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Artículo de método

Visualización de la proteína quinasa Una actividad en ratones de trabajo fijos en la cabeza utilizando la microscopía de imágenes de por vida con fluorescencia de dos fotones in Vivo

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DOI:

10.3791/59526

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7 de junio de 2019

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Se presenta un procedimiento para visualizar las actividades de proteína quinasa A en ratones que se fijan en la cabeza y se comportan. Un reportero mejorado de actividad de A-quinasa, tAKAR, se expresa en las neuronas corticales y se hace accesible para la toma de imágenes a través de una ventana craneal. La microscopía por imágenes de por vida de fluorescencia de dos fotones se utiliza para visualizar las actividades de PKA in vivo durante la locomoción forzada.

Resumen

La neuromodulación ejerce un poderoso control sobre la función cerebral. La disfunción de los sistemas neuromoduladores da lugar a trastornos neurológicos y psiquiátricos. A pesar de su importancia, las tecnologías para rastrear eventos neuromoduladores con resolución celular están empezando a surgir. Los neuromoduladores, como la dopamina, la noradrenalina, la acetilcolina y la serotonina, desencadenan eventos de señalización intracelular a través de sus respectivos receptores acoplados a proteínas G para modular la excitabilidad neuronal, las comunicaciones sinápticas y otras regulando así el procesamiento de la información en la red neuronal. Los neuromoduladores mencionados anteriormente convergen en la vía adentro/proteína quinasa A (PKA). Por lo tanto, la imagen de PKA in vivo con resolución de una sola célula se desarrolló como una lectura para eventos neuromoduladores de una manera análoga a las imágenes de calcio para actividades eléctricas neuronales. En este documento, se presenta un método para visualizar la actividad de PKA a nivel de neuronas individuales en la corteza de ratones que se comportan por la cabeza fija. Para ello, se utiliza un reportero mejorado de actividad De la A-quinasa (AKAR), llamado tAKAR, que se basa en la transferencia de energía por resonancia de Farster (FRET). Este sensor PKA genéticamente codificado se introduce en la corteza motora a través de la electroporación utero (IUE) de plásmidos de ADN, o inyección estereotaxcócica de virus asociado a adeno (AAV). Los cambios de FRET se utilizan mediante la microscopía de imágenes de por vida de fluorescencia de dos fotones (2pFLIM), que ofrece ventajas sobre las mediciones ratiométricas de FRET para cuantificar la señal FRET en el tejido cerebral de dispersión de luz. Para estudiar las actividades de PKA durante la locomoción forzada, el tAKAR se imagea a través de una ventana craneal crónica por encima de la corteza de ratones despiertos fijos en la cabeza, que corren o descansan en una cinta de correr motorizada con control de velocidad. Este enfoque de diagnóstico por imágenes será aplicable a muchas otras regiones cerebrales para estudiar las actividades de PKA inducidas por el comportamiento correspondientes y a otros sensores basados en FLIM para imágenes in vivo.

Introducción

La neuromodulación, también conocida como transmisión sináptica lenta, impone un fuerte control sobre la función cerebral durante diferentes estados conductuales, como el estrés, la excitación, la atención y la locomoción1,2,3, 4. A pesar de su importancia, el estudio de cuándo y dónde tienen lugar los eventos neuromoduladores todavía está en su infancia. Neuromoduladores, incluyendo acetilcolina, dopamina, noradrenalina, serotonina, y muchos neuropéptidos, activar los receptores acoplados a la proteína G (GPCRs), que a su vez desencadenan l....

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Protocolo

Todos los métodos descritos aquí han sido aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Universidad de Salud y Ciencia de Oregón.

1. Configuración del microscopio 2pFLIM

  1. Instale un módulo de recuento de tiempo sordos (PTCM, Tabla de materiales)y conéctese al ordenador (Figura1) de acuerdo con el manual del fabricante.
    NOTA: El PTCM es típicamente una placa de computadora que recibe una entrada de "sincronización" para la sincronización del pulso láser y una entrada de fotones del tubo fotomultiplicador (PMT). También recibe la sin....

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Resultados

Los sensores FRET-FLIM permiten la visualización de muchas vías de señalización diferentes, incluida la vía de campo/PKA implicada en la neuromodulación. El protocolo actual utiliza el sensor tAKAR recientemente desarrollado en combinación con 2pFLIM para visualizar las actividades de PKA en ratones que se comportan con cabeza fija. La mayoría de los microscopios de dos fotones existentes se pueden actualizar con capacidades 2pFLIM añadiendo tres a cuatro componentes, como se ilustra en <.......

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Discusión

Este protocolo demuestra el uso del sensor FRET-FLIM tAKAR para visualizar la actividad PKA activada por neuromodulación en ratones que se comportan en la cabeza fija. Esta aplicación se basa en extensas pruebas y caracterizaciones de tAKAR in vitro e in vivo para demostrar que la señal FLIM obtenida es relevante para eventos neuromoduladores fisiológicos17. Aquí, una aplicación in vivo, la actividad de PKA inducida por la locomoción en la corteza motora, se utiliza para describir los procedimient.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos a la Sra. Tess J. Lameyer, la Sra. Ruth Frank y el Dr. Michael A. Muniak por sus ediciones y comentarios, y al Dr. Ryohei Yasuda en Max Planck Florida por el software de adquisición 2pFLIM. Este trabajo fue apoyado por dos premios de la Iniciativa BRAIN U01NS094247 (H.Z. y T.M.) y R01NS104944 (H.Z. y T.M.), una concesión R01NS081071 (T.M.) y una concesión R21R2197856 (H.Z.). Todos los premios son del Instituto Nacional de Trastornos Neurológicos y Accidentes Cerebrovasculares, Estados Unidos.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
0.2 μ m filtro de jeringa de acetato de celulosaNalgene190-2520Paso 3.2.2.
Objetivo de inmersión en agua 16x 0.8 NANikonMRP07220Step 5.5.
Cable de 3 pinesCA-MIC3-SH-NCdigital de EE. UU. PASO 2.5. Para conectar el sensor de rotación a la entrada DAQ del microscopio Placa de
pande aluminio ThorlabsMB1012Paso 2.5.
Software AnimalTracker MATLAB N/AN/APaso 2.5 y secciones 5 - 6. Se proporcionará, previa solicitud al autor principal:
Filtro de barrera de paso de bandaChromaET500-40mPaso 1.4.
Placa de jaulaThorlabsCP01Paso 2.4. Se utiliza como soporte para el sensor de rotación
Fresas de acero al carbono para microperforadora, diámetro de punta de 0,5 mmFST19007-05Pasos 3.2.3. y 4.4.
Cubreobjetos circular (5 mm de diámetro)VWR101413-528Paso 4.5.
Portaagujas de inyección hecho a medidaN/AN/APaso 3.2.4. Detalles técnicos proporcionados a petición del autor principal:
Acrílico dentalYates Motloid44114Pasos: 4.3. y 4.5.
Taladro dental; Microtorque iiProductos Ram66699Pasos 3.2.3. y 4.4.
Polímero transparente DowsilThe Dow Chemical Company3-4680Paso 4.5. Duramadre artificial
Electrodo de electroporaciónBex LF650P5Paso 3.1.4.
ElectroporadorBexCUY21Paso 3.1.4.
Verde rápido FCFSigma-aldrichF7258-25GPaso 3.1.1.
FLIMimage software MATLAB N/AN/ASección 5. Amablemente proporcionado por el Dr. Ryohei Yasuda, Max Planck Florida
FLIMview MATLAB softwareN/AN/ASecciones 5 y 6. Se proporcionará a pedido del autor principal
Pegamento compatible con espuma (Gorilla White Glue)Gorilla5201204Paso 2.3.
CabezalN/AN/APaso 4.3. Los detalles técnicos se proporcionan a petición del autor principal Soporte de
la placa de cabezaN/AN/APaso 2.6. Los detalles técnicos se proporcionan a petición del autor principal, utilizado en combinación con el soporte de poste de montaje y el soporte en ángulo recto
Micromanipulador hidráulicoNarishigeMO-10Paso 3.2.4.
Pegamento KrazyPegamento KrazyKG82648RPaso 4.3. Pegamento a base de cianoacrilato
Tubo fotomultiplicador rápido de bajo ruidoHamamatsuH7422PA-40 o H10769PA-40Paso 1.3.
MATLAB 2012bMathworksN/APasos 2.6 y secciones 5 y 6. Se utiliza para ejecutar el software de adquisición de microscopio y análisis de datos
MotorZhengkeZGA37RGel paso 2.4.
Regulador de velocidad del motorElenkerEK-G00015A1-1Paso 2.5.
Micromanipulador motorizadoSutterMP-285Paso 3.2.4.
Basede montaje ThorlabsBA1SPaso 2.5. Se utiliza para postes para motor y sensor en combinación con PH4 y TR2
Poste de montajeThorlabsP14Paso 2.6. Se utiliza para el poste de soporte de la placa de cabecera en combinación con PB2
Base de postede montaje ThorlabsPB2Step 2.6. Se utiliza para el poste de soporte de la placa de cabecera en combinación con el
soporte de poste de montajeThorlabsC1515Paso 2.6. Se utiliza en combinación con el soporte de ángulo recto y el soporte de la placa
Poste ópticoThorlabsTR2Step 2.5. Se utiliza para postes para motor y sensor en combinación con BA1S y PH4
solución salina tamponada con fosfatoΝ/ΑΝ/&Alfa;Paso 3.2.2. Protocolo: Cold Spring Harbor Protocols 2006, doi: 10.1101/pbd.rec8247
FotodiodoThorlabs FDS010Paso 1.2.
Módulo de conteo de temporización de fotonesBecker y HicklSPC-150Paso 1.1.
Plásmido: tAKAR y alfa; (CAG-tAKARα-WPRE)Addgene119913paso 3.1.3.
Soportede poste ThorlabsPH4Step 2.5. Se utiliza para postes para motor y sensor en combinación con BA1S y TR2
Soporte de ángulo rectoThorlabsAB90Paso 2.6 Se utiliza en combinación con el soporte de poste de montaje y el soporte de la placa de cabeza
Codificador de rotaciónUS digital MA3-A10-250-NPaso 2.4.
Alfombrillade goma Rubber-CalB01DCR5LUGPaso 2.1.
Acoplamiento de eje (1/4 de pulgada x 1/4 de pulgada)McMaster6208K433Pasos 2.3. y 2.4.
ScanImage 3.6Svoboda Lab/Vidrio TechnologyN/APasos 5.9. y 6.1.
Divisor de señalBecker y HicklHPM-CON-02Paso 1.3.1.
Eje de acero inoxidable (diámetro 1/4 de pulgada, L = 12 pulgadas)McMaster1327K66Paso 2.3.
Sistema de alineación estereotáxicaDavid Kopf1900Pasos 3.2. y 4.1. modificados; Micromanipulador Sutter, portaagujas de inyección hecho a medida, micromanipulador hidráulico
Microscopio de dos fotonesN/AN/ASección 5. Construido sobre la base del sistema modular de microscopía multifotónica in vivo (MIMMS) del HHMI Janelia Research Campus (https://www.janelia.org/open-science/mimms)
Vetbond adhesivo tisular3M14006Paso 3.2.6.
Virus: tAKARα (AAV2/1 hSyn-tAKARα-WPRE)Addgene119921paso 3.2.2.
Rodillo de espuma de PE blanco (8 pulgadas x 12 pulgadas)Empresas de fabricación INC.30-2261Paso 2.1.1.
Mitades de bolas de poliestireno blancoGrahamSweet200mm de diámetro 2 mitades huecasPaso 2.1.1.
ZipkickerPACERPT29Paso 4.3. Acelerador de endurecimiento
, , P14 frontal

Referencias

  1. Greengard, P. The Neurobiology of Slow Synaptic Transmission. Science. 294 (5544), 1024-1030 (2001).
  2. Petersen, S. E., Posner, M. I. The attention system of the human brain: 20 years after. Annual Review of Neuroscience. 35 (2), 73-89 (2012).
  3. Sun, Y., Hunt, S., Sa....

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