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Artículo de método

Realización de Xenoinjertos musculares esqueléticos humanos en ratones inmunodeficientes

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DOI:

10.3791/59966

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16 de septiembre de 2019

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En este artículo

Resumen

Las enfermedades humanas complejas pueden ser difíciles de modelar en los sistemas de modelos de laboratorio tradicionales. Aquí, describimos un enfoque quirúrgico para modelar la enfermedad muscular humana a través del trasplante de biopsias musculares esqueléticas humanas en ratones inmunodeficientes.

Resumen

Los efectos del tratamiento observados en estudios con animales a menudo no se recapitulan en ensayos clínicos. Si bien este problema es multifacético, una de las razones de este fallo es el uso de modelos de laboratorio inadecuados. Es difícil modelar enfermedades humanas complejas en organismos de laboratorio tradicionales, pero esta cuestión puede eludirse mediante el estudio de xenoinjertos humanos. El método quirúrgico que describimos aquí permite la creación de xenoinjertos musculares esqueléticos humanos, que se pueden utilizar para modelar la enfermedad muscular y para llevar a cabo pruebas terapéuticas preclínicas. Bajo un protocolo aprobado por la Junta de Revisión Institucional (IRB), las muestras de músculo esquelético se adquieren de los pacientes y luego se trasplantan en ratones huésped NOD-Rag1nullIL2r. Estos ratones son huéspedes ideales para estudios de trasplante debido a su incapacidad para producir linfocitos maduros y, por lo tanto, son incapaces de desarrollar respuestas inmunitarias adaptativas mediadas por células y humorales. Los ratones huésped son anestesiados con isoflurano, y se eliminan los músculos del ratón tibialis anterior y digitorum longus extensor. Luego se coloca un pedazo de músculo humano en el compartimento tibial vacío y se sutura a los tendones proximales y distales del músculo peroneus longus. El músculo xenoinjerado es vascularizado e inervado espontáneamente por el huésped del ratón, lo que resulta en un músculo humano robusto mente regenerado que puede servir como modelo para estudios preclínicos.

Introducción

Se ha informado que sólo 13.8% de todos los programas de desarrollo de fármacos sometidos a ensayos clínicos son exitosos y conducen a terapias aprobadas1. Si bien esta tasa de éxito es superior al 10,4% reportado anteriormente2, todavía hay un margen significativo de mejora. Un enfoque para aumentar la tasa de éxito de los ensayos clínicos es mejorar los modelos de laboratorio utilizados en la investigación preclínica. La Administración de Alimentos y Medicamentos (FDA) requiere estudios en animales para mostrar la eficacia del tratamiento y evaluar la toxicidad antes de los ensayos clínicos de fase 1. Sin embargo, a me....

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Protocolo

Todo uso de especímenes de investigación de sujetos humanos fue aprobado por la Junta de Revisión Institucional de Johns Hopkins (IRB) para proteger los derechos y el bienestar de los participantes. Todos los experimentos con animales fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad Johns Hopkins (IACUC) de acuerdo con la Guía de los Institutos Nacionales de Salud (NIH) para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio. Los ratones host nulantes (NRG) no-varones NOD-Rag1nulos (NRG) (8-12 semanas de edad) se utilizan para llevar a cabo experimentos de xenoinjerto. Estos ....

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Resultados

Como lo demuestra Yuanfan Zhang et al., este protocolo quirúrgico es un método sencillo para producir xenoinjertos de músculo esquelético humano8. Los xenoinjertos regenerados se inerten espontáneamente y muestran contractilidad funcional. Además, el xenoinjerto muscular de pacientes con FSHD recapitula los cambios en la expresión génica observados en pacientes con FSHD8.

En nuestra experiencia, aproximadamente 7 de los 8 xenoinjertos realizados .......

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Discusión

Los xenoinjertos derivados del paciente son una forma innovadora de modelar la enfermedad muscular y llevar a cabo estudios preclínicos. El método descrito aquí para crear xenoinjertos musculares esqueléticos es rápido, sencillo y reproducible. Las cirugías unilaterales se pueden realizar en 15 a 25 minutos, o bilateralmente en 30 a 40 minutos. Los xenoinjertos bilaterales pueden proporcionar flexibilidad experimental adicional. Por ejemplo, los investigadores pueden realizar un tratamiento localizado de un xenoinjerto, .......

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Divulgaciones

Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por la Asociación de Myositis y la Fundación Peter Buck. Nos gustaría dar las gracias a la Dra. Yuanfan Zhang por compartir su experiencia y formación en la técnica quirúrgica de xenoinjerto.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Placa de Petri de 100 mm x 15 mmFisher ScientificFB0875712
2-metilbutanoFisherO3551-4
Microcubreobjetos de 20 mm x 30 mmVWR48393-151
Báscula de pesaje animalKent ScientificSCL- 1015
Solución antibiótica-antimicóticaCorning, Cellgro30-004-CI
Sistema AutoClipF.S.T12020-00
Castroviejo PortagujasF.S.T12565-14
Extracto de embrión de polloPrecisoCE650TL
CM1860 Criostato UV LeicaBiosystemsCM1860UV
Tarro de tinción CoplinThermo Scientific19-4
Pasadores de disecciónFisher ScientificS13976
Hielo seco - pelletFisher ScientificNC9584462
Anticuerpo de miosina embrionariaDSHBF1.652concentración recomendada 1:10
EtanolFisher Scientific459836
Suero fetal bovinoHealthcare Ciencias de la VidaSH30071.01
Fibra Lite MI-150Dolan-JennerMi-150
PinzasF.S.T11295-20
Cabra anti-ratón IgG1, Alexa Fluor 488InvitrogenA-21121recomendada 1:500
Cabra anti-ratón IgG2b, AlexaFluor 594InvitrogenA-21145recomendada 1:500
Goma tragacantoSigmaG1128
Jamones F-10 MediumCorning10-070-CV
Histoacryl Blue Adhesivo Tópico para la PielSellado de tejidosTS1050044FP
Anticuerpo A/C lamina específico para humanosAbcamab40567Concentración recomendada 1:50-1:100
Anticuerpo específico para humanos SpectrinLeica Biosystems NCLSPEC1concentración recomendada 1:20-1:100
Cámara de inducciónVetEquip941444
Pinza de irisF.S.T11066-07
Irradiada Global 2018 (Uniprim 4100 ppm)EnvigoTD.06596Dieta antibiótica para roedores para proteger contra las infecciones respiratorias
IsofluranoMWI Veterinary Supply502017
KimwipesKimberly-Clark34155toallitas quirúrgicas
Mapleson E Breathing CircuitVetEquip921412
MetanolFisher ScientificA412
Máquina de anestesia móvilVetEquip901805
en ratón Kit básicoVector LaboratoriesBMK-2202ratón Reactivo de bloqueo IgG
Esmalte de uñasMicroscopía electrónica Ciencias72180
NAIR Loción/aceite removedor de velloFisher ScientificNC0132811
Ratones NOD-Rag1null IL2rg null (NRG)The Jackson Laboratory007799de 2 a 3 meses de edad
O.C.T. Compuesto FisherScientific23-730-571
OxígenoAirgasOX USPEA
PBS (solución salina tamponada con fosfato)Fisher Scientific4870500
Povidona Yodada solución de preparaciónDynarex1415
ProLong™ Mountant Antidecoloración de OroFisher ScientificP10144 (sin DAPI); P36935 (con DAPI)
Ungüento oftálmico PuralubeDechra17033-211-38
Rimadyl (carprofeno) inyectablePatterson Veterinary10000319analgésico quirúrgico, administrado por vía subcutánea a una dosis de 5 mg/kg
Hojas de bisturí - #11F.S.T10011-00
Mango de bisturí - #3F.S.T10003-12
Estéreo MicroscopioAccu-scope3075
Superfrost Plus Portaobjetos de microscopioFisher Scientific12-550-15
Sutura, sintética, no absorbible, 30 pulgadas de largo, aguja CV-11CovidienVP-706-X
Jeringa de 1 ml (calibre 26, aguja de 3/8 de pulgada)BD Biosciences329412
TrimmerKent ScientificCL9990-KIT
Tijeras de resorte Vannas, filo de corte de 8,0 mmF.S.T15009-08
Filtro de carbón activado VaporGaurdVetEquip931401
Pinzas enrolladas, 9 mmF.S.T12022-09
GE concentración concentración ratón

Referencias

  1. Wong, C. H., Siah, K. W., Lo, A. W. Estimation of clinical trial success rates and related parameters. Biostatistics. 0, 1-14 (2018).
  2. Hay, M., Thomas, D. W., Craighead, J. L., Economides, C., Rosenthal, J. Clinical development success rates for investigational drugs. Nature ....

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