Detectar la actividad de dimerización de dominio Ligand-obligatorio del Receptor de estrógenos alfa usando el análisis de dos híbridos mamífero

Summary

Se presenta un método para el análisis de la 4-hidroxi-tamoxifeno-dependiente de estrógeno actividad del receptor alfa-ligando dominio dimerización usando el ensayo de híbridos de dos mamífero.

Abstract

Receptor de estrógenos alfa (ERα) es un regulador de transcripción ligando-dependiente estrogénica. La secuencia de la proteína ERα es altamente conservada entre especies. Se ha pensado que la función del ser humano y el ratón ERαs es idéntico. Demostramos el efecto diferencial 4-hidroxi-tamoxifeno (4OHT) en ratón y ERα ligand-atar dominio (LBD) dimerización actividad humana usando el análisis de (M2H) híbrido de dos mamífero. El ensayo de M2H puede demostrar la eficacia de la actividad de T329N LBD en células de mamíferos, mediante la transfección de plásmidos de expresión de dos proteínas (ADN GAL4 dominio [DBD] fusión LBD y VP16 transactivation dominio [VP16AD] fusión LBD) y un Elemento GAL4-sensible (GAL4RE) fusionados con el plásmido reportero de luciferasa. Cuando la fusión de GAL4DBD LBD y la fusión de VP16AD DLB un dimer en las células, este complejo de la proteína se une a la GAL4RE y, luego, activa una expresión de gen de luciferasa a través de la actividad de transcripción dependiente de VP16AD. La activación mediada por 4OHT luciferase es mayor en las células HepG2 fueron transfectadas con el ratón ERα LBD fusión proteína expresión plásmidos que el ERα LBD fusión proteína expresión plásmido transfectada las células humanas. Este resultado sugiere que la eficacia del ratón 4OHT-dependiente de la actividad de T329N ERα LBD es superior a la humana ERα LBD. En general, la utilización del ensayo M2H no es ideal para la evaluación de la actividad de dimerización de receptores nucleares LBD, porque ligandos agonistas realzar el nivel basal de la actividad LBD e impide la detección de actividad de dimerización de LBD. Se encontró que 4OHT no mejorar la actividad basal de ERα LBD. Es un factor clave para poder determinar y detectar la actividad de dimerización de LBD dependiente de la 4OHT para usar con éxito el ensayo de M2H. M2H ensayos de ERα LBD pueden aplicarse para estudiar la actividad de agonista parcial de moduladores selectivos de estrógeno receptor (e.g., 4OHT) en varios tipos de células de mamífero.

Introduction

Receptor de estrógenos alfa (ERα) es un regulador de transcripción ligando-dependiente estrogénica. El aminoácido sequenceof ERα es altamente conservada entre especies. Debido a la mayor homología entre humanos y ratón ERα, la función de estos receptores es considerada como idéntico, y la actividad diferencial de sustancias estrogénicas (p. ej., tamoxifeno) en las especies es causada por las diferencias de las especies de metabolismos químicos en lugar de por las diferencias estructurales de ERα. ERα altamente ha conservado las estructuras de dominio que son comunes entre la superfamilia de receptores nucleares (NR), señalada A que dominios de F. El dominio E o dominio de unión a ligando (LBD) incluye el bolsillo del atascamiento del ligand y la función de activación transcripcional 2, llamado AF-2. El dominio de F se localiza inmediatamente adyacente al dominio E y es el dominio más variable entre lo NRs. Incluso entre humanos y ratón ERα, la homología del dominio de F es menor que el de los otros dominios¹. El LBD ligando enlazado de ERα mejora T329N de la proteína ERα para enlazar el elemento específico de la DNA estrógeno-sensibles directamente para la regulación de la transcripción de genes dependientes de ligando (acción clásica de ERα). Estudios Cristalográficos han revelado el posicionamiento diferencial de la hélice 12 (dominio de base de AF-2) con estradiol (E2) o 4-hidroxi-tamoxifeno (4OHT) - límite LBD dímeros^2,3. El dominio de F ERα (45 aminoácidos) Conecte hélice 12 directamente. Sin embargo, no hay información sobre el efecto de esta extensión de 45 aminoácidos (dominio de F) de la hélice 12 en la dimerización de ERα LBD. En este estudio, se demuestra la contribución del dominio de F para lo específicos dependientes de la 4OHT LBD ERα T329N usando un mamífero dos hybrid (M2H) análisis.

El ensayo de M2H es un método para demostrar las interacciones de la proteína-proteína en células de mamíferos introducción los DNAs de distintos plásmidos tres: dos plásmidos de expresión de la proteína, que expresan la fusión de dominio (DBD) de ADN de GAL4 LBD de ERα y VP16AD fusión ERα LBD, y un Plásmido de reportero de luciferasa fusionados con GAL4RE expresión. Cuando la fusión de GAL4DBD LBD ERα y la fusión de VP16AD LBD ERα interactuan (hacer un dimer) en las células, este complejo de la proteína se une a la GAL4RE y, luego, activa la expresión de genes de la luciferasa a través de la función de transactivación dependiente de la VP16AD. El nivel de LBD T329N puede evaluarse por la actividad de luciferasa.

La levadura dos híbridos (Y2H) es un método alternativo basado en el mismo principio que utiliza la levadura como el entorno de host. Informes anteriores mediante el sistema de Y2H demostraron que F-dominio-truncado humano ERα LBD aumenta reclutamiento de E2 dependiente del coactivator, concluyendo que el dominio de F previene la transcripción mediada por E2⁴. Este resultado es coherente con otros informes que han demostrado la actividad transcripcional atenuada de ERα humano F-dominio-truncado en células de mamíferos^5,6. Recientemente, nuestro estudio, utilizando el sistema M2H, demostró que la actividad de contratación del coactivator de E2 dependiente de humano ERα LBD disminuye por truncamiento del dominio de F en células de mamífero y es consistente con transcripción actividad¹. Estas observaciones sugieren que el papel fisiológico de la interacción proteína-proteína es diferente en un contexto y forma de tipo específico de célula. El ensayo de M2H puede demostrar actividad de interacción de proteínas en el mismo contexto celular que se utiliza para la determinación de la actividad transcripcional. Esto proporciona una ventaja del ensayo M2H comparado con el Y2H u otros análisis de interacción en vitro proteínas.

Quedan preguntas con respecto a los mecanismos moleculares de la actividad de agonista parcial de moduladores de receptores de estrógeno selectivo (SERM) (e.g., 4OHT) para regular la transcripción mediada por el ERα. M2H ensayos de ERα LBD pueden ser aplicados para estudiar el mecanismo de la actividad de agonista parcial de los SERM en varios tipos de células de mamífero.

Protocol

1. preparación de plásmidos para el ensayo de híbridos de dos mamífero

1. Utilice el siguiente plásmidos: pG5-Luc, pBIND-ERαEF y ERαEF Pacto.
   Nota: La plásmidos son de los autores a petición y se envían en papel de filtro. pG5-Luc es el plásmido reportero que contiene cinco repeticiones de GAL4 sensibles elementos fusionados con la unidad de expresión de luciferasa (figura 1A). pBIND-ERαEF es el plásmido de expresión de proteína las proteínas fusionados con GAL4DBD ERα LBD. pBIND ERαEF contiene una unidad de expresión de luciferasa Renilla para normalizar la eficiencia de transfección (figura 1B). Pacto de ERαEF es el plásmido de expresión de proteínas para las proteínas fusionados con VP16AD ERα LBD (figura 1C). El diagrama de la estructura de la proteína expresada de la plásmidos se muestra en la figura 2.
2. Preparar el plásmido DNAs.
   1. Cortar el área cargada de plásmido de papel con unas tijeras limpias y colocarlo en un tubo de 1,5 mL. Utilice guantes y use pinzas limpias para recoger el papel cargado de plásmido. Añadir 100 μl de tampón Tris-EDTA (TE) (pH 8.0) y agitar bien.
   2. Añadir 1 μl de la solución de ADN de plásmido de paso 1.2.1 competente Escherichia coli las células (véase Tabla de materiales) y mantenga el tubo en hielo por 15 min.
   3. Células competentes del choque del calor el plásmido añadido; incubar los tubos en baño de agua de 42 ° C durante 30 s y, luego, mantenerse en hielo durante 2 minutos.
   4. Añadir 250 μl de caldo super óptimo medio de represión (SOC) de catabolito (temperatura ambiente) a los tubos y la cultura con agitación a 37 ° C durante 30 minutos.
   5. Placa de 100 μl de la culta E. coli en un plato de caldo (LB) precalentado de Luria con 100 μg/mL ampicilina (plato de 10 cm de diámetro) y cultivo a 37 ° C durante la noche.
   6. Elegir una colonia de la placa y añadir en un tubo de 14 mL que contiene 2 mL de caldo buenísimo (TB) con 100 ampicilina μg/mL. Cultivo con agitación a 37 ° C hasta que el medio es ligeramente nublado.
   7. Añadir 1 mL del medio de cultivo de paso 1.2.6 a un frasco de vidrio esterilizado 250 mL que contenga 50 mL de TB con 100 ampicilina μg/mL. Cultivo con agitación a 37 ° C durante 20-24 h.
   8. Transferencia de la culta e. coli en un tubo cónico de 50 mL y centrifugar a 3.450 x g a temperatura ambiente durante 30 min usando el rotor de columpio-cubo. Descartar el medio. Guardar el sedimento de e. coli a-80 ° C.
   9. Añadir 3 mL de solución de resuspensión celular (véase Tabla de materiales) a la e. coli de pellets y suspenderlo completamente. Añadir 3 mL de solución de lisis celular (véase Tabla de materiales), mezcle suavemente invirtiendo el tubo de 10 x y mantenerlo en hielo durante 5 minutos (mantener el tiempo puntualmente). Añadir 6 mL de solución de neutralización (véase Tabla de materiales), el tubo se mezclan constantemente con golpear ligeramente y luego, mantenerlo en hielo durante 10 minutos.
   10. Centrifugar el tubo a 3.450 x g a 4 ° c por 30 min usando el rotor de columpio-cubo. La solución que contiene ADN de transferencia a un nuevo tubo cónico de 50 mL y añadir 10 mL de resina de purificación de ADN (véase Tabla de materiales). Suspender la resina con cuidado.
   11. Centrifugar el tubo a 625 x g durante 1 min, utilizando el rotor swing-cubo. Deseche la solución y mantener la resina en la parte inferior.
   12. Añadir 15 mL de solución de lavado de columna (acetato de potasio 80 mM, 8,5 mM Tris-HCl [pH 7.5], 40 μm EDTA y el 55% de etanol) a los 50 mL cónico del tubo y agite suavemente para suspender la resina. Repita el paso 1.2.11.
       Nota: La solución de lavado de columna debe ser preparada con dietil pirocarbonato (DEPC)-tratamiento de agua o agua libre de nucleasa.
   13. Añadir 5 mL de solución de lavado de columna en el tubo cónico de 50 mL y la resina con una pipeta 5 mL de suspensión. Aplique la resina en la columna (véase Tabla de materiales) que se encuentra en el múltiple de vacío. La columna de vacío hasta que la resina seque. Añadir 6 mL de solución de lavado de columna a la columna y el vacío.
   14. Una vez que la resina se seca visualmente, separe el depósito de la columna. Transferencia de la parte inferior de la columna (resina) a un tubo de 1,5 mL. Centrifugar la columna de a velocidad máxima durante 2 min con una microcentrífuga para secar la resina completamente.
   15. Transferencia de la parte inferior de la columna (resina) a un nuevo tubo de 1,5 mL. Añadir 300 μL de agua libre de nucleasa a la columna y espere hasta que la resina entera se haya empapado.
   16. Centrifugar la columna de a velocidad máxima durante 1 minuto recoger el plásmido que contiene el ADN solución (200-250 μL).
   17. Tratamiento de la solución que contiene ADN con fenol-cloroformo (1:1), luego con cloroformo como sigue.
       1. Añadir el mismo volumen de fenol-cloroformo (1:1) a la solución que contiene el DNA (200-250 μL), agite bien y centrifugar a máxima velocidad durante 2 minutos usando una microcentrífuga. Recoger la capa superior (solución que contiene el ADN) y añadir a un nuevo tubo de 1,5 mL. Repita este paso 1 x.
       2. Añadir el mismo volumen de cloroformo a la solución que contiene el DNA (200-250 μL), agitar bien y centrifugar a máxima velocidad durante 1 minuto recogen la capa superior (solución que contiene el ADN) y agregue a un tubo de 1,5 mL.
          Nota: Endotoxina (lipopolisacárido) induce señalización celular en algunas células. Para evitar tal efecto imprevisto, se recomienda paso 1.2.17, que puede reducir la contaminación de la endotoxina.
   18. Precipitar el plásmido de ADN mediante la técnica de precipitación del etanol como sigue.
       1. Añadir 1/9 del volumen de mezcla de ADN de 3 M acetato de sodio (pH 5.5) y 20 x de volumen de acetato de sodio de 3 M de etanol 100% a la solución que contiene ADN. Por ejemplo, añadir 27,8 μl de acetato de sodio de 3 M y 278 μl de etanol al 100% a 250 μl de la solución de ADN (el volumen final es 555.8 μL).
       2. Mantener la solución a-80 ° C por 20 min al menos. Centrifugar a velocidad máxima durante 20 min a 4 ° c. Deseche la solución y mantener el pellet. Añadir 200 μL de etanol 75% y enjuague el interior del tubo. Centrifugar 20 min a 4 ° C, deseche la solución y mantener el pellet. Secar el pellet de ADN utilizando un concentrador de vacío.
       3. Añadir 100-250 μl de tampón TE (pH 8.0) al tubo. Disolver el precipitado de ADN y comprobar la concentración de ADN utilizando un espectrofotómetro a una longitud de onda de 260 nm. Mantener la concentración de ADN alrededor de 0,5 mg/mL.

2. mamífero dos hybrid ensayo

1. Mantener las células.
   1. Cultura hepatocelular humano células HepG2 de 750 mL, matraz de cultivo de tejidos² de 175 cm con los medios sin rojo de fenol mínimos esenciales (MEM) suplementados con suero bovino fetal 10% (FBS; inactivado con calor), 2 mM L-glutamina, 1% solución de penicilina-estreptomicina (antibióticos) para el mantenimiento de las células.
   2. Las células en un 5% de CO₂de la cultura-suplido, incubadora de 37 ° C hasta que las células son aproximadamente 90% confluente.
      Nota: Para disminuir la actividad estrogénica de fondo, medio sin rojo de fenol puede usarse para todos los experimentos M2H. Este paso debe realizarse dentro de un gabinete de seguridad biológico de banco limpio. Las células deben ser mantenidas tras las células de mamífero general cultura protocolo⁷.
2. Preparar las células para la transfección.
   Nota: El siguiente procedimiento debe realizarse dentro del gabinete de seguridad biológico de banco limpio. Las células son cultivadas/incubados en un 5% CO₂-suplido, incubadora de 37 ° C en este paso cada vez.
   1. Replate las células confluentes de 90% a las placas de 24 pocillos; enjuague las células 1 x con solución salina tamponada con fosfato (PBS).
   2. Añadir 7 mL de solución al 0.05% tripsina-EDTA al matraz de cultivo y remoje las células durante 1-2 min., manteniendo el frasco de cultura en un banco limpio a temperatura ambiente. Quitar una parte de la solución de tripsina-EDTA y dejar 1-2 mL de la solución en el matraz de la cultura. Incube el frasco de cultivo en el incubador durante 1-2 minutos.
   3. Golpear el fondo del matraz para separar las células y para comprobar las células bajo el microscopio.
      Nota: Si las células todavía se unen al matraz, incubar durante otro 1-2 min y, después, repita el paso 2.2.3.
   4. Suspender las células en el rojo de fenol libre MEM suplementado con 10% FBS despojado de carbón (inactivado con calor), 2 mM L-glutamina y 1% solución de penicilina-estreptomicina.
      Nota: FBS despojado de carbón debe utilizarse para reducir el efecto de los estrógenos endógenos derivados del suero.
   5. Contar el número de celular y las células en una placa de 24 pozos a una densidad de 1.2 x 10⁵ células/pocillo de la semilla. Asignar tres pozos para cada punto de datos (por triplicado).
   6. La cultura las células durante la noche. Siga al paso 2.4.1.
3. Preparar una mezcla de ADN para la transfección.
   Nota: Lo siguiente plásmido DNAs son transfectados en un pozo: 100 ng de plásmido reportero de pG5-Luc, 50 ng de plásmidos de expresión de proteínas de fusión GAL4DBD (pBIND) y 50 ng de plásmidos de expresión de proteínas de fusión VP16AD (Pacto).
   1. Para analizar la actividad de dimerización ligand-dependiente ERα LBD, preparar las siguientes combinaciones (figura 3). Combinación (i): pG5-Luc pBIND hERαEF Pacto y pG5-Luc + pBIND-mERαEF + Pacto. Combinación (ii): pG5-Luc pBIND hERαEF Pacto-hERαEF y pG5-Luc + pBIND-mERαEF + mERαEF Pacto. Combinación (iii): pG5-Luc pBIND Pacto-hERαEF y pG5-Luc + pBIND + Pacto de mERαEF.
      Nota: Combinación (i) representa el nivel basal experimental humano ERα LBD y el ratón ERα LBD, respectivamente. Si el resultado muestra un nivel notable alto con ligando solo, este método es inviable para el uso con eso ligando (por ejemplo, dietilestilbestrol [DES]). Combinación (ii) representa los niveles de LBD de ERα humano dimerized y ratón dimerized ERα LBD, respectivamente. Combinación (iii) representa controles negativos; utilizar este sistema sólo cuando el experimento se realiza por primera vez evaluar el nivel de fondo del sistema.
   2. Antes de mezclar, calcular el total de cantidad de ADN necesaria basándose en el número de pozos para la transfección. Para experimentos en triplicado y en cinco puntos, mezcle lo siguiente plásmido DNAs en los tubos dos 1.5 μL para combinaciones (i) y (ii): pG5-Luc, 5 (puntos de datos) x 3 (pozos) x 100 ng = 1.500 ng (15 μl); pBIND-mERαEF, 5 (puntos de datos) x 3 (pozos) x 50 ng = 750 ng (7.5 μl); Pacto (combinación i) o pacto-mERαEF (para combinación ii), 5 (puntos de datos) x 3 (pozos) x 50 ng = 750 ng (7.5 μl).
      Nota: La concentración de cada solución de DNA plasmídico es 0,1 μg/μl.
   3. Precipitar la mezcla de ADN mediante la técnica de precipitación del etanol. Añadir 1/9 del volumen de mezcla de ADN de 3 M acetato de sodio (pH 5.5) y 20 x de volumen de acetato de sodio de 3 M de 100% de etanol a la mezcla de ADN. Entonces, vórtice del tubo.
      Nota: por ejemplo, añadir 3.4 μL de acetato de sodio de 3 M y 34 μl de etanol al 100% a los 30 μl de mezcla de ADN de plásmido en paso 2.3.2. Este paso ayuda a mantener un estado invariable de la transfección, y no es necesario realizar este paso en un gabinete de seguridad biológica.
   4. Mantener la mezcla durante la noche a-20 ° C. Centrifugar a velocidad máxima durante 20 min a 4 ° C. Deseche la solución (el perdigón es invisible). Añadir 120 μl de etanol al 75% en el tubo; Luego, enjuague el interior del tubo. Centrifugar 20 min a 4 ° C. Deseche la solución y seque la mezcla de ADN utilizando un concentrador de vacío durante 30 minutos.
4. Realizar la transfección.
   Nota: Los pasos siguientes deben realizarse en un banco limpio o en un gabinete de seguridad biológica.
   1. A la mañana siguiente, enjuagar las células sembradas en una placa de 24 pocillos (de paso 2.2.6) 2 x 0,5 ml de PBS (temperatura ambiente).
   2. Añadir tibia (37 ° C) fresco sin rojo de fenol MEM suplementado con 10% FBS (inactivado con calor) y 2 mM L-glutamina sin antibióticos para cada bien (medio de 0,5 mL/pocillo) despojado de carbón. Mantener las células en un 5% CO₂-suplido, incubadora de 37 ° C.
   3. Suspender la mezcla de ADN de plásmido secos (de paso 2.3.4) en medio de Eagle modificado de Dulbecco (DMEM) (no suero, libre de rojo de fenol, sin glutamina; 13 μL/pocillo). Calcular las cantidades de DMEM del número de pozos para la transfección.
      Nota: 15 pozos para la combinación (i) x 13 μl = μl 195 y 15 pozos para la combinación (ii) x 13 μl = μl 195.
   4. Suspender el reactivo de transfección (véase Tabla de materiales; 1,5 μL/pocillo) en DMEM (12.5 μL/pocillo) en otro tubo de 1,5 mL. Calcular las cantidades de reactivo de transfección y DMEM del número de pozos para la transfección.
      Nota: 30 [15 pozos para combinación] (i) y 15 pozos de combinación (ii) x 1,5 μl de reactivo de transfección + 30 x 12.5 μl de DMEM = 420 μl.
   5. Añadir una cantidad igual del medio de reactivo de transfección (del paso 2.4.4) a cada tubo (de paso 2.4.3). Incubar los tubos durante 5-10 min a temperatura ambiente.
      Nota: 200 μL de medio de reactivo de transfección + 195 μl de combinación mezcla (i) ADN = 395 μl y 200 μL de medio de reactivo de transfección + 195 μl de combinación de mezcla de ADN (ii) = 395 μl. Es importante añadir un volumen igual de medio de reactivo de transfección en los tubos de combinación (i) y (ii). No es necesario usar el medio de en este paso.
   6. Añadir la mezcla combinada (de paso 2.4.5) en cada pocillo (25 μL/pocillo) de la placa de 24 pozos (de paso 2.4.2) e incubar las células durante 6 h en el 5% CO₂-suplido, incubadora de 37 ° C.
   7. Retire el medio de transfección de la placa de 24 pocillos. Añadir tibia (37 ° C) fresco sin rojo de fenol MEM suplementado con 10% FBS (inactivado con calor), 2 mM L-glutamina, 1% de penicilina-estreptomicina solución y ligando (suspendido en etanol) despojado de carbón (medio de 0,5 mL/pocillo). Cultura de las células 16-18 h en el 5% CO₂-suplido, incubadora de 37 ° C.
5. Las muestras de la cosecha.
   1. Lavar las células con 1 mL de PBS y, a continuación, añada 100 μl de 1 x de tampón de lisis pasiva (véase Tabla de materiales).
   2. Agite vigorosamente las placas de 24 pocillos con un mezclador de tipo vórtex para separar las células.
   3. Congelar las placas (lysates de la célula) 1 x salvarlos o nitrógeno líquido a-80 ° C antes del análisis. Inmediatamente antes del ensayo, agite vigorosamente las placas en un agitador hasta que estén a temperatura ambiente.
      Nota: Este proceso evita la forma irregular que aparecen valores anómalos de la actividad de luciferasa.
6. Realizar un ensayo de doble-luciferasa.
   1. Preparar los reactivos para el sistema de ensayo de luciferasa doble (véase Tabla de materiales).
      1. Para hacer el tampón de sustrato (LAS) ensayo de luciferasa, añadir tampón de ensayo de luciferasa todo el sustrato de ensayo de luciferasa en un frasco de vidrio marrón. Guardar el buffer de LAS a-20 ° C.
         Nota: El buffer de LAS debe ser calentado a la temperatura ambiente antes de usar.
      2. Para hacer el tampón de sustrato (RLS) de luciferasa Renilla, mezclar Renilla luciferasa sustrato y buffer de luciferasa Renilla en una proporción de 1:50. Hacer frescos RLS de búfer para cada ensayo y use un tubo negro o un tubo bajo la sombra de papel de estaño. Calcular la cantidad de buffer RLS haciendo un almacenador intermediario fresco.
         Nota: El buffer RLS debe ser calentado a la temperatura ambiente antes de usar.
   2. Ajustar los reactivos en el lector de microplacas.
      1. Líneas de lavado la inyección 2 x con etanol al 70%; Luego, lavar las líneas 2 x con agua.
         Nota: Esto es importante para evitar molestar a los resultados del ensayo.
      2. LAS del almacenador intermediario al P-inyector de línea (primera inyección) y establezca el búfer RLS en la línea M-inyector (segunda inyección). No mezcle estos búferes. Buffer RLS inhibe la actividad de luciferasa.
   3. Se aplican 10 μl de las muestras cosechadas (del paso 2.5.3) a la placa de plástico blanca de 96 pocillos.
   4. Aplicar los siguientes ajustes para el lector de microplacas. Para el P-inyector, utilizar un volumen de 50 μL, un retraso de 2 s y una velocidad de 50 μl/s. Para el M-inyector, utilizar un volumen de 50 μL, un retraso de 2 s y una velocidad de 50 μl/s. establecer un tiempo de integración de conjunto s. 15 la temperatura a 25 ° C.
   5. Ejecutar el lector de microplacas.
   6. Anotar los valores de la actividad de luciferasa (IPValue) y los valores de la actividad de la luciferasa de la Renilla (IMValue) utilizando el programa de adquisición de datos (véase Tabla de materiales).
   7. Lavar las líneas de inyección después de la recolección de datos (ver paso 2.6.2.1).
7. Realizar análisis de datos.
   1. Utilice los valores normalizados (IPValue/IMValue) para análisis de datos.
   2. Establezca el valor normalizado de la combinación (i) [pG5-Luc + pBIND ERαEF Pacto] con vehículo (ligando de nM 0) como 1 para el cálculo del nivel basal y el homodimerized ERα LBD nivel. Los niveles se representan como "Actividad relativa".

Results

Figura 3 muestra el esquema de posibles respuestas en la combinación (i) y combinación (ii) plásmido transfected células. Los resultados experimentales se muestran en la figura 4. La actividad de combinación (i) (pG5-Luc + pBIND mERαEF Pacto) muestra estímulo de 10 nM E2 (figura 4A), porque el ERα LBD contiene el dominio funcional del transactivation dependiente de ligando, AF-2. Ago...

Discussion

Adjunto, describimos el protocolo para el ensayo de M2H, centrándose en las condiciones de ensayo para la detección de la actividad de T329N de ERα LBD como ejemplo. En general, el ensayo M2H no es popular para la evaluación de la actividad de dimerización ligand-dependiente ERα LBD. Esto es debido a la LBD ERα poseen una función de activación transcripcional; la actividad que molesta, en algunos casos, los resultados del ensayo M2H. Sin embargo, como se demuestra aquí, el ensayo M2H puede ser usado para el análisis de l...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
pG5-Luc	Promega	E249A	Componente del sistema CheckMate Mammalian Two-Hybrid
pBIND	Promega	E245A	Componente del sistema CheckMate Mammalian Two-Hybrid
pACT	Promega	E246A	Componente del CheckMate Mammalian Two-Hybrid System
One Shot TOP10 Químicamente Competente E. coli	Invitrogen C404010
Rotor centrífugo	SORVALL	75006445
Cucharas oscilantes	SORVALL
(CRA)	Promega	A7112
Solución de lisis celular (CLA)	Promega	A7122
Solución de neutralización (NSA)	Promega	A7131
Solución de lavado de columna (CWB)	Promega	A8102
Wizard Midipreps Resina de purificación de ADN	Promega	A7701
Wizard Midicolumns	Promega	A7651
MEM, sin glutamina, sin rojo fenol	Gibco	51200038
L-glutamina (200 mM)	Gibco A2916801
0,5% Tripsina-EDTA (10x)	Gibco	15400054
Penicilina-estreptomicina (100x)	Sigma-Aldrich	P0781
BenchMark suero fetal bovino (FBS)	Gemini-Bio	100-106	Carbón inactivado por calor
: suero fetal bovino que se desprende con dextrano	Gemini-Bio	100-119	DMEM inactivado por calor
, alto en glucosa, sin glutamina, sin fenol rojo	Gibco	31053028	para la transfección
Lipofectamine 2000	Invitrogen	11668027
Lisis pasiva 5X Tampón	Promega	E1941
Sistema de ensayo reportero de luciferasa dual	Promega	E1980
SpectraMax L Lector de microplacas	Molecular Devices
SoftMax Pro Software	Molecular Devices