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Artículo de método

Infecciones del arbovirus como herramientas de detección para la identificación de factores antivirales inmunomoduladores y anfitrión Viral

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DOI:

10.3791/58244

⸱

13 de septiembre de 2018

 ,  , 
1Department of Microbiology, University of Texas Southwestern Medical Center

En este artículo

Resumen

Aquí, presentamos los protocolos para identificar inmunomoduladores 1) virus-codificado que promueven la replicación de arbovirus y host 2) eucariotas factores que limitan la replicación de arbovirus. Estos métodos basados en fluorescencia y luminiscencia permiten a los investigadores obtener rápidamente lecturas cuantitativas de la replicación de arbovirus en análisis simplistas con proporciones bajas de señal a ruido.

Resumen

Interferencia de RNA - y genoma de edición basados en plataformas de detección han sido ampliamente utilizados para identificar los factores de la célula huésped que limitan la replicación del virus. Sin embargo, estas pantallas se realizan normalmente en las células que son naturalmente permisivas al patógeno viral bajo estudio. Por lo tanto, la sólida réplica de virus en condiciones de control puede limitar el rango dinámico de estas pantallas. Además, estas pantallas no puede identificar fácilmente las vías de defensa celular que limitan la replicación del virus si el virus es capaz de contrarrestar las defensas antivirales y bien adaptado al host. En este artículo, describimos un nuevo paradigma para explorar interacciones virus-huésped mediante el uso de pantallas que a abortado naturalmente infecciones por arbovirus como el virus de la estomatitis vesicular (VSV). A pesar de la capacidad de VSV para replicar en una amplia gama de insecto díptero y anfitriones mamíferos, VSV experimenta una infección abortiva post entrada en una variedad de líneas celulares derivadas de insectos lepidópteros, como la polilla gitana (Monacha anaerobias). Sin embargo, estas infecciones abortivas de VSV pueden ser "rescatadas" cuando las defensas antivirales de la célula anfitrión están en peligro. Describimos cómo VSV cepas codificación genes del reportero conveniente y restrictivas dispar L. líneas celulares pueden ser asociadas a las pantallas de configuración para identificar factores de host involucrados en la restricción de arbovirus. Además, también mostramos la utilidad de estas herramientas de investigación en la identificación de factores codificados viralmente que rescatar replicación VSV durante la coinfección o a través de la expresión ectópica, las codificadas por los virus de mamíferos incluidas. La restricción natural de replicación de VSV en dispar L. células proporciona una alta relación señal a ruido cuando la detección de las condiciones que promueven el rescate VSV, permitiendo el uso de simplista luminiscencia y fluorescencia-ensayos para controlar los cambios en la replicación del VSV. Estas metodologías son valiosas para la comprensión de la interrelación entre respuestas antivirales del huésped y factores de evasión inmune viral.

Introducción

La capacidad de un virus para replicar productivamente en un anfitrión particular se rige en parte por la disponibilidad de factores de la célula huésped que admiten entrada viral y replicación1. La gama de virus también puede ser dictada por la capacidad de un virus a contador celular antiviral las defensas que de lo contrario impediría la replicación viral2,3. Es el resultado de estas interacciones virus-huésped complejos que en última instancia decide si un virus será capaz de completar su ciclo de vida en un anfitrión particular. Dadas las consecuencias potencialmente patógenas para el host si sobreviene la replicación viral, es fundamental para el desarrollo de estrategias experimentales para mejorar nuestra comprensión de las interacciones virus-huésped claves que pueden inclinar la balanza entre abortivos y productivo infecciones. Dilucidar las características moleculares de la interacción virus-huésped será instrumental en el desarrollo de estrategias terapéuticas antivirales nuevos y alternativos.

Con el advenimiento del RNA de interferencia (ARNi)4,5 y herramientas de edición de genoma (e.g., CRISPR Cas9, Zinc finger nucleasas, TALENs)6,7, se ha convertido en experimentalmente factible modificar el expresión de factores celulares de todo el genoma de escalas y explorar el impacto de estas alteraciones en la replicación del virus. De hecho, se han realizado numerosos ARNi y genoma de edición basado en pantallas en tipos de la célula huésped invertebrados y vertebrados que han dado a conocer nuevas facetas de interacción virus-huésped8,9,10, 11 , 12. estas pantallas suelen emplean virus codificación reporteros, como luciferasa de luciérnaga (LUC) o proteínas fluorescentes (e.g., GFP, DsRed), que proporcionan medios convenientes de evaluar cuantitativamente la expresión viral del gene como una lectura para la replicación viral9,12. Esta estrategia permite a los investigadores a identificar los factores de huésped que sea promoverán o antagonizan la replicación viral como lo demuestran los aumentos o disminuciones, respectivamente, en reportero viral señales9,12. Sin embargo, en la mayoría de los casos, estas pantallas se han realizado utilizando virus que están bien adaptadas para el tipo de célula de host en el que se están estudiando. Mientras que esta estrategia puede ser importante para la comprensión de las relaciones coevolutivas entre los patógenos virales y sus anfitriones naturales, existen preocupaciones fundamentales en cuanto a su uso en descubrir factores antivirales de host. En estos casos, una mejora en reporter virus señal sobre RNAi caída está siendo buscada, o la inactivación de un factor celular que normalmente impide la replicación viral. En primer lugar, si un virus ya es capaz de replicar enérgicamente en la célula huésped siendo examinada bajo condiciones de control, el rango dinámico de la pantalla (es decir, la capacidad de distinguir entre fondo y señales mejoradas reportero viral) puede ser limitado. En segundo lugar, este problema se agrava aún más por las situaciones en que el virus está bien adaptada a la célula huésped y eficaz en la lucha contra vías de defensa del anfitrión que se apunta en la pantalla.

Debido a las preocupaciones anteriores sobre interacción virus-huésped tradicionales métodos de cribado, se desarrolló un nuevo paradigma para el estudio de las interacciones virus-host que explotan infecciones del arbovirus naturalmente abortiva en células de los insectos lepidópteros. Esta estrategia deriva de una observación que los arbovirus humanos estudiados, VSV, sufre una infección abortiva en las células derivadas de la polilla gitana (L. anaerobias)13. VSV es transmitido naturalmente por insectos díptero (es decir, moscas de la arena) a los anfitriones mamíferos y se ha demostrado experimentalmente para infectar a una amplia gama de invertebrados y vertebrados hospedadores en celular cultivo e in vivo14. El genoma de ARN monocatenario de 11 kb sentido negativo de VSV codifica cinco mRNAs subgenómico que cada uno se traducen a las proteínas que forman el virión envuelto. Sin embargo, sistemas genéticos inversos VSV han permitido la creación de cepas réplica-competente codificación de LUC o proteínas fluorescentes, además de los cinco naturales VSV gene productos15,16,17. Porque estas proteínas del reportero no se incorporan en el virión VSV, proporcionan una lectura conveniente para la expresión de gene VSV que ocurre post entrada. Utilizando cepas VSV codifican GFP o LUC, previamente hemos demostrado que genes VSV es seriamente restricto a la entrada de las células LD652 y que títulos VSV no aumentan por la infección después de 72 horas (hpi). En contraste, la coinfección de células LD652 con VSV y los mamíferos poxvirus, virus vaccinia (VACV), conduce a aumento logarítmico en la expresión génica VSV y los títulos por este momento. VACV experimenta la expresión temprana de genes, replicación del ADN y tardía expresión génica en las infecciones LD652 de la célula, pero el ciclo de replicación VACV es en última instancia infructuoso debido a virión incompleta morfogénesis18. El genoma de ADN ~ 192 kb grande de VACV codifica proteínas > 200, muchos de los cuales mostrar propiedades inmunomoduladoras que promueven la replicación viral a través de la supresión del anfitrión inmunorespuestas19. Por lo tanto, la hipótesis de que el "rescate" de la replicación de VSV en células LD652 por coinfección VACV fue probablemente mediado por VACV inmunomoduladores que inhibían dispar L. respuestas normalmente restringir la replicación del VSV. En apoyo de esto, el tratamiento de las células LD652 con el inhibidor de host RNA polimerasa II actinomicina D también rescata replicación VSV en células LD652, que indica que las respuestas de acogida dependiente de la transcripción cuadra VSV replicación post entrada13.

Las observaciones anteriores sugieren que la naturaleza naturalmente restrictiva de las células LD652 a la infección de VSV puede proporcionar un fondo relativamente bajo cuando la detección de las condiciones que mejoran las señales reportero VSV-codificado (es decir, los que inhiben la host defensas antivirales). Aquí, ofrecemos los métodos para el uso de fluorescencia o ensayos de LUC a pantalla para condiciones que aliviar la restricción de VSV en células de lepidópteros. En primer lugar, mostramos cómo estos ensayos pueden utilizarse para identificar los factores inmunomoduladores virally codificado que restricción de VSV durante cualquiera de los dos experimentos de coinfección o a través de la expresión ectópica de factores virales candidato. Por ejemplo, ilustramos cómo utilizamos estas técnicas de proyección para identificar poxvirus codifican proteínas de A51R como una nueva familia de factores inmunomoduladores que rescatar replicación de VSV en ausencia de otros factores de poxvirus13. En segundo lugar, ilustramos cómo ARNi en restrictivas VSV-LD652 infecciones de células se puede utilizar para identificar directamente factores eucarióticos host arbovirus restricción13.

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Protocolo

1. general Monacha dispar (LD652) celular y cultivo de Virus

  1. LD652 célula de cultivo y de la galjanoplastia
    1. A la cultura dispar L.-derivado de las células LD652, mantener una monocapa de células en un medio de crecimiento (Tabla de materiales) se incubaron a 27 ° C en atmósfera normal. Mantener las células en platos tratados con tejido y cultura de 10 cm y paso de las células al llegar al 80% de confluencia.
    2. Para placa, desalojar las células adherentes de LD652 de la placa transfiriendo los medios de comunicación varias veces en la monocapa (estas células no requieren la tripsinización para desalojar) y diluir la muestra en medios de cultivo a una densidad aproximada de 1 x 105 células/mL. Pipetear 1 mL de cultura diluida/pozo de una placa de 24 pocillos. Un mínimo de tipo de tratamiento de pozos replicar o tres para cada punto de tiempo (un máximo de ocho tratamientos/placa) de la semilla.
    3. Permitir que las células que conformarse con un mínimo de 1 h.
  2. Preparación de virus de vaccinia
    1. Para preparar las acciones de VACV, amplifican el virus en HeLa células20 o células de riñón de mono verde africano (células BSC-1 o BSC-40)20,21,22.
      Nota: Cepa VACV Western Reserve (VACV-WR) funciona bien en los ensayos aquí descritos.
    2. Valorar el VACV cepa mediante placa ensayo en BSC-1 o células de BSC-4020,22.
      Nota: Todos indican multiplicidad VACV de infección (MOI) descrito aquí para LD652 infecciones de células se basan en títulos obtenidos de ensayos de placa de BSC-40.
  3. Preparación de virus de estomatitis vesicular
    1. Para preparar las acciones VSV, amplifican el virus en las células BHK23.
    2. Valorar VSV por ensayo de placa de BSC-40 o BHK células monocapas13,23.
      Nota: Todos los MOIs de VSV descrito aquí para LD652 infecciones de células se basan en títulos obtenidos de ensayos de placa de BSC-40.

2. VSV fluorescencia basada en ensayo de rescate usando proyección de imagen de células vivas y coinfección

  1. Siembra y la infección de las células LD652
    1. LD652 40.000 células/pozo de una cámara de 8 pocillos de la placa.
    2. Basados en fluorescencia células vivas imágenes, usar cepas VSV que codifican las proteínas fluorescentes. Los experimentos presentados aquí utilizan VSV-DsRed17, una cepa recombinante de VSV que expresa la proteína DsRed libre que no está fusionada a cualquier otra proteína VSV.
      Nota: VSV la infección de las células LD652 no es citopática por hpi 96 y, por lo tanto, la muerte celular no es un factor de confusión al evaluar la replicación VSV dentro de este marco de tiempo.
    3. Preparar VSV-DsRed y VACV-FL-GFP en un medio libre de suero (MFS; Tabla de materiales) en una MOI de 1 y 25, respectivamente.
      Nota: VACV-FL-GFP es una cepa recombinante de VACV que expresa una fusión entre LUC y GFP24. Usando una MOI de 25 o mayor para las cepas VACV asegura que todas las células del LD652 infectado13. Si está usando un virus coinfecting diferente, el Ministerio del interior tendrá que ser determinado empíricamente por el usuario. Cada tratamiento de la infección debería establecerse en los pocillos duplicados e incluyen tratamientos mock-infectados en los que sólo SFM se agrega a las células.
    4. Incubar las células en 0,2 mL de inóculo por 2 h a 27 ° C.
    5. Lavar las células con 0.5 mL o de medios de cultivo.
    6. Incubar las células en 25 μM de tinte de viabilidad celular (Tabla de materiales) en medios de cultivo durante 45 minutos a 27 ° C.
    7. Los medios de comunicación de aspirar y lavar los pocillos 1 x con 0.5 mL o bien para eliminar el exceso de tinte.
    8. Mantener las células en 0,3 mL/pozo de los medios de crecimiento.
  2. Captura de imágenes de células en vivo
    1. Encienda un microscopio confocal 30 min de anticipación y un plato de cámara 8-pozo de carga.
      Nota: LD652 las células pueden ser reflejadas a temperatura ambiente entre 20-25 º C, pero para condiciones óptimas, debe ajustarse la temperatura de la habitación a 27 ° C.
    2. Establecer la configuración adecuada de excitación/emisión para cada proteína del marcador fluorescente al ser reflejada, así como la configuración de imagen de contraste de fase.
    3. Ajustar la intensidad del láser para cada canal.
      Nota: Esto puede requerir ejecutar un experimento piloto para determinar el rango de intensidades de la señal fluorescente observada durante todo el tiempo para ser utilizado en el experimento final.
    4. Usando el objetivo de X 10, captura las imágenes de contraste y de la fluorescencia de fase de cada bien cada 1, 5 h para la duración de la infección hasta un punto del tiempo deseado (por ej., 48 – 72 hpi).
      Nota: Es importante capturar múltiples campos de vista en cada pozo para estimar con precisión las tasas de infección a través de la cultura.
  3. Análisis de imagen
    1. Utilizar software de análisis de imagen para análisis de imagen automatizado de canales adecuados de fluorescentes (e.g., 405 nanómetro, 488 nanómetro, 568 nm).
    2. Para calcular el porcentaje de células que están infectadas, dividir el número total de células fluorescentes indicando infección de VSV (por ej., células DsRed-positivos para las infecciones de VSV-DsRed) por el número total de células viables por tinte de viabilidad celular para cada campo de visión a través de todos los tratamientos.

3. general infección Viral protocolo para ensayos de rescate VSV luminescencia-basado en las células LD652

  1. Preparación del inóculo
    1. 30 min antes de la infección, descongelar las existencias de VSV-LUC16 (un recombinante VSV tensión expresa proteína luciferasa de luciérnaga libre no unida a cualquier otra proteína VSV). Si ensayando para el rescate de VSV-LUC durante la coinfección VACV, también descongelar el virus VACV-WR en el hielo.
      Nota: Otros virus (además de VACV-WR) pueden rescatar VSV-LUC durante la coinfección, pero esto tendrá que ser determinado empíricamente por cada usuario.
    2. Preparar el inóculo diluyendo VSV-LUC en la presencia o ausencia de VACV-WR en SFM que una MOI de 10 y 25, respectivamente, se obtiene cuando se agrega un volumen de inóculo total de 0,2 mL/pozo.
  2. Infección de las células
    1. Aspire maduros LD652 medios con cuidado para evitar molestar a la monocapa e inocular 0,2 ml de virus/bien. Este tiempo se define como 0 hpi. Añadir estéril SFM a pozos adicionales para servir como "mock-infectado" tratamientos de control negativo.
    2. Incubar las células en el inóculo por 2 h a 27 ° C.
    3. En hpi 2, retirar el inóculo por la aspiración de reemplazar con 1 mL y bien LD652 medios del crecimiento.
    4. Permiten la infección proceder a 24 – 72 hpi.

4. ensayo de luciferasa

  1. Preparación de lysates de la célula
    1. Cuidadosamente aspirar el sobrenadante y agregar 1 mL de solución salina de Dulbecco tamponada con fosfato (DPBS) bien.
    2. Utilizando el émbolo de una jeringa de 1 mL, raspar las células en DPBS.
    3. Transferir las células a un tubo de microcentrífuga y centrifugar a 400 x g por 20 min a 4 ° C.
    4. Mientras tanto, preparar la dilución de x 1 de 5 x buffer de lisis reportero (RLB) en estéril de H2O.
    5. Después de la centrifugación, Aspire la DPBS sin perturbar el sedimento celulares.
    6. Resuspender cada precipitado en 150 μL de 1 x RLB.
    7. Congelación y descongelación de las muestras 1 x usando una incubación de 5 minutos en un congelador de-80 ° C seguido de un rápido deshielo en un baño de agua temperatura ambiente. Almacenar los lisados a-80 ° C hasta que esté listo para analizar.
  2. Ensayo de luciferasa
    1. Descongelar los lisados en el hielo.
    2. Pipetear 20 μL de lisado en un pozo de una microplaca de 96 pozos negro o blanco sólido.
    3. Añada 100 μL de reactivo de ensayo de luciferasa a cada pocillo.
    4. Medir inmediatamente la intensidad de la luz utilizando un luminómetro (ajustes apropiados para luminómetros específico tendrá que ser determinado empíricamente por el usuario).
  3. Análisis de ensayo de luciferasa
    1. Normalizar el LU señales para cada tratamiento para lecturas de LU obtenidos de tratamientos de control (Resultados de representante). Después de que se han realizado por lo menos tres experimentos independientes, puede analizarse la media que Lu obtenida de cada grupo de tratamiento y control de pruebas estadísticas apropiadas.

5. Immunoblot

  1. Uso de lisados extraídos de los ensayos LUC para SDS-PAGE y el immunoblotting posterior, usando instrumentación y reactivos adecuados.

6. título de VSV de cultivos de células de LD652

  1. Células LD652 de la placa según el paso 1.1.
  2. Virales infectan las células según el paso 3.
  3. En puntos de tiempo deseado, recoger el sobrenadante en tubos estériles de microcentrífuga.
  4. Sedimenten las células usando 1.000 x g durante 10 min a 4 ° C y transferir el sobrenadante a tubos de nuevo.
  5. Guarde el sobrenadante a-80 ° C o proceder con la titulación de ensayo de placa de BSC-40 células.
    Nota: Si valorar VSV de cultivos de células de LD652 que contenía VACV, es aconsejable añadir 100 μg/mL el arabinósido de citosina (AraC) a los medios de cultivo de BSC-40 dentro de hpi 2, para evitar que las partículas residuales de VACV formando placas en monocapas de BSC-4013. AraC es un inhibidor de la ADN polimerasa viral que bloquea la replicación de ADN VACV25 pero no afecta a la replicación de VSV.

7. variaciones de VSV basados en luminiscencia rescatar ensayos en células LD652: ARNi y experimentos de transfección del plásmido

  1. Preparación de dsRNA de caída RNAi-mediada de viral o transcripciones
    1. Cartillas de gene-específicas del diseño de cola en el extremo 5' con la secuencia de promotor de T7 (TAATACGACTCACTATAGGG) o dirigirse a coinfecting virus (p. ej., VACV) o dispar L. certificados de ARNm de interés. Estos iniciadores deben producir un producto PCR de 400 – 600 bp por caída efectiva de RNAi-mediada. Ver Gammon et al. 13 para las secuencias de la cartilla solía debajo de precipitación VACV o dispar L. transcripciones por RNAi mediado por el dsRNA en las células LD652.
      Nota: Dispar L. mRNA las transcripciones pueden ser identificadas desde publicado dispar L. transcriptoma bases de datos26,27,28.
    2. Generar un ADN plantilla mediante RT-PCR (síntesis de cDNA: 1 ciclo de 50 ° C para 30 min; PCR: 40 ciclos de 94 ° C por 15 s, 50 ° C para 30 s y 68 ° C por 45 s cada uno).
    3. Purificar el producto PCR utilizando un kit de potabilización de la polimerización en cadena.
    4. Usando el producto PCR purificado como plantilla, vitro en transcribir y purificar el dsRNA utilizando una en vitro transcripción y purificación kit.
  2. Transfección de dsRNA o ADN plásmido en las células LD652
    1. Semilla 1 x 105 células/pocillo de una placa de 24 pocillos y dejar que las células a reposar al menos 1 h.
    2. Para que cada pozo a ser transfectadas, diluir 4 μL de reactivo de transfección en 100 μL de la OFS. Incubar a 15 min a temperatura ambiente. Esto puede ampliarse para hacer una mezcla maestra de transfecciones todos a realizar.
    3. Diluir hasta 1 μg de dsRNA o ADN de plásmido total con 100 μL de SFM para cada pozo a ser transfectadas. Incubar a 15 min a temperatura ambiente.
      Nota: Previamente hemos encontrado que una transfección de 1 μg de dsARN/105 LD652 células es suficiente para > 80% caída de ya sea viral o transcripciones13, pero dosis de dsARN necesarios para modificados experimental set-ups y condiciones tendrá que determinarse empíricamente.
    4. Diluciones de transfección reactivos y dsRNA/plásmido de DNA con una proporción de 1:1 se combinan (e.g., 100 μL de dsRNA diluido se mezcla con 100 μL de reactivo de transfección diluido) e incubar por 20 min a temperatura ambiente.
    5. Mientras tanto, lavar los pocillos con 1 mL/pozo de la OFS y luego añadir 500 μL de la OFS a cada pocillo.
    6. Lentamente agregar el reactivo de transfección dsRNA (o ADN plásmido) mezcla gota a gota en cada pocillo.
    7. Incubar el reactivo de transfección con las células de 5 horas.
      1. Para RNAi experimentos que implican la caída de la transcripción codificado por el virus coinfecting (p. ej., VACV), vuelva a colocar el reactivo de transfección después del período de incubación de 5 h de la transfección con inóculo de virus que contiene VSV-LUC (con o sin VACV o otro virus coinfecting) (paso 3). Posteriormente, vuelva a colocar el inóculo de virus que contiene VSV-LUC con crecimiento completo media 2 hpi. Ensayos de LUC (paso 4) pueden entonces realizarse en lisados extraídos en diferentes puntos del tiempo para determinar si la caída de coinfecting transcripciones del virus conduce a una pérdida de rescate VSV-LUC.
      2. Para experimentos de RNAi con RNAi de dispar L. transcripciones, vuelva a colocar la mezcla de transfección con medios de crecimiento completa y permitirá a derribo a sobrevenir durante 24 h antes de la infección con VSV-LUC (paso 4). Ensayos de LUC (paso 4) pueden entonces realizarse en lisados extraídos en diferentes puntos del tiempo para determinar si la caída de las transcripciones de dispar L. promueve rescate de VSV-LUC.
      3. Para experimentos transfecciones de vectores de expresión de plásmidos expresar candidato inmunomoduladores, vuelva a colocar el reactivo de transfección y permitir la expresión de la proteína durante 24 h antes de la infección con VSV-LUC (paso 4). Ensayos de LUC (paso 4) pueden entonces realizarse en lisados extraídos en diferentes puntos del tiempo para determinar si la expresión de proteínas inmunomoduladoras de candidato promueve rescate de VSV-LUC.
        Nota: Las transfección condiciones descritas aquí en 1 μg/pocillo de resultado de ADN de plásmido de eficacias de transfección de 40 – 60%13.

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Resultados

Como ejemplo de células vivas aplicaciones para supervisar el rescate VSV en coinfección VACV, LD652 células fueron plateadas en un pozo de 8 cámara plato y mock-infectados o infectadas con VSV-DsRed (MOI = 1) en la presencia o ausencia de VACV-FL-GFP (MOI = 25). Porque VSV-DsRed expresa DsRed como una proteína libre y no está unido a proteínas estructurales de VSV (figura 1A), sólo se detecta después de inicia de VSV entrada y expresión genética. Todas las c...

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Discusión

Aquí hemos descrito simple fluorescencia y luminiscencia-ensayos para detectar condiciones que rescatar replicación de VSV en cultivos celulares de lepidópteros restrictivas. La infección abortiva de VSV en lepidópteros células crea una excelente relación señal-ruído cuando ensayando para la expresión de gene VSV. Por ejemplo, las señales de LU en lisados de infecciones VSV-LUC solo eran ~ 1,000-fold superior en mock-infectados lisados, pero estas señales solamente cambiaron aproximadamente doble en un transcurso de tiem...

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

D.G. fue apoyado por fondos de programa de la Universidad de Texas Southwestern Medical Center dotado. Los autores agradecen la disposición de VSV-DsRed y VSV-LUC Michael Whitt (la Universidad de Tennessee Health Science Center) y Sean Whelan (Harvard Medical School). Los autores también agradecen Gary Luker (escuela de medicina de la Universidad de Michigan) el amable don de la cepa VACV-FL-GFP.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
placas de cultivo de tejidos de 6 pocillosCELLTREAT229106
placas de cultivo de tejidos de 24 pocillosCELLTREAT229124
placas de cultivo de tejidos de 10 cmCorningC430167
Grace' s Medio para insectosSigmaG8142
EX-CELL 420Sigma14420C
Suero fetal bovino - OptimaAtlanta BiologicalsS12450
Medio de crecimiento1:1 mezcla de Grace's Insect Medium y EX-Cell 420 Serum-Free Medium que también contiene un 1% de solución antibiótica-antimicótica y un 10% de suero fetal bovino
Solución antibiótica-antimicótica (100&veces;)SigmaA5955
Dulbecco' s Solución salina tamponada con fosfato (DPBS)SigmaD8662
Medios libres de suero (SFM)Thermo Fisher10902096
arabinósido de citosinaSigmaC1768
Reactivo de transfecciónThermo Fisher10362100
Corning cellgro DMSO (dimetilsulfóxido)Corning25950CQC
Tampón de lisis reportero 5xPromegaE3971
Reactivo de ensayo de luciferasaPromegaE1483
Microplacas de 96 pocillosCorning3915
Anticuerpo anti-FLAG de ratónWako014-22383
Anticuerpo luciferasa antiluciferasa antiluciérnaga de conejoAbcamab21176
Anticuerpo antiactina de ratónSigmaA2066
Anti-VSV M/AN/ADr. John Connor (Universidad de Boston)
Anti-VACV para ratones I3L/AN/ADr. David Evans (Universidad de Alberta)
Plato de 8 pocillosLab-Tek II
Tinte de viabilidad celular ThermoFisherC12881
FLUOstar lector de microplacasBMG LabtechFLUOstar
Microscopio confocalOlympusFV10i-LIV
Software de análisis de imágenesOlympusv1.18software cellSens
Centrífuga ventilada Eppendorf 5702Eppendorf22628102
Odyssey Fc Sistema de imagen infrarrojaLi-COR BiosciencesOdyssey Fc
LD652 célulasN/AN/ADr. Basil Arif (Recursos Naturales Canadá)Células
BSC-40Células ATCCCRL-2761
Células BHKCélulas ATCCCCL-10
HeLa CélulasATCCCCL-2
Células BSC-1ATCCCCL-26
in vitro kit de transcripción y purificaciónThermo FisherAM1626
Kit de purificación para PCRQiagen28104
N N 155409

Referencias

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  4. Silva, J. M., et al. Second-generation shRNA libraries covering the mouse and human genomes. Nature Genetics. 37 (11), 1281-1288 (2005).
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