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Artículo de método

Planta de crecimiento y transformación mediada por Agrobacterium de baño Floral de la Extremophyte Schrenkiella parvula

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DOI:

10.3791/58544

7 de enero de 2019

En este artículo

Resumen

Transformación mediada por Agrobacterium utilizando un método de inmersión floral puede ser empleado con éxito para crear líneas transgénicas estables del modelo extremophyte Schrenkiella parvula. Presentamos un protocolo modificado de eso para Arabidopsis thaliana, teniendo en cuenta los hábitos de crecimiento diferentes y características fisiológicas de la extremophyte.

Resumen

Schrenkiella parvula es un extremophyte adaptado a varios abiótico, incluyendo múltiples tensiones de la toxicidad de iones. A pesar de recursos genómicos de alta calidad disponibles para el estudio de cómo las plantas se adaptan a ambiente destaca, su valor como un modelo de genómica funcional y la herramienta ha sido limitada por la falta de un sistema de transformación posible. En este protocolo, informe cómo generar transgénicos estable S. parvula líneas utilizando un método de inmersión floral mediada por Agrobacterium. Modificamos el protocolo de transformación utilizado para a. thaliana para tener en cuenta las características únicas de S. parvula, como un hábito de floración indeterminada y un contenido alto de cera epicuticular en las hojas. Brevemente, las semillas de S. parvula se estratificaron a 4 ° C durante cinco días antes de la siembra. Las plantas fueron cultivadas en un fotoperiodo de luz 14 h y 10 h oscuro y una 130 μmol m-2s-1 intensidad de la luz, a 22 ° C a 24 ° C. Ocho a nueve semanas de edad las plantas con inflorescencias múltiples fueron seleccionado para la transformación. Estas inflorescencias se sumergieron en una solución de infiltración de Agrobacterium tumefaciens GV3101 llevan el plásmido pMP90RK . Se realizaron dos rondas de flor de inmersión con un intervalo de tres a cuatro semanas para aumentar la eficiencia de transformación. Las semillas de T1 fueron recogidas y secadas durante cuatro semanas en un recipiente con desecante antes de germinación a pantalla para candidato transforma líneas. Resistencia a la BASTA fue utilizada para plantas de T1. Pulveriza la solución BASTA tres veces con un intervalo de tres días a partir de dos semanas de edad las plantas reducir falsos positivos. Se realizó una prueba de gota BASTA de sobrevivir las plantas individuales para identificar transformantes positivo verdadero. La eficiencia de transformación fue 0,033%, obtención de plantas transgénicas de 3 a 4 por 10.000 semillas T1 propagadas.

Introducción

En este protocolo, se describen el crecimiento y establecimiento de líneas transgénicas estables para el modelo extremophyte Schrenkiella parvula. La disponibilidad de un sistema eficiente de transformación es una característica distintiva de cualquier modelo genético. Plantas que prosperan en ambientes extremos, que se refiere como extremophytes, proporcionan un recurso crítico para la comprensión de adaptaciones de la planta al estrés ambiental. Schrenkiella parvula (anteriormente Thellungiella parvula y Eutrema parvulum) es una modelo extremophyte, con la expansión de recursos genómicos1,

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Protocolo

1. crecimiento de la planta

  1. Esterilización de las semillas (opcional)
    1. Preparar la lejía de 50% en agua destilada doble (ddH2O) con 1 o 2 gotas de un detergente no iónico (véase Tabla de materiales) en un tubo de 50 mL. Invertir el tubo varias veces para mezclar la solución.
      Nota: Es preferible llevar a cabo la esterilización de las semillas en un flujo laminar con una superficie esterilizada UV durante 15 minutos.
    2. Añadir la solución de lejía a ~ 100-200 semillas S. parvula en un tubo de 1,5 mL. Mezcle bien y deje el tubo durante 5 minutos.
    3. Quitar el clo....

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Resultados

Hemos desarrollado un protocolo de transformación que permite recolección de semillas de T0 a 150 días, utilizando un método de inmersión floral modificado de la de a. thaliana. La figura 1 muestra un resumen de la línea de tiempo y S. parvula plantas que representan la etapa óptima para ejecutar la transformación a través de floral dip. Se seleccionaron S. parvula plantas con 70 –80 flores en inflorescencias múltiples a .......

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Discusión

El estado fisiológico de la planta influye significativamente en la eficiencia de transformación25. El uso de plantas sanas y vigorosas para la transformación es un requisito clave para la exitosa transformación en S. parvula. Agua o luz plantas tendrán menos flores en comparación con las plantas saludables ideales para la transformación (figura 1, panel central). Parvula de S. puede crecer en una intensidad de luz inferior a 130 μmol m-2 .......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por un premio de la Fundación Nacional de Ciencias 1616827 de MCB.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
AgarVWR International, Radnor, PA90000-762Bacto Agar Soldificante, BD Diagnostics
Vitaminas B5Sigma-Aldrich, St. Louis, MOG1019Gamborg' s Desecante de solución vitamínica
W A Drierita Hammond, Xenia, OH22005Malla indicadora de DRIERITA 6
Vector de destino para la transformación de plantasVector TAIR:6531113857pKGWFS7
Cubeta de electroporaciónUSA Scientific9104-5050Cubeta de electroporación, tapa redonda, espacio de 0,2 cm
ElectroporatorBIO-RAD Laboratories, Hercules, CA1652100MicroPulser Electroporator
Perlas de fertilizanteOsmocote Garden, Marysville, OHN/AOsmocote Smart-Release Plant Food  Flor & Kit
extracción de geliNtRON Biotechnology, Boston, MA17289MEGAquick-spin Kit de purificación de ADN de fragmentos totales
GentamicinSigma-Aldrich, St. Louis, MOG1914-5GSulfato de gentamicina
Herbicida glufosinato de amonio (11,3%) (BASTA)Bayer environmental science, Montvale, N/AFINALE herbicida
KanamycinVWR International, Radnor, PA200004-444Monosulfato de kanamicina
MESBioworld, Dublín, OH41320024-2MES, sal MS ácida libre
MP Biomedicals, Santa Anna, CA092621822Mezcla de sales basales basales modificadas de Hoagland
N6-bencilaminopurina (BA) Sigma-Aldrich, St. Louis, MOB3274Solución de 6-benzilaminopurina
NaClSigma-AlrichS7653Cloruro de sodio
Detergente no iónicoSigma-Aldrich, St. Louis, MO9005-64-5TWEEN 20 
Kit de aislamiento de plásmidosZymo Research, Irvine, CAD4036Kits de plásmidos Zyppy Kit
mezcla de enzimas recombinasasLife Technology11791-020Gateway LR Clonasa II Mezcla de enzimas
RifampicinaSigma-Aldrich, St. Louis, MOR3501-1GRifampicina, polvo, ≥ 97% (HPLC)
Incubadora de agitaciónThermoFisher Scientific, Waltham, MASHKE4450MaxQ 4450 Agitadores orbitales de sobremesa
Mezcla de tierraSun GroSUN239223328CFLPSun Gro Metro-Mix 360 Grower Mix
SpectinomycinVWR International, Radnor, PAIC15206705
Tubos cónicos estériles de 50 mlUSA Scientific, Ocala, FL1500-181150 mL tubos cónicos con tapón de rosca, copolímero, gradillas,
sacarosaVWR International, Radnor, PA57-50-1Sacarosa, solución de
surfactanteSemillas de Lehle, Round Rock, TXVIS-02Silwet L-77
Kit de clonación a base de topoisomerasaLife Technologies, Carlsbad, CAK240020Kit de clonación pENTR/D-TOPO, con One Shot TOP10 Químicamente Competente E. coli
TriptonaVWR International, Radnor, PA90000-282BD Bacto Tryptone, BD Biosciences
Extracto de levaduraVWR International, Radnor, PA90000-722 Extracto de levadura BD Bacto, BD Biosciences
de vegetal de estéril ACS

Referencias

  1. Dassanayake, M., et al. The genome of the extremophile crucifer Thellungiella parvula. Nature Genetics. 43 (9), 913-918 (2011).
  2. Oh, D. -H., Dassanayake, M., Bohnert, H. J., Cheeseman, J. M. Life at the extreme: lessons from the genome. Genome Biology. 13 (3), 241(2012).
  3. Whited, J. The ....

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Etiquetas

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