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Artículo de método

Natación parálisis inducida a evaluar dopamina señalización en Caenorhabditis elegans

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DOI:

10.3791/59243

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3 de abril de 2019

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En este artículo

Resumen

Natación por parálisis (SWIP) es un ensayo de comportamiento bien establecido utilizado para estudiar los mecanismos subyacentes de la dopamina en Caenorhabditis elegans (C. elegans). Sin embargo, carece de un método detallado para llevar a cabo el ensayo. Aquí, describimos un protocolo paso a paso para SWIP.

Resumen

El ensayo de natación se describe en este protocolo es una herramienta válida para identificar proteínas regulan el dopaminérgico sinapsis. Similar a los mamíferos, dopamina (DA) controla varias funciones en C. elegans como actividad de aprendizaje y motor. Condiciones que estimulan la liberación de DA (p. ej., tratamientos de anfetamina (AMPH)) o que evitar separación de DA (por ejemplo, animales que carecen del transportador de DA (dat-1) que son incapaces de reaccumulating DA en las neuronas) generan un exceso de DA extracelular en última instancia dando por resultado locomoción inhibido. Este comportamiento es particularmente evidente cuando los animales nadan en el agua. De hecho, mientras animales de tipo silvestre a nadar durante un largo período, mutantes nulos dat-1 y tipo salvaje trataron con AMPH o inhibidores del transportador de DA se hunden hasta el fondo del pozo y no se mueven. Este comportamiento se denomina "Parálisis inducida de natación" (SWIP). Aunque está bien establecido el ensayo SWIP, carece de una descripción detallada del método. Aquí, describimos una guía paso a paso para realizar SWIP. Para realizar el ensayo, último larvales etapa 4 animales se colocan en una placa de punto de cristal que contiene control de solución de sacarosa con o sin AMPH. Animales son marcados por su comportamiento de natación ya sea manualmente por visualización bajo un estereoscopio o automáticamente por la grabación con una cámara montada en el estereoscopio. Videos entonces se analizan utilizando un software de seguimiento, que produce una representación visual de frecuencia de golpear y de parálisis en forma de mapas de calor. Los sistemas manuales y automatizados garantizan una lectura fácilmente cuantificable de la capacidad de natación de los animales y facilitan así la detección de animales con mutaciones en el sistema dopaminérgico o para genes auxiliares. Además, SWIP puede utilizarse para aclarar el mecanismo de acción de drogas de abuso como AMPH.

Introducción

Los animales realizan una variedad de comportamientos innatos y complejas que están mediadas por diferentes neurotransmisores coordinados por intrincados procesos de señalización. El neurotransmisor dopamina (DA) media comportamientos altamente conservados entre especies, incluyendo el aprendizaje, la función motora y procesamiento de la recompensa.

C. elegans, los nematodos del suelo con un sistema nervioso relativamente simple y bien asignado, que consta de sólo 302 neuronas, muestra comportamientos notablemente complejos, incluyendo muchos que son reguladas por DA como acoplamiento, aprendizaje, alimentación, locomoción y puesta....

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Protocolo

1. preparación de soluciones y medios de comunicación

  1. Preparación de buffer M9 por disolución de KH2PO4 3,0 g (22,05 mM), Na2HPO4 6,0 g (42,2 mM) y NaCl 5.0 g (85,5 mM) en 1 L de agua desionizada en autoclave. Añadir 1,0 mL de 1 M MgSO4 (12 g en un volumen final de 100 mL de agua desionizada en autoclave) después de la esterilización en autoclave. Mezcla 100 mL de la resultante x 10 M9 con 900 mL de autoclave desionizada para hacer una solución de 1 x.
  2. Para hacer el tampón de huevo, disolver 6,896 g de NaCl (118 mM), 3,578 g de KCl (48 mM), 0,294 g de CaCl2-2 H2O (2 mM), 0....

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Resultados

Presentamos un ejemplo de ensayo SWIP inducida por tratamiento AMPH. La figura 1 muestra una representación esquemática de la configuración del ensayo como se describe anteriormente. Para el análisis manual, sobre 8-10 edad sincronizado finales L4 etapa gusanos recogidos con una pestaña o platino escoger y colocar en una placa de punto de vidrio lleno con 40 μl de 200 mOsm/L sacarosa (solución de control) o sacarosa con 0.5 mM AMPH y probados para SWIP.

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Discusión

Aquí, describimos un protocolo paso a paso para realizar un ensayo conductual, SWIP, en C. elegans. Este protocolo es sencillo con no vallas técnicas principales hacer este usuario de ensayo muy amigable. Sin embargo, existen algunos aspectos críticos que deben considerarse para efectivamente llevar a cabo el ensayo.

Debe tenerse cuidado para asegurar que los gusanos que se utiliza para el análisis son bien alimentados, ya que afecta la restricción dietética SWIP17

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Los autores desean agradecer el Dr. Osama Refai del laboratorio del Dr. Randy Blakely de orientación con el análisis automatizado de SWIP. Este trabajo fue apoyado por fondos del NIH R01 DA042156 LC.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Papel de aluminioReynolds wrap1091835
AmphetamineSigma51-63-8   
Incubadora bacteriana de autoclave
New Brunswick scientificM1352-0000
Grado bacteriológico, AgarLab Scientific, Inc  A466
Bacto (TM) PeptonaBDREF 211677
Cloruro de calcio (dihidratado)Sigma-AldrichC3881
Camera Centrífuga ThorlabsU-CMAD3
 Eppendorf 5810R 15ampE215059
ColesterolSigma-Aldrich57-88-5
Agua desionizadaMilliporeZ00QSV0WWMilli-Q Placa puntual de
vidrio para depresiónCorningCorning, Inc. 722085
Matraz ErlenmeyerThermoFisher4103-0250PK
Pestañas
Corredera de vidrioFisherbrand12-550-15
Software gráfico y estadísticoPrismGraphpad 5
HEPESSigma-AldrichRB=H3375 & H7006
HipocloritoHawkinsHipoclorito de sodio 4-6%, USP" Caldo LB de 1 galón
, MillerFisherBP1426
Cloruro de magnesio (hexahidratado)Sigma-AldrichRB=M0250500 g
Sulfato de magnesio (heptahidratado)Sigma-AldrichM1880
Barra agitadora magnéticaFisherbrand16-800-510 
Tubos de microcentrífugaThermoFisher69715
NA 22 bacteriasCGC
NistatinaSigma1400-61-9
OsmómetroAdvanced Instruments, IncModelo 3320
Pasteur PipetasFisherbrand13-678-20A
PetriplacasFalcon351007
Medidor de pHOrion VersaStar ProIS-68X591202-B 0514
Tubos cónicos de polistrinaFalcon352095
Cloruro de potasioSigma-Aldrich P9541
Fosfato de dihidrógeno de potasioSigma-Aldrich7778-77-0
Fosfato de potasio - DIBASICSigma-AldrichP-8281
Fosfato de potasio - MONOBASICSigma-AldrichP0662
Pipetas serológicasVWR10ml=89130-898
Agitador Reliable Scientific55S 12x16
Cloruro de sodioFisherRB=BP358-1
Dihidrógeno de sodio FosfatoFisherRB=S381
Hoja de cálculoMS officeMicrosoft Excel
Microscopio estereoscópicoZeissModelo tlb3. 1 stemi2000
Puntas de pipeta estérilesVarios02-707-400
SacarosaSigma-AldrichRB=S5016
SuperglueLoctite1647358 .14 onzas
SwimR sofware10.18129/B9.bioc.SwimR
Tracker 2Worm Tracker 2.0www.mrc-lmb.cam.ac.uk/wormtracker/
Software de grabación de vídeoVirtualdubhttp://www.virtualdub.org/

Referencias

  1. de Bono, M., Villu Maricq, A. Neuronal Substrates of Complex Behaviors in C. elegans. Annual Review of Neuroscience. 28 (1), 451-501 (2005).
  2. Sawin, E. R., Ranganathan, R., Horvitz, H. R. C. elegans Locomotory Rate ....

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