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Artículo de método

Grabación electrofisiológica inalámbrica de las neuronas por tetrodes móviles en la natación libre de peces

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DOI:

10.3791/60524

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26 de noviembre de 2019

 ,  , 
1Department of Biomedical Engineering, Ben-Gurion University of the Negev, 2Zlotowski Center for Neuroscience, Ben-Gurion University of the Negev, 3Department of Life Sciences, Ben-Gurion University of the Negev

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Se presenta una novedosa técnica inalámbrica para registrar señales neuronales extracelulares del cerebro de la natación libre de peces dorados. El dispositivo de grabación se compone de dos tetrodes, un microdrive, un registrador de datos neuronales y una caja impermeable. Todas las piezas están hechas a medida, excepto el registrador de datos y su conector.

Resumen

Los mecanismos neuronales que rigen el comportamiento de los peces siguen siendo en su mayoría desconocidos, aunque los peces constituyen la mayoría de todos los vertebrados. La capacidad de registrar la actividad cerebral de los peces que se mueven libremente avanzaría considerablemente la investigación sobre la base neuronal del comportamiento de los peces. Por otra parte, el control preciso de la ubicación de registro en el cerebro es fundamental para estudiar la actividad neuronal coordinada a través de las regiones en el cerebro de los peces. Aquí, presentamos una técnica que registra de forma inalámbrica desde el cerebro de nadar libremente peces mientras controla para la profundidad de la ubicación de grabación. El sistema se basa en un registrador neural asociado con un nuevo implante compatible con el agua que puede ajustar la ubicación de grabación mediante tetrodes controlados por microunidad. Las capacidades del sistema se ilustran a través de grabaciones del telencéfalo de peces dorados.

Introducción

Los peces son el grupo más grande y diverso de vertebrados, y al igual que otros vertebrados exhiben habilidades cognitivas complejas como navegar, socializar, dormir, cazar, etc. Sin embargo, los mecanismos neuronales que rigen el comportamiento de los peces permanecen en su mayor parte desconocidos.

En las últimas décadas, las grabaciones extracelulares de peces inmovilizados se han implementado principalmente para investigar diferentes aspectos de la base neuronal del comportamiento1,2. Aunque esta técnica es apropiada para algunos sistemas sensoriales, la investigación de todo el espectro de la base neuronal del comportamiento es difícil, si no imposible, en animales inmovilizados. Los primeros avances implicaron la grabación de las células Mauthner de peces nadadores atados3,4. Sin embargo, las células Mauthner son desproporcionadamente grandes y las amplitudes potenciales de acción registradas, que pueden ir tan alto como unos pocos mV, facilitan la grabación. Más tarde, Canfield y otros describieron una prueba de concepto cuando se utiliza un animal atado para registrar el telencéfalo de los peces5. Otra técnica reciente para registrar la actividad neuronal de los peces es la toma de imágenes de calcio (ver comentarios de Orger y de Polavieja6, y Vanwalleghem et al.7). Esta técnica fue desarrollada para su uso con larvas de pez cebra porque la piel y el cráneo son transparentes durante la etapa larval. Sin embargo, esta técnica no se puede utilizar para estudiar comportamientos complejos en etapas posteriores de desarrollo.

Aquí, presentamos una técnica novedosa para registrar la actividad neuronal extracelular desde el cerebro de los peces que nadan libremente. Esta es una versión modificada del protocolo descrito en Vinepinsky et al.8. La principal innovación es la adición de un microdrive que permite controlar la posición de los electrodos después de la cirugía. La técnica está diseñada para grabar desde el telencéfalo de peces dorados utilizando un conjunto de tetrodes que están conectados a un registrador de datos neuronales a través de un micromotor. Toda la configuración es inalámbrica y anclada al cráneo del pez. El peso específico del sistema se iguala al peso específico del agua mediante la adición de un pequeño flotador que permite a los peces nadar libremente.

La técnica se basa en el uso de un registrador de datos neuronales que amplifica, digitaliza y almacena la señal en un dispositivo de memoria integrado. El sistema de telemetría del registrador se utiliza para iniciar y detener las grabaciones, y para la sincronización con la cámara de vídeo. En este protocolo, se utiliza un registrador neural de 16 canales, integrado en una caja impermeable junto con el micromotor.

El conjunto de microunidades se fabrica a partir de dos componentes principales: el propio micromotor y la carcasa de microunidad(Figura 1A,B). La carcasa sostiene el micromotor y los tetrodes, y también actúa como el ancla entre el cráneo y la caja del registrador(Figura 1C). La caja registradora de PVC se fabrica mediante un proceso de máquina y se sella mediante una red tórica(Figura 1E-G,véase también Figura suplementaria 1, Figura suplementaria 2y Figura suplementaria 3 para un diagrama tridimensional [3D]). En un extremo, un pedazo de espuma de poliestireno se une a la caja del registrador para compensar el peso del implante y proporcionar al pez un implante neutro de flotabilidad. La construcción del micromotor descrito en el protocolo sigue el procedimiento presentado por Vandecasteele et al.9 con una modificación para conectar el micromotor a la carcasa(Figura 1A). Se presentan todos los pasos principales.

El procedimiento descrito en el protocolo para preparar el cráneo de pescado es similar al que se presenta en Vinepinsky et al.8 y se describe brevemente en el protocolo. Un día después de la cirugía, los peces normalmente se recuperan completamente de los efectos de la anestesia y están listos para los experimentos conductuales. Tenga en cuenta que la ubicación del tetrode se puede ajustar girando el tornillo de micromotor. El tornillo tiene un espaciado de 300 m por rotación completa y se recomienda un avance de 75 m hasta que se alcance la ubicación del cerebro objetivo. Se debe consultar un atlas cerebral adecuado para apuntar a la región cerebral específica de interés. Es aconsejable probar la impedancia del electrodo cada vez que el pez es anestesiado para el reemplazo de la batería o la tarjeta de memoria.

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Protocolo

Todos los procedimientos de cirugía deben ser aprobados por los comités de ética local sobre bienestar animal (por ejemplo, IACUC).

1. Construcción de la carcasa Microdrive

  1. Para construir la carcasa, corte una placa de latón de 1 mm de ancho en una placa de 19 mm x 29 mm x 1 mm utilizando una sierra. Corte dos aberturas de 5,5 mm en cada uno de los lados largos perpendiculares al borde, de modo que cada abertura esté a 6,5 mm de distancia de los lados estrechos(Figura 2A).
  2. Usando alicates, doble el área entre las hendiduras en los lados largos hacia adentro, luego doble la parte inferior hacia adentro y el lado superior hacia afuera para obtener la carcasa(Figura 2B,C).
  3. Usando una broca de 3 mm, haga agujeros para tornillos en la carcasa de la microunidad.
    NOTA: Estos orificios se utilizarán más adelante para fijar la carcasa a la caja del registrador(Figura 2D).
  4. Soldar los lados de la carcasa.
  5. Usando un archivo circular fino, genere una pequeña hendidura semicircular de 1,5 mm en radio en la parte inferior de la carcasa(Figura 2E).
    NOTA: Esto se utilizará más adelante para insertar el tubo de acero inoxidable para guiar los electrodos.
  6. Utilice una broca de 1 mm para hacer un agujero en la parte posterior de la carcasa para los tetidas(Figura 2F).
    NOTA: Un modelo 3D de la carcasa se encuentra en el archivo de alojamiento suplementario.stl.

2. Construcción del Microdrive

  1. Con un cortador, rompa una pieza de tres pines de una tira de cabezal de pasador macho de una sola fila (Figura 1H). Con alicates, extraiga el pasador central.
  2. Con una fresa, corte los pasadores restantes a 10 mm de longitud (2 mm menos que la longitud del tornillo). Otra posibilidad es utilizar un tornillo más largo (ver paso 2.4).
  3. Taladre un agujero utilizando una broca #65 a través del agujero del pasador central. Taladre un hilo con un grifo de 00 a 99.
  4. Montar el micromotor y las placas de latón (7,5 mm x 2,5 mm x 0,6 mm, ver Figura suplementaria 4) de forma que las placas de latón toquen los pasadores. Inserte un tornillo (cabezal redondo #00-90, 12 mm, latón) a través de la primera placa de latón, luego a través de la rosca del cabezal del pasador y la segunda placa de latón. Por último, coloque una tuerca en el tornillo y apriete suavemente la microunidad montada.
  5. Soldar los pasadores junto con las placas de latón, y la tuerca con la punta del tornillo.
  6. Soldar el micromotor en la carcasa de microdrive en cuatro puntos en los lados de las placas de latón microdrive.
  7. Corte un tubo de acero inoxidable de 6 mm de largo con un diámetro interior de 1,5 mm y otro tubo de acero inoxidable de 3 mm de largo con un diámetro interior de 1,2 mm. Pulir los extremos de los tubos para evitar extremos afilados.
  8. Pegue el tubo de 6 mm de largo a la pequeña hendidura semicircular en la parte inferior de la carcasa de micromotor utilizando epoxi. Pegue el acero inoxidable de 3 mm de largo en el cabezal del pasador, alineado con el tubo de 6 mm de largo en la carcasa.
  9. Corte dos segmentos de tubo de silicona de 5 cm de largo con diámetro de 0,64 mm y un tubo de poliimida de 5 cm de largo con diámetro de 0,250 mm.
  10. Inserte los tres tubos en los dos tubos de acero inoxidable. Pegue los tubos al tubo de acero inoxidable unido al cabezal del pasador utilizando pegamento de cianoacrilato. Atornille el micromotor y corte el exceso de tubos de la parte superior e inferior de los dos tubos de acero.
    NOTA: El micromotor con la carcasa ya está listo para su uso(Figura 1C).

3. Preparación de la matriz Tetrode

  1. Para fabricar un implante de dos tetrodes con cuatro electrodos en cada tetrode, prepare ocho cables, cada uno de 12 cm de largo, aislado Formvar, de alambre de tungsteno de 25 m de diámetro.
    NOTA: El mismo diseño puede acomodar cuatro tetrotas.
  2. Coloque un soporte para una placa de interfaz de electrodo de 16 canales (EIB-16) PCB (ver Tabla de Materiales)bajo el microscopio.
  3. Usando una pinza de punta suave y un encendedor, retire el recubrimiento de cada uno de los ocho cables de un lado usando la llama.
    NOTA: Esto es para asegurarse de que el cable se conectará correctamente al conector PCB más adelante.
  4. Empuje un cable en uno de los orificios del EIB-16 con el lado recubierto en el agujero. Coloque un pasador y presiónelo con alicates. Compruebe la conectividad midiendo la resistencia entre el pasador y el lado no recubierto del cable.
    NOTA: La resistencia está en el orden de decenas de Ohms.
  5. Repita el paso 3.4 con los ocho cables.
  6. Pegue dos grupos de cuatro cables juntos usando cinta adhesiva al final de cada cable.
    NOTA: Cada grupo se pegará juntos más tarde para formar un tetroda.
  7. Cortar una pieza de alambre de tungsteno de 12 cm de largo con un diámetro de 50 m. Conéctelo a una de las conexiones EIB-16.
    NOTA: Este cable servirá como electrodo de referencia.
  8. Cortar dos alambres de plata desnuda de 12 cm de largo con un diámetro de 75 m que servirán como base para el registrador de grabación. Soldar los dos cables a la conexión a tierra en el EIB-16.
  9. Sostenga el EIB-16 por encima de un dispositivo de torneado motorizado y coloque el extremo de cinta adhesiva de un grupo de cuatro cables en el dispositivo de afinación motorizado. Aplique 130 rondas en el sentido de las agujas del reloj seguidas de 20 rotaciones en sentido contrario a las agujas del reloj. Aplique pegamento de cianoacrilato para cubrir el tetrodo.
  10. Espera a que se cure el pegamento. Corte el tetrodo cerca de la cinta adhesiva.
  11. Repita los pasos 3.9 y 3.10 con el segundo tetrode.
    NOTA: Esto produce la matriz de dos tetrodes terminado(Figura 1D).

4. Montaje del implante

  1. Al diablo con la microunidad hasta el fondo.
  2. Usando 1 x 3M Phillips tornillos de cabeza redonda, conecte el EIB-16 a la placa de PVC.
  3. Usando pinzas de extremo suave, tire de todos los tetrodes y cables a través del agujero en la parte delantera de la cubierta de la caja del registrador.
  4. Usando los tornillos de cabeza plana Phillips de 2 x 6M, conecte la placa de PVC a la cubierta de la caja del registrador. Mantenga el conector EIB-16 en la orientación correcta para que el registrador pueda montarse en el EIB-16. Asegúrese de que el EIB-16 esté fijado en su lugar para evitar artefactos de movimiento en la señal grabada.
  5. Selle los cables a la caja con epoxi. Aplicar lo menos posible porque el sellado primario se realizará por vulcanización de temperatura ambiente (RTV) más adelante.
  6. Fije la carcasa de la microunidad a la cubierta de la caja del registrador con tornillos de 2 mm.
  7. Enrosque los tetrodes y todos los cables a través del orificio en la parte posterior de la carcasa de la microunidad. Enrosque los tetrodes a través de los dos tubos de silicona en el micromotor. Enhebrar el cable de tungsteno de 50 m a través del tubo de poliimida en el micromotor.
  8. Pegue los tetrodes y los cables a sus tubos aplicando pegamento de cianoacrilato en el extremo superior de los tubos, para asegurar que el movimiento sea consistente con el micromotor. Atornilla roscar el micromotor hasta la parte superior.
  9. Aplique petróleo blando (ver Tabla de Materiales)en el tetrodo expuesto y los cables dentro de la carcasa de la microunidad para evitar el movimiento.
  10. Corte una ventana inferior de 12 mm x 14,5 mm Petri con una cuchilla de afeitar calentada. Fije la ventana a la parte delantera de la carcasa de micromotor con epoxi. Mantenga los cables de tierra fuera de la ventana.
  11. Aplique el recubrimiento RTV a los tetrodes y cables expuestos entre la cubierta de la caja del registrador y la carcasa de la microunidad.
  12. Después de curar la RTV, cierre la caja con un pequeño peso en el interior y sumerja en agua durante la noche para asegurarse de que no haya fugas de agua en la caja.
  13. Corte los teturos y el alambre de referencia a la longitud deseada utilizando tijeras afiladas.
  14. Fije la espuma de poliestireno extruida marcada (ver Tabla de materiales)a la caja. Ajuste su tamaño para que su flotabilidad se equilibre cuando se sumerme en un baño de agua.
  15. Sumerja las puntas de tetrode en solución de color negro platino y utilice una corriente directa (-0,2 oA) para recubrir los electrodos y ajustar la impedancia de los electrodos como desee. Utilice un probador de impedancia multielectrodo (consulte Tabla de materiales)para las mediciones de recubrimiento e impedancia.
    NOTA: En el palio de peces dorados, un valor de 40 kOhm es mejor. Dependiendo de la aplicación, la impedancia del electrodo se puede ajustar modificando el recubrimiento negro platino10,11.

5. Preparación de la anestesia — 1% MS-222 Solución de stock

PRECAUCION: La preparación de la anestesia incluye el uso de MS-222 en polvo, un carcinógeno. Por lo tanto, los pasos 5.2 y 5.3 deben hacerse en una campana química usando guantes.

  1. Añadir 100 ml de agua a un tubo que pueda contener más de 100 ml.
  2. En una campana química, coloque una placa de ponderación desechable en una báscula. Añadir 1 g de polvo MS-222 usando una espátula, luego añadir el polvo al tubo.
  3. Agitar bien el tubo.
    NOTA: En forma líquida, MS-222 se puede utilizar fuera de la campana química usando guantes, pero no requiere una máscara.
  4. Coloque una placa de ponderación desechable en una báscula. Añadir 2 g de bicarbonato de sodio usando una espátula, luego añadir el polvo al tubo. Agitar bien el tubo.

6. Preparación de la calavera de pescado

NOTA: En esta etapa, el pez está listo para la cirugía de implantes. Antes de la cirugía, asegúrese de que todos los componentes y suministros han sido esterilizados por los procedimientos apropiados. Para este paso, se necesita un portapeces en forma de U fuera del agua. En este protocolo, se utiliza un soporte de aluminio que se adapta a un pez dorado largo de cabeza a cola de 15 cm. Este sistema mantiene a los peces fuera del agua mientras perfunde las branquias con agua oxigenada. Para obtener más información, véase Vinepinsky et al.8.

  1. Coloque el pescado en un baño de agua 0.02% MS-222 durante 20 minutos hasta que el pez esté dormido.
  2. Con guantes estériles, saque el pescado del agua y colóquelo en el soporte.
    NOTA: El agua oxigenada que perfunde el pescado contiene MS-222 a una concentración de 0.02%, por lo que el pez permanece anestesiado durante la cirugía.
  3. Usando una espátula estéril, aplicar lidocaína 5% pasta en la piel por encima del lugar designado para la cirugía durante 10 minutos, luego quitar la lidocaína.
    NOTA: Consulta un atlas cerebral adecuado para dirigirte a la región cerebral específica.
  4. Usando un bisturí estéril de 15 cuchillas, retire la piel por encima del cráneo en la región del implante.
  5. Usando un taladro dental con brocas de 0,7 mm, taladre 4 agujeros en el cráneo. Inserte un tornillo de 1 mm (3 mm de largo) en cada orificio y aplique pegamento de cianoacrilato en los orificios justo antes de insertar el tornillo.
  6. Usando un burnisher dental, aplique cemento dental en los tornillos y en la periferia del cráneo expuesto.
  7. Usando el taladro dental, haga un agujero de 5 mm de diámetro en el cráneo por encima de la región cerebral de interés. Retire el tejido graso entre el cráneo y el cerebro y exponga el objetivo de la región cerebral usando pinzas finas y papel de tejido blando. Tenga cuidado de no dañar los vasos sanguíneos grandes debajo del cráneo.
    NOTA: Al final de esta etapa, el pez está preparado para implantar la sonda. Aquí solo se describen los pasos principales específicos de este protocolo. Varios procedimientos postoperatorios (como documentación detallada sobre la salud del animal y la esterilización de las herramientas y el área de la cirugía) no se presentan ni discuten porque son aplicables a todas las cirugías con peces o animales pequeños.

7. Implantación de la sonda

NOTA: Para completar el paso final en el protocolo, se necesita un manipulador que pueda mantener el implante en su lugar mientras se inserta en el cerebro.

  1. Utilice el manipulador para sujetar la cubierta de la caja registradora con los tetódes apuntando hacia el cerebro de los peces.
  2. Doblar el electrodo de referencia de tal forma que cuando los tetrodes se bajan en el cerebro, la referencia permanece fuera del cerebro.
  3. Corta los jardines de tal forma que encajen en el cráneo. Opcionalmente, conecte un cable de tierra a uno de los tornillos del cráneo.
  4. Baje el implante de tal forma que los electrodos se inserten en el cerebro mientras que la parte inferior de la carcasa de microunidad está cerca del cráneo.
  5. Comience a unir el implante al cráneo aplicando una pequeña cantidad de cemento dental entre la carcasa y el tornillo craneal más cercano.
  6. Después de que se cure la primera parte del cemento dental, aplique cemento dental y cierre el agujero por encima del cráneo y todo el cráneo expuesto.
    NOTA: Por lo general, se necesitan varias rondas de aplicaciones de cemento dental para cubrir todo el cráneo expuesto.
  7. Instale el registrador y la batería en la caja y selle la caja con todos los tornillos.
  8. Aplicar antibióticos y analgésicos locales según el tipo de pescado utilizado para los experimentos.
  9. Enjuague las branquias del pez con agua dulce hasta que el pez comience a despertarse. Retire el pescado del soporte y colóquelo de nuevo en su tanque de origen.
    NOTA: El pez se recupera completamente dentro de los 60 minutos después de la cirugía.
  10. Asegúrese de que el pez es capaz de nadar libremente con el implante(Figura 3, Vídeo Suplementario 1). Si es necesario, reajuste el tamaño de la espuma de poliestireno extruido por encima de la caja del registrador de modo que el pez pueda equilibrarse fácilmente.

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Resultados

Durante una sesión de grabación, el pez dorado nadó libremente en un tanque de agua cuadrado mientras se registraba la actividad neuronal en su telencéfalo. El objetivo de estos experimentos era estudiar cómo la actividad neuronal de las células individuales determina el comportamiento del pez. Para ello, es necesario identificar la actividad de punción en los datos registrados. La actividad cerebral, mientras se registraba, fue digitalizada a 31.250 Hz y la paso alta filtrada a 300 Hz po...

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Discusión

Este protocolo detalla los pasos involucrados en la implantación de una matriz de tetrodes en el telencéfalo de nadar libremente peces dorados. Esta técnica implementa un registrador neural que amplifica y registra las señales adquiridas de hasta 16 canales junto con una microunidad que puede ajustar la posición del tetrode en el cerebro. La microunidad permite ajustar la posición en el cerebro para optimizar la grabación.

Este protocolo se puede modificar fácilmente para la grabación desde ot...

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Estamos agradecidos a Nachum Ulanovsky y a los miembros del laboratorio de Ulanovsky por toda su ayuda. Además, estamos agradecidos a Tal Novoplansky-Tzur por la asistencia técnica útil. Agradecemos el apoyo financiero de THE ISRAEL SCIENCE FOUNDATION - FIRST Program (subvención no 281/15), y el Helmsley Charitable Trust a través de la Iniciativa de Robótica Agrícola, Biológica y Cognitiva de la Universidad Ben-Gurion del Negev.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
redondas de 0,7 mmCompatible con el taladro.
Bisturí de 15 cuchillasSigma-Aldrich
Placa PCB de 16 canalesNeurlynxEIB-16
1x3M tornillos de cabeza planaAcero inoxidable. De cualquier tipo.
1x3M tornillosAcero inoxidable. De cualquier tipo.
de latón de 27 cm x 19 cm x 1 mmVer Figura 2
TornillosAcero inoxidable. De cualquier tipo.
Recubrimiento 3140 RTVDow Crowning2767996
75 µ m Alambrede plata A-M Systems
Tornillos de latón #00-90947-1006
Placas de latón 7,5 mm x 2,5 mm x 0,6 mmSe proporciona un dibujo en 3D. Ver suplemento 1
Alambre de tungsteno recubierto 25µ mCalifornia Fine Wire Company5000160Dependiendo de la aplicación, los tetrodes se pueden fabricar a partir de cualquier tipo de alambre. Los alambres populares son alambres de nicroma que se pueden encontrar con diámetros más bajos (p. ej. Sistemas A-M, 762000)
Alambre de tungsteno recubierto 50 y micro; mA-M Systems795500Se puede reemplazar con cualquier otro alambre con
cianoacrílico
Bruñidor dentalComDent UKCualquier pequeña herramienta estéril de acero inoxidable servirá.
Cemento dental - GCFujiPLUSGC431011Probablemente otros cementos dentales funcionarían igual de bien, aunque nunca hemos probado ningún otro.
Taladro dental o taladrode uñas Los taladros dentales son caros, un taladro de esmalte de uñas puede ser un reemplazo barato.
Broca #65947-65
de curado rápidoAquí se puede utilizar cualquier epoxi de curado de 5 minutos.
Caja de registro con junta tórica Seproporciona un dibujo en 3D. Véanse los puntos 1 a 3 del suplemento. La caja debe ser fabricada a máquina (no utilice impresoras 3D). Utilice material transparente para poder ver los LED indicadores en el registrador.
de giro motorizadoHecho a medida como se describe en el sitio web de "open ephys". También se puede obtener de neurolynx ("Tetrode Spinner 2.0") o bulit por otros medios.
Mouselog-16 Registrador neuronalDeuteron Technologies LtdHay varios registradores neuronales disponibles en el mercado, entre ellos: SpikeGadget (UH32 32 canales) y Neurologger 2/2A/2B de Alexei Vyssotski. Cabe señalar que el peso no es un obstáculo importante, ya que se puede contrarrestar con espuma de poliestireno flotante
MS-222Sigma AldrichE10521Ethtl 3-aminobenzoato metanosulfonato 98%
Nano-Z chapado WhiteMatter LLCEl nano-Z se puede comprar en varios proveedores. Se puede utilizar cualquier medidor de impedancia, por ejemplo, IMP-1 / 6662 / 2788, BAK Electronics.
Pines de PCBNeurlynxNeuralynx EIB Pines Tubo
de poliamida 250 y micro; mA-M Systems822000
recargable3.7 Batería Lipo, 370 mAh. Tiene una capacidad de grabación de unas 6 horas. Se pueden utilizar baterías más pequeñas o más grandes para reducir el peso o prolongar el tiempo de grabación.
Tubo de silicona 0,64 mmA-M Systems806100
Acero inoxidable 1,5 mmA-M Systems846000
Bicarbonato de sodioSigma AldrichS9625
Grifo #00-90947-1301
VaselinaAquí se puede utilizar cualquier tipo de protector cutáneo de petróleo suave.
Brocas Phillips Phillips de cabeza redonda Placa de cabeza plana Phillips 2x6M pegamento de baja impedancia de esmalte Epoxi Dispositivo Batería

Referencias

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