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Artículo de método

Microfluídica de entretela con arreglos de microelectrodos para el estudio de la comunicación Neuronal y Axonal señal propagación

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DOI:

10.3791/58878

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8 de diciembre de 2018

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En este artículo

Resumen

Este protocolo pretende demostrar cómo combinar arreglos de microelectrodos en vitro con dispositivos microfluídicos para estudiar la transmisión del potencial de acción en cultivos neuronales. Análisis de los datos, es decir, la detección y caracterización de propagar potenciales de acción, es realizada con un nuevo avanzado, pero fácil de usar y libremente disponible, herramienta computacional.

Resumen

Arreglos de microelectrodos (MEAs) son ampliamente utilizados para el estudio de la función neuronal en vitro. Estos dispositivos permiten concurrente no invasivo grabación/estimulación de la actividad electrofisiológica durante largos períodos. Sin embargo, la característica de detección de señales de todas las fuentes alrededor de cada microelectrodo puede convertirse en desfavorable al tratar de entender la comunicación y propagación en circuitos neuronales de la señal. En una red neuronal, las neuronas varios pueden activarse simultáneamente y pueden generar potenciales de acción superpuestos, lo que hace difícil discriminar y propagación de las señales de pista. Teniendo en cuenta esta limitación, hemos establecido una configuración en vitro se centró en la evaluación electrofisiológica de comunicación, que es capaz de aislar y amplificar señales axonales con alta resolución espacial y temporal. Por interfaces dispositivos microfluídicos y MEAs, somos capaces de compartimentar las culturas neuronales con una alineación bien controlada de los axones y de microelectrodos. Esta configuración permite grabaciones de propagación de la espiga con un alto cociente signal-to-noise en el transcurso de varias semanas. En combinación con algoritmos de análisis de datos especializados, proporciona la cuantificación detallada de comunicación varias relacionadas con características tales como velocidad de propagación, falta de conducción, velocidad de disparo, picos anterógrada, codificación y mecanismos.

Este protocolo muestra cómo crear una configuración de cultura neuronal compartimentado sobre sustrato integrado MEAs, cómo las neuronas en esta configuración de la cultura y cómo con éxito registrar, analizar e interpretar los resultados de dichos experimentos. A continuación, os mostramos cómo la configuración establecida simplifica la comprensión de la comunicación neuronal y axonal señal propagación. Estas plataformas de allanan el camino para nuevos modelos en vitro con topografías ingeniería y controlable de la red neuronal. Pueden ser utilizados en el contexto de culturas neuronales homogéneas o con configuraciones de la cultura donde, por ejemplo, comunicación entre las neuronas sensoriales y otros tipos de células es monitoreada y evaluada. Esta configuración proporciona condiciones muy interesantes para estudiar, por ejemplo, neurodesarrollo, circuitos neuronales, información de codificación, métodos de neurodegeneración y Neurorregeneración.

Introducción

Entender la comunicación eléctrica en circuitos neuronales es un paso fundamental para revelar la función normal y diseñar estrategias terapéuticas para tratar la disfunción. Las neuronas integran, computan y transmitir potenciales de acción (APs) que se propagan a lo largo de sus axones delgados. Tradicionales técnicas electrofisiológicas (p. ej., abrazadera del remiendo) son técnicas poderosas para el estudio de la actividad neuronal, pero a menudo se limitan a las estructuras celulares más grandes, como el soma o las dendritas. Técnicas de imagen ofrecen una alternativa para estudiar señales axonales con alta resolución espacial, pero son técnicamente difí....

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Protocolo

Todos los procedimientos que involucran animales fueron realizados según la Unión Europea (UE) Directiva 2010/63/CE (transpuesta a la legislación portuguesa por Decreto-ley 113/2013). El protocolo experimental (0421/000/000/2017) fue aprobado por el Comité de ética de ambos la autoridad oficial del portugués en el bienestar de los animales y la experimentación (Direção Geral de Alimentação e Veterinária - DGAV) y de la institución de acogida.

1. preparación de medios de cultivo y otras soluciones

Nota: Recién preparar las soluciones de recubrimiento en el día de su uso. La capa sin usar soluciones y medios....

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Resultados

Utilizando el protocolo descrito aquí, neuronas corticales de rata de E-18 sembradas en µEF son capaces de desarrollar y mantenerse saludable en estas condiciones de cultivo para más de un mes. Tan pronto como 3 a 5 días en cultivo, las neuronas corticales crecen sus axones a través de micro-ranuras hacia el compartimiento axonal de µEF (figura 1). Después de 15 días en la cultura, las neuronas corticales cultivadas en µEF se esperan exhibir niveles constante.......

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Discusión

El protocolo que presentamos muestra cómo montar un µEF, compuesto por un dispositivo de microfluidos y una MEA con diseños estándar disponibles comercialmente y cómo analizar los datos registrados.

Al diseñar un experimento, los investigadores deben tener en cuenta que el modelo de vitro está limitado por la rejilla fija de MEA, que restringe el microsurco arreglos. El uso de un particular microfluidos o MEA diseño dependerá de las necesidades experimentales pero, en general, los mis.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue financiado por el FEDER - Fundo Europeu de Desenvolvimento Regional fondos hasta el 2020 compiten - Operacional programa de competitividad e internacionalización (POCI), 2020 de Portugal y por portugueses fondos a través de la FCT - Fundação para a Ciência e a Tecnologia / Ministério da Ciência, Tecnologia e Ensino Superior en el marco del proyecto PTDC/CTM-NAN/3146/2014 (POCI-01-0145-FEDER-016623). José C Mateus fue apoyada por la FCT (PD/BD/135491/2018). Paulo Aguiar fue apoyado por el Programa Ciência - Programa Operacional Potencial Humano (POPH) - promoción del empleo científico, FSE y MCTES y programa Investigador ....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
B-27 Suplemento (50X)Thermo Fisher ScientificLTI17504-044
Poli(etilenoimina) ramificada (PEI), 25 kDaSigma-Aldrich408727Purifique el PEI ramificado por diálisis utilizando una membrana de corte de 2,5 kDa durante 3 días a 4&°; C frente a una solución de HCl de 5 mM (renovada diariamente). Liofilizar el PEI purificado.
Filtro de células (40 y micro; m) Falcon352340
Microtubos cónicos (1,5 ml)VWR211-0015
Pañal desechable, 60x40 cmBastos Viegas SA455-019
Pinzas Dumont #5, rectasFine Science Tools91150-20
Pinzas Dumont #5/45Fine Science Tools11251-35
Pinzas Dumont #7, curvadasFine Science Tools91197-00
Suero Bovino Fetal Inactivado por Calor PremiumBiowestS181BH-500ML
Laminina de Engelbreth-Holm-Swarm Sigma-AldrichL2020-1MGPrepare una solución madre de laminina a 1 mg/mL disolviendo el polvo en el volumen respectivo de medio no suplementado. Guarde la solución de laminina a -20 ° C en alícuotas pequeñas (20 y micro; L) para evitar ciclos repetidos de congelación/descongelación.
L-Glutamina 200mM Thermo Fisher ScientificLTID25030-024
Cámara de recuento mejorada de Neubauer (hemocitómetro)Marienfeld630010
Medio neurobasal (1X)Thermo Fisher Scientific21103-049Medio basal utilizado para cultivos neuronales
Dispositivos microfluídicos PDMS no aplicableno aplicableCompuesto por dos compartimentos de siembra de celdas interconectados por 20 microranuras con 450 μ m longitud y tiempos; 10 μ m altura y tiempos; 14 y mu; m de ancho dimensiones y separados por 86 µ m (espacio intermedio total de 100 μ m).
Solución de penicilina-estreptomicina (P/S) (100X)BiowestL0022-100
Unidad de filtro de jeringa PES (Ø 30 mm), 0,22 µ m Frilabo1730012
Tubos cónicos de polipropileno, 15 mlThermo Fisher Scientific07-200-886
Tubos cónicos de polipropileno, 50 mlThermo Fisher Scientific05-539-13
Pipetas serológicas disposabel de poliestireno, 10 ml Thermo Fisher Scientific1367811D Pipetas
serológicas de poliestireno disposabel, 5 ml Thermo Fisher Scientific1367811D
(2 kDa)   Laboratorios de espectro132107
tijera quirúrgica estándarFine Science Tools91401-14
MEAs planar integrados en sustrato (256 microelectrodos)Multi Channel Systems256MEA100/30iR-ITO252 electrodos de registro de nitruro de titanio (TiN) y 4 electrodos de referencia internos organizados en una cuadrícula cuadrada de 16 por 16. Cada electrodo de registro es de 30 y micro; m de diámetro y espaciados entre sí por 100 µm.
Jeringa punta luer-lock, 10 ml Terumo Europe5100-X00V0
Jeringa luer-lock punta, 50 ml Terumo Europe8300006682
Terg-A-ZymeSigma-AldrichZ273287 Detergente en polvo con enzimas activos utilizado para la limpieza de MEAs
Placas de cultivo de tejidos, 35 mm StemCell Technologies27150
Placas de cultivo de tejidos, 90 mmFrilabo900095
solución de azul de tripano (0,4%) Sigma-AldrichT8154
Tripsina (1:250)Thermo Fisher Scientific 27250018
Cinta de vinilo 4713MB40071909
Membrana de celulosa regenerada estándar

Referencias

  1. Scanziani, M., Hausser, M. Electrophysiology in the age of light. Nature. 461 (7266), 930-939 (2009).
  2. Nam, Y., Wheeler, B. C. In vitro microelectrode array technology and neural recordings. Critical Reviews in Biomedical Engineering. 39 (1), 45-61 (2011).

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