Proceso de moldeo basada en mojado-spinning de gelatina para la regeneración de los tejidos

Resumen

Desarrollamos y describir un protocolo basado en el concepto de hilatura húmeda, para la construcción de la base de gelatina de biomateriales utilizados para la aplicación de la ingeniería de tejidos.

Resumen

Este artículo presenta un método barato para fabricar gelatina, como un polímero natural, en fibras de monofilamento o en otras formas apropiadas. A través de la humedad método de giro, las fibras de la gelatina son producidas por extrusión suave en medio de una coagulación adecuada. Para aumentar la superficie funcional de esas fibras de gelatina y su capacidad para imitar las características de los tejidos, la gelatina puede ser moldeada en forma de tubo haciendo referencia a este concepto. Examinado por pruebas in vitro e in vivo, los tubos de gelatina demuestran un gran potencial para su aplicación en la ingeniería de tejidos. Actuando como un material de relleno adecuado brecha, gelatina de tubos pueden ser utilizados para sustituir el tejido en el área dañada (por ejemplo, en el sistema nervioso o cardiovascular), así como para promover la regeneración al proporcionar una sustitución directa de las células madre y los circuitos neuronales. Este protocolo proporciona un procedimiento detallado para la creación de un biomaterial basado en un polímero natural, y se espera que su aplicación beneficiaría enormemente el desarrollo de polímeros naturales correlativos, que ayudan a realizar estrategias de regeneración de tejido.

Introducción

El último desarrollo en regeneración de tejidos consiste en la aplicación de la ingeniería del tejido fino, que representa un desafío para la mejora de nuevas estrategias terapéuticas en tratamientos médicos. Por ejemplo, el limitado potencial de regeneración del sistema nervioso, lesiones o enfermedad, siguientes plantea un importante problema de salud en todo el mundo. Debido a la complejidad de los procesos patofisiológicos asociados con el sistema nervioso, el uso de autoinjerto tradicional o la aplicación de la cirugía de estabilización ha demostrado ofrecer beneficios en los resultados funcionales, pero no existe evidencia fuerte de los efectos de la fijación es....

Protocolo

Los tejidos de grasa obtenidos de cirugías ortopédicas como certificada por el institucional de Junta de Tri-Service General Hospital, Taipei, Taiwan, R.O.C. procedimientos con sujetos animales han sido aprobados por el Comité de cuidado del Animal a nivel nacional Centro médico de la defensa, Taiwán (ROC).

1. Moje el proceso de giro

1. Preparación de la solución
   1. Disolver 5 g de polvo de gelatina en 100 mL de agua destilada doble para obtener la concentración de la solución 5% (p/v).
   2. Revolver la mezcla lentamente en el 60-70 ° C durante la noche para lograr una dispersión totalmente homogénea si....

Resultados

En este estudio, desarrollamos con éxito la gelatina en las fibras (figura 2A) y tubos (figura 2B, C) a través del concepto de hilado húmedo fácil de usar. Estos materiales a base de gelatina pueden ser utilizados como cualquier herramienta médica, dependiendo de sus formas. Teniendo en cuenta que la superficie funcional y el marco de tales materiales son más adecuados para la regeneración de los.......

Discusión

Presentamos el desarrollo de biomateriales basados en gelatina usando un simple mojado spinning técnica que puede ser aplicado en el estudio de polímeros naturales para regeneración de tejidos. Este trabajo demostró la posibilidad de fabricación de la gelatina como una fuente de proteína grandes sin la adición de otras fuentes, con el objetivo de optimizar las propiedades de la gelatina sí mismo. El desarrollo de biomateriales basados en gelatina se realizó enteramente en temperatura ambiente (22-26 ° C). Preparación de .......

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo

Nombre	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
Preparación de la solución:
Gelatina tipo B (porcina)	Ferak	Art. -Nr. 10733	Frasco de 500 g
Proceso de hilatura en húmedo:
Bomba peristáltica	Gilson	Modelo M312	Minipuls*3
Conector de tubo de plástico	World Precision Instruments	14011	1 caja
Jeringa	Sterican	5A06258541	26Gx1/2"(0.45 x 12mm)
Acetona	Ferak	Art. -Nr. 00010	2.5 L vial
Policaprolactona CAPA 6500	Perstorp	24980-41-4-Diclorometano
	Scharlau	CL03421000	vial de 1 L
Pipeta Pasteur de vidrio	Fisher Scientific	13-678-20A-Hemostat
	Shinetec instruments	ST-B021-Catéter
venoso periférico (Introcan Certo)	B. Braun	1B03258241	24Gx3/4" (0,7 x 19mm)
Morfología del tubo de gelatina:
Máquina recubridora de pulverización catódica iónica	Hitachi	e1010-Microscopía	de
barrido	Hitachi	S-3000N	-
Cultivo de células en el tubo de gelatina:
Tripsina-EDTA	Gibco	488625	vial de 100 mL
Suero fetal bovino	Gibco	923119	vial de 500 mL
Dulbecco's Engineer's	Gibco	31600-034	Medio
queratinocitos en polvo-SFM	Gibco	10744-019	Frasco de 500 mL
Frasco de cultivo T25	TPP	90025	Placa
de 6 pocillos	Falcon
<1209938-fuerte>Inmunocitoquímica: solución salina
tamponada con fosfato	Gibco	654471	Frasco de 500 mL
Ácido acético	glacial Ferak	Art. -Nr. 00697	vial de 500 mL
Tensioactivo NP-40 (solución de Tergitol)	Sigma	056K0151	Frasco de 500 mL
Suero normal de cabra	Vector Laboratories	S-1000-20	Frasco de 20 mL, concentrado
Nestina (anticuerpo primario)	Santa Cruz Biotechnology	SC-23927-Donkey
anti-ratón Isotiocianato de fluoresceína ( anticuerpo secundario)	Santa Cruz Biotechnology	SC-2099-Hoechst
33342	Anaspec	AS-83218	5 mL vial
in vivo prueba de biocompatibilidad:
Tiletamine+zolazepam	Virbac	BC91	vial de 5 mL
Xilacina	Bayer korea	KR03227	vial de 10 mL
Ketoprofeno	Astar 1406232		vial de 2 mL
Povidona solución de yodo	Everstar HA161202		barril de 4 L
Cefazolin	China Chemical & Farmacéutico	18P909	vial de 1 g
Hoja de bisturí Shinetec	instruments	ST-B021-Tijera
quirúrgica	Shinetec instruments	ST-B021	-

electrónica de tipo VENT