mediated interference through ingested double-stran....

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Etiquetas

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