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Artículo de método

Derribo estable de genes que codifican proteínas de matriz extracelular en la línea celular de mioblaste C2C12 utilizando small-Hairpin (sh)RNA

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DOI:

10.3791/60824

12 de febrero de 2020

En este artículo

Resumen

Proporcionamos un protocolo para derribar genes que codifican las proteínas de matriz extracelular (ECM) en los mioblastos C2C12 utilizando ARN de horquilla pequeña (sh). Apuntando a ADAMTSL2 como ejemplo, describimos los métodos para la validación de la eficiencia de derribo en el ARNm, la proteína y el nivel celular durante la diferenciación de mioblasto c2C12 a miotubo.

Resumen

Las proteínas de matriz extracelular (ECM) son cruciales para el desarrollo del músculo esquelético y la homeostasis. El derribo estable de genes que codifican proteínas ECM en mioblastos C2C12 se puede aplicar para estudiar el papel de estas proteínas en el desarrollo del músculo esquelético. Aquí, describimos un protocolo para agotar la proteína ECM ADAMTSL2 como ejemplo, utilizando ARN de horquilla pequeña (sh) en células C2C12. Tras la transfección de plásmidos de ARNS, las células estables se seleccionaron por lotes mediante puromicina. Además, describimos el mantenimiento de estas líneas celulares y el análisis fenotípico a través de la expresión de ARNm, la expresión de proteínas y la diferenciación C2C12. Las ventajas del método son la generación relativamente rápida de células de derribo C2C12 estables y la diferenciación confiable de células C2C12 en miotubos multinucleados tras el agotamiento del suero en el medio de cultivo celular. La diferenciación de las células C2C12 puede controlarse mediante microscopía de campo brillante y midiendo los niveles de expresión de los genes marcadores canónicos, como MyoD, miogenina o cadena pesada de miosina (MyHC), lo que indica la progresión de la diferenciación de mioblastos C2C12 en miotubos. En contraste con el derribo transitorio de genes con ARN de interferencia pequeña (si), los genes que se expresan más tarde durante la diferenciación C2C12 o durante la maduración del miotubo pueden ser dirigidos de manera más eficiente mediante la generación de células C2C12 que expresan establemente el ARNS. Las limitaciones del método son una variabilidad en las eficiencias de derribo, dependiendo del ARNS específico que se puede superar mediante el uso de estrategias de eliminación genética basadas en CRISPR/Cas9, así como los posibles efectos fuera del objetivo del ARNS que deben ser considerados.

Introducción

Las proteínas de matriz extracelular (ECM) proporcionan soporte estructural para todos los tejidos, median la comunicación celular y determinan el destino celular. La formación y remodelación dinámica de ECM es por lo tanto crítica para mantener la homeostasis tisular y órgano1,2. Variantes patológicas en varios genes que codifican proteínas ECM dan lugar a trastornos musculoesqueléticos con fenotipos que van desde distrofias musculares hasta pseudomouscular build3,4. Por ejemplo, las variantes patógenas en ADAMTSL2 causan la displasia geleóís....

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Protocolo

1. Preparación del ADN del Plásmido shRNA de Escherichia coli

  1. Generación de colonias bacterianas clonales portadoras de los plásmidos del ARNH
    1. Obtener existencias de glicerol de E. coli que transporta plásmidos de ARNS Específicos del objetivo y un plásmido de control de fuentes comerciales (Tabla de Materiales).
      NOTA: Se utilizaron tres plásmidos de ARNs shRNA diferentes, dirigidos a diferentes regiones del ARNm de Adamtsl2 murin. Se seleccionó un shRNA para apuntar a la región no traducida de 3'(3'UTR) de Adamtsl2 para facilitar experimentos de rescate con plásmidos de expresión que codifican ....

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Resultados

La selección de C2C12 resistente a la puromicina se puede lograr en 10 a 14 días después de la transfección debido a la eliminación eficiente de células no resistentes, es decir, células no transinfectadas(Figura 1B). Por lo general, más del 80% de las células se separan de la placa de cultivo celular y estas células se eliminan durante el mantenimiento celular de rutina. Las células C2C12 resistentes a la puromicina que expresan el shRNA de control (revuelto) conservan la m.......

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Discusión

Aquí se describe un protocolo para el derribo estable de proteínas ECM en mioblastos C2C12 y para el análisis fenotípico de la diferenciación de mioblastos C2C12 en miotubos. Varios factores determinan el resultado del experimento y deben ser considerados cuidadosamente. Mantener las células C2C12 en la fase de proliferación es un paso crítico para mantener las células C2C12 en el estado del precursor del mioblasto. Conservar la capacidad de las células C2C12 para diferenciarse consistentemente en miotubos depende de i) .......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

D.H. cuenta con el apoyo de los Institutos Nacionales de Salud (Instituto Nacional de Artritis y Enfermedades Musculoesqueléticas y de la Piel, NIAMS, número de subvención AR070748) y fondos semilla del Departamento de Ortopedia de Leni & Peter W. Monte Sinaí.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
AcetonaFisher Chemical 191784
AgarFisher BioreactivosBP1423
AmpicilinaFisher BioreactivosBP1760-5
Contador de células automatizado Countesse IIInvitrogenA27977
Bradford ReactivoThermo Scientific P4205987
células C2C12ATCCCRL-1772
Portaobjetos de cámaraInvitrogenC10283
CloroformoFisher Químico183172
DMEMGIBCO11965-092
DMSOFisher BioreactivosBP231-100
DNasa I (grado de amplificación)Invitrogen18068015
Suero fetal bovinoVWR97068-085
GAPDHEMD MilliporeMAB374
GlicinaVWR Life Sciences19C2656013
Anticuerpo secundario anti-ratón de cabra (IRDYE 800CW)Li-CorC90130-02
Anticuerpo secundario anti ratón de cabra (rojo de rodamina)Jackson Immune Research133389
HClFisher ChemicalA144S
Incubadora (agitadora)Denville Scientific Corporation1704N205BC105
MercaptoethanolAmresco, VWR Life Sciences2707C122
Kit de extracción de plásmidos MidiprepQiagen12643
4 (cadena pesada de miosina)Invitrogen14-6503-82
Medio de montajeInvitrogen2086310
NaClVWR Life Sciences241
tensioactivo/detergente no iónicoVWR Life Sciences18D1856500
ParaformaldehídoMP199983
PBSFisher BioreagentsBP399-4
PEIPolysciences23966-1
Penicilina/estreptomicinaantibióticos GIBCO15140-122
PetriplacasCorning353003
Tubos de polipropilenoFisherbrand149569C
Comprimidos de cóctel inhibidor de la proteasaRoche33576300
PuromicinaFisher ScientificBP2956100
PCR (en tiempo real)Biosistemas aplicados4359284
reacción tubosEppendorf22364111
Transcripción inversa Master MixApplied Biosystems4368814
tampón RIPAThermo ScientificTK274910
sh plásmido de controlSigma-Aldrich07201820MN
sh 3086 plásmidoSigma-AldrichTRCN0000092578
sh 972 plásmidoSigma-Aldrich
sh 1977 plásmidoSigma-AldrichTRCN0000092582
Espectrofotómetro (Nanodrop)Thermo ScientificNanoDrop One C
SYBR Green Reagent Master Mix AppliedBiosystems743566
Ácido tricloroacéticoAcros Organics30145369
Reactivo de TrizolAmbion
Azul de tripánGIBCO15250-061
TriptonaFisher BioreactivosBP1421
Tripsina EDTA 0.25%Gibco-Life Technology Corporation2085459
Agua (tratada con DEPC y libre de nucleasas)Fisher Bioreagents186163
Western blotBioradMini Protean Tetra Cell
Extracto de levaduraFisher BioreagentsBP1422
MyosinTRCN0000092579254707 apparatus

Referencias

  1. Tanzer, M. L. Current concepts of extracellular matrix. Journal of Orthopaedic Science: Official Journal of the Japanese Orthopaedic Association. 11 (3), 326-331 (2006).
  2. Hubmacher, D., Apte, S. S. The biology of the extrace....

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Etiquetas

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