Se describe un protocolo paso a paso para cromatina tándem inmunoprecipitación secuenciación (tChIP-Seq) que permite el análisis de modificaciones específicas del tipo de célula genoma histona.
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Artículo de método
Se describe un protocolo paso a paso para cromatina tándem inmunoprecipitación secuenciación (tChIP-Seq) que permite el análisis de modificaciones específicas del tipo de célula genoma histona.
Regulación epigenética juega un papel central en la expresión génica. Puesto que la modificación de las histonas se descubrió en la década de 1960, sus funciones fisiológicas y patológicas se han estudiado ampliamente. De hecho, la llegada de próxima generación secuenciación profunda e inmunoprecipitación de cromatina (ChIP) mediante anticuerpos de modificación específica de la histona ha revolucionado nuestra visión de la regulación epigenética a través del genoma. Por el contrario, tejidos consisten en típicamente tipos celulares diferentes, y su mezcla compleja plantea desafíos analíticos a investigar el epigenoma en un tipo de célula particular. Para abordar el estado de cromatina tipo específico de célula en forma de genoma, recientemente desarrollamos tándem cromatina inmunoprecipitación secuenciación (tChIP-Seq), que se basa en la purificación selectiva de la cromatina por las proteínas de histona etiquetado núcleo de célula tipos de interés, seguido por ChIP-seq. El objetivo de este protocolo es la introducción de mejores prácticas de tChIP-SS. Esta técnica proporciona una herramienta versátil para la investigación de tejidos específicos epigenoma en modificaciones de las histonas diversas y organismos modelo.
Los tejidos de los animales consisten en tipos de células diferentes. La regulación del gene en cada célula define el tipo de célula. Modificaciones de la cromatina - ADN metilación e histona modificación - ser la base de la especificidad del tipo de la célula de la expresión génica. Así, la medición de la regulación epigenética en cada tipo de célula ha sido deseada, pero ha sido un desafío técnico.
Para investigar la epigenética en un tipo de célula particular, la secuencia de inmunoprecipitación de cromatina tándem (tChIP-Seq) fue recientemente desarrollado ()figura 1)
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Todos los métodos descritos han sido aprobados por la división de seguridad de RIKEN (H27-EP071) y llevado a cabo con reglamentos y directrices pertinentes.
1. disección del tejido
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Aquí, describimos la disección del tejido, fijación, lisis celular, purificación del tándem de cromatina y preparación de biblioteca de DNA para secuenciadores de última generación. Durante los procedimientos, uno puede probar la calidad de la DNA, que es la clave para la secuencia del éxito, en varios pasos (figura 2). Puesto que un nucleosoma solo es rodeada típicamente por 147 bp DNA 4, esquilado ADN no debe ser menor que el tamaño........
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Nuestro protocolo se ha optimizado para las neuronas del cerebro de ratón, en el que la expresión de tagged bandera H2B es inducida por inyección de tamoxifeno. Promotores para expresión H2B, partida materiales de tejido y la cantidad de los tejidos son parámetros fundamentales para éxito tChIP-SS. Por lo tanto, la optimización de estos factores debe considerarse para cada tipo de célula de interés.
Un paso fundamental entre los procedimientos utilizados en el presente Protocolo es el ADN de c.......
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Los autores no tienen nada que revelar.
Agradecemos a todos los miembros del laboratorio de Iwasaki para lectura crítica del manuscrito. Este trabajo fue apoyado en parte por una subvenciones para la investigación científica en áreas innovadoras (26113005 # S.N. y JP17H05679 a S.I.); subvenciones para jóvenes científicos (A) (JP17H04998 a S.I.) del Ministerio de educación, ciencia, deportes y cultura de Japón (MEXT); y la pionera proyectos "Evolución celular" y todos los proyectos RIKEN "Enfermedad y epigenoma" de RIKEN (a MATR y S.I.).
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Tubo LoBind de proteínas, 2 mL | Eppendorf | No. 0030108132 | Para lisis celular |
| Tubo LoBind de proteínas, 1,5 mL | Nº Eppendorf | 0030108116 | Para ChIP y preparación de bibliotecas |
| Tubo LoBind de ADN, 1,5 mL | Nº Eppendorf | nbsp; 0030108051 | Para ChIP y preparación |
| de bibliotecas Tubo de PCR de 8 tiras | BIO-BIK | 3247-00 | Para ChIP y preparación de bibliotecas |
| SK Mill | TOKKEN | SK-200 | Práctico molinillo criogénico para hacer polvo de células para la fijación |
| Bala de metal | TOKKEN | SK-100-DLC10 | Accesorio de SK Mill |
| Tubo de acero inoxidable de 2 mL | TOKKEN | TK-AM5-SUS | Una opción para la célula lisis |
| 2 mL soporte de tubo de acero inoxidable | TOKKEN | SK-100-TL | Una opción para la lisis celular |
| 16% formaldehído (p/v), sin metanol | Pierce | 28906 | Para fijar células. Prepare la solución al 1% antes de usar. |
| Glicina | Nacalai Tesque | 17109-35 | Preparar 2,5 M de stock |
| D-PBS (-)(1x) | Nacalai Tesque | 14249-24 | Para el lavado de lisado y ADN purificado |
| HEPES | Nacalai Tesque | 02443-05 | Para tampón de lisis 1. Preparar 1 M, pH 7,5 caldo. |
| 5 M NaCl, grado de biología molecular | Nacalai Tesque | 06900-14 | para tampón de lisis 1, tampón de lisis 2, tampón de elución ChIP y tampón Tris-EDTA-NaCl |
| 0,5 M EDTA, grado de biología molecular | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 311-90075 | Para tampón de lisis 1, tampón de lisis 2, tampón de elución ChIP y tampón Tris-EDTA-NaCl |
| glicerol | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 072-04945 | Para tampón de lisis 1 |
| NP-40 | Nacalai Tesque | 25223-75 | Para tampón de lisis 1 |
| Triton X-100, grado de biología molecular | Nacalai Tesque | 12967-32 | Para tampón de lisis 1 |
| Tris | Nacalai Tesque | 35406-91 | Para tampón de lisis 2, tampón de elución ChIP y tampón Tris-EDTA-NaCl. Prepare caldo de 1 M, pH 8.0. |
| 0.1 M EGTA pH neutro | Nacalai Tesque | 08947-35 | Para tampón de lisis 2 |
| Cóctel de inhibidores de proteasa (100x) | Nacalai Tesque | 25955-24 | Para bloquear la degradación de proteínas |
| Tampón RIPA | Thermo Fisher Scientific | 89900 | Para lisis celular y lavado |
| milliTUBE 1 mL AFA Fiber | Covaris | 520130 | Tubo sonicador. Accesorio de ultrasonido enfocado |
| ultrasonido enfocado | Covaris | S220 o E220 | Para digerir el ADN en el tamaño adecuado para ChIP-Seq |
| UltraPure 10% SDS | Thermo Fisher Scientific | 15553-027 | para ChIP Tampón de elución |
| RNasa A | Nacalai Tesque | 30141-14 | Para purificar el ADN del lisado |
| Proteinasa K, recombinante, Grado PCR | Sigma-Aldrich | 3115887001 | Para purificar el ADN del etanol lisado |
| Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 054-07225 | Hacer una solución al 70% | |
| Anticuerpo monoclonal anti-FLAG M2 producido en ratón | Sigma-Aldrich | F1804 | Para purificar la cromatina expresada en células de interés |
| Dynabead M-280 Sheep Anti-Mouse IgG | Thermo Fisher Scientific | 11201D | Esto se puede utilizar para anti-FLAG IP y anti-H3K4me3 IP |
| Anti-tri-metilhistona H3 (K4), anticuerpo monoclonal de ratón | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 301-34811 | Cualquier otro anticuerpo que funcione para el análisis de ChIP funcionará |
| 10x Reactivo de bloqueo | Sigma-Aldrich | 11096176001 Para el bloqueo durante la purificación por afinidad | |
| Denhardt' s solución | Nacalai Tesque | 10727-74 | Para el bloqueo durante la purificación por afinidad |
| Glucógeno (5 mg/ml) | Thermo Fisher Scientific | AM9510 | Para purificar ADN a partir de lisado |
| Qubit 2.0 Fluorímetro | Thermo Fisher Scientific | Q32866 | Para la cuantificación de ADN aislado |
| Qubit dsDNA HS Assay Kit Thermo | Fisher Scientific | Q32851 | Para la cuantificación de ADN aislado |
| Tubo de 0,5 mL | Axygen | 10011-830 | Para cuantificación por Qubit |
| Fenol/cloroformo/alcohol isoamílico (25:24:1) | Nacalai Tesque | 25970-56 | Para purificar el ADN del lisado |
| Cuentas AMPure XP | Beckman Coulter | A63881 | SPRI perlas magnéticas para la preparación de bibliotecas |
| Cubitera metálica | Funakoshi | IR-1 | Para mantener congelado el lisado celular |
| Enfriador | de muestras New England Biolabs | T7771S | Ayuda a reparar las células con un daño mínimo |
| 2100 Bioanalyzer | Agilent Technologies | G2939BA | Para comprobar la calidad de los fragmentos de ADN aislados. Se puede utilizar otro analizador de fragmentos. |
| Bioanalyzer 2100 Expert Software | Agilent Technologies | G2946CA | suministra con el kit de |
| ADN de alta sensibilidad | Agilent Technologies | 5067-4626 | Para comprobar la calidad de los fragmentos de ADN aislados |
| KAPA LTP Library Preparation Kit | 07961898001 | Se suministra con 10 tampones de reparación de extremos KAPA, mezcla de enzimas de reparación de extremos KAPA, tampón de cola A de KAPA, enzima de cola KAPA, tampón de ligadura de KAPA, ligasa de ADN KAPA y solución de PEG / NaCl | |
| Códigos de barras de ADN NEXTflex Adaptador | BIOO Scientific | NOVA-514101 | para la preparación de bibliotecas. Se suministra con adaptadores de código de barras DNA y mezcla de cebador. |
| Kit de amplificación de biblioteca en tiempo real KAPA | Roche 07959028001 | suministrado con 2 mezclas maestras de PCR en tiempo real KAPA HiFi HS, mezcla de cebadores de PCR y estándares fluorescentes | |
| 2 KAPA HiFi HotStart ReadyMix | Roche | KM2602 | para la preparación de bibliotecas. Además, esta enzima puede ser necesaria para el kit de amplificación de biblioteca en tiempo real KAPA |
| Tampón EB | Qiagen | 19086 | 10 mM Tris-Cl, pH 8,5 para la elución de ADN |
| Placa qPCR de 386 pocillos | Thermo Fisher Scientific | 4309849 | para PCR en tiempo real |
| QuantStudio 7 Flex Sistema de PCR en tiempo real | Thermo Fisher Scientific | 4485701 | Para cuantificar |
| la película adhesiva óptica MicroAmp de ADN | Thermo Fisher Scientific | 4311971 | Para PCR en tiempo real |
| MicroAmp Película adhesiva transparente | Thermo Fisher Scientific | 4306311 | para el sellado de placas |
| Mezcla | Combine 1.4 µ L de 10x Tampón de reparación de extremos KAPA, 1 µ L de KAPA End Repair Enzyme Mix, y 1.6 µ L de H2O | ||
| maestra A-taling | Combine 1 µ L de tampón de relaves KAPA A, 0,6 y micro; L de la enzima de cola KAPA A, y 8.4 µ L de H2O | ||
| tampón de ligadura | Combine 2 µ L de tampón de ligadura KAPA y 6 µ L de H2O | ||
| maestra de PCR en tiempo real | Combine 5 µ L de 2x KAPA HiFi HS PCR en tiempo real Master Mix, 0.35 y micro; L de mezcla de cebadores para PCR (10 y micro; M cada uno de los cebadores delanteros AATGATACGGCGACCACCGAG y cebadores inversos (CAAGCAGAAGACGGCATACGAG), y 3.15 µ L de H2O | ||
| PCR master mix | Combine 10 µ L de 2x KAPA HiFi Ready Mix, 0.9 y micro; L de mezcla de cebadores PCR, y 0,6 y micro; L de H2 | ||
| O Visor de Genómica Integrativa | Broad Institute | IGV_2.3.88 | Navegador de genoma para visualizar datos de secuenciación |
| Oligionucleótido de ADN: 5′-GCCTACGCAGGTCTTGCTGAC-3′ | Eurofins Genomics | Un cebador para amplificar la región promotora del | |
| olgionucleótido de ADN GAPDH: 5′-CGAGCGCTGACCTTGAGGTC-3′ | Eurofins Genomics | Un cebador para amplificar la región promotora de GAPDH | |
| SYBR Premix Ex Taq | Takara | RR420L | Para cuantificar el ADN correspondiente a la región promotora de GADPH |
| Termociclador Dice | Takara | TP870 | Para cuantificar el ADN correspondiente a la región promotora de GADPH |
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