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Artículo de método

Conjugaciones BODIPY convencionales para microscopía de superresolución de células vivas y seguimiento de una sola molécula

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DOI:

10.3791/60950

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8 de junio de 2020

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* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Los conjugados BODIPY convencionales se pueden utilizar para la microscopía de localización de células vivas de una sola molécula (SMLM) a través de la explotación de sus dimers de estado de tierra de formación transitoria y cambio de rojo. Presentamos un protocolo SMLM optimizado para rastrear y resolver lípidos neutros subcelulares y ácidos grasos en mamíferos vivos y células de levadura a escala de longitud nanoscópica.

Resumen

Las técnicas de microscopía de localización de molécula única (SMLM) superan el límite de difracción óptica de la microscopía de fluorescencia convencional y pueden resolver las estructuras intracelulares y la dinámica de las biomoléculas con una precisión de 20 nm. Un requisito previo para SMLM son los fluoróforos que pasan de un estado oscuro a un estado fluorescente para evitar la superposición espacio-temporal de sus funciones de propagación de puntos en cada uno de los miles de marcos de adquisición de datos. Los BODIPYs son tintes bien establecidos con numerosos conjugados utilizados en la microscopía convencional. La formación transitoria de dimers de estado de tierra BODIPY (DII)de cambio rojo da como resultado una emisión brillante de molécula única que permite la microscopía de localización de molécula única (SMLM). Aquí presentamos un protocolo simple pero versátil para SMLM con conjugados BODIPY convencionales en levaduras vivas y células de mamíferos. Este procedimiento se puede utilizar para adquirir imágenes de superresoría y para rastrear estados únicos BODIPY-DII para extraer información espacio-temporal de conjugados BODIPY. Aplicamos este procedimiento para resolver las gotas lipídicas (LD), los ácidos grasos y los lisosomas en las células vivas de levadura y mamíferos en la escala de longitud nanoscópica. Además, demostramos la capacidad de imagen multicolor con tintes BODIPY cuando se utilizan junto con otras sondas fluorescentes. Nuestros resultados representativos muestran la distribución espacial diferencial y la movilidad de los ácidos grasos BODIPY y los lípidos neutros en levaduras en condiciones de alimentación y ayuno. Este protocolo optimizado para SMLM se puede utilizar con cientos de conjugados BODIPY disponibles comercialmente y es un recurso útil para estudiar procesos biológicos a nanoescala mucho más allá de las aplicaciones de este trabajo.

Introducción

Las técnicas de microscopía de localización de una sola molécula (SMLM) como la microscopía de reconstrucción óptica estocástica (STORM) y la microscopía de localización fotoactivada (PALM) han surgido como métodos para generar imágenes de superresolución con información más allá del límite de difracción óptica de Abbe1,,2 y para el seguimiento de la dinámica de biomoléculas individuales3,,4. Uno de los requisitos para las sondas compatibles con SMLM es la capacidad de controlar el número de fluoróforos activos en cualquier momento para evitar la super....

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Protocolo

NOTA: Para la clonación de levadura y el etiquetado endógeno, consulte nuestra reciente publicación10.

1. Preparación de muestras de células de levadura para imágenes

  1. Preparar un cultivo líquido durante la noche de una cepa de levadura w303. Usando un palo de madera estéril, detecte una pequeña cantidad de células de levadura de una placa de agar que contiene extracto de levadura–peptona-dextrosa en un tubo de cultivo con 2 ml de dextrosa completa sintética (SCD) mediana. Incubar el tubo durante la noche en una incubadora de agitación a 270 rpm y 30oC.
  2. Realice una dilución de 1:50 por la mañana de....

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Resultados

Aquí, presentamos un procedimiento optimizado de preparación, adquisición y análisis de muestras para SMLM utilizando conjugados BODIPY basados en el protocolo anterior (Figura 1A). Para demostrar un ejemplo del flujo de trabajo para adquirir y analizar datos SMLM, empleamos BODIPY (493/503) en levadura para resolver LDs por debajo del límite de difracción óptica (Figura 1B-F). Ejemplos de los diferentes modos de imagen multicolor de BODIPY junt.......

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Discusión

En este protocolo, demostramos cómo los conjugados BODIPY convencionales se pueden utilizar para obtener imágenes SMLM con una mejora del orden de magnitud en la resolución espacial. Este método se basa en la explotación de los estados DII previamente reportados y desplazados en rojo de los tintes BODIPY convencionales, que se forman transitoriamente a través de encuentros bimolemosos. Estos estados pueden ser específicamente excitados y detectados con longitudes de onda cambiadas en rojo y son lo suficienteme.......

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Divulgaciones

Los autores no declaran intereses en competencia.

Agradecimientos

La investigación reportada en esta publicación fue apoyada por el Instituto Nacional de Ciencias Médicas Generales de los Institutos Nacionales de Salud bajo el número de premio R21GM127965.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
BODIPY C12ThermoFisherD3822Análogo de ácidos grasos verdes
BODIPY C12Rojo ThermoFisherD3835Análogo de ácidos grasos rojos
BODIPY(493/503)ThermoFisherD3922Marcador lipídico
neutro Concanavalin ASigma-AldrichC2010Inmovilización celular en superficie de vidrio
Drop-out Mix Completo sin base nitrogenadaUS BiologicalD9515Aminoácidos para SCD
DextrosaSigma-AldrichG7021Fuente de carbono para SCD
Ocho pocillosCellvisC8-1.58-NCubreobjetos con cámara
de ocho pocillos, Lb-Tek IISigma-AldrichCobertáceo con cámara
ET525/50ChromaFiltro de paso de banda
ET595/50ChromaFiltro de paso de banda
ET610/75ChromaFiltro de paso de banda
Suero fetal bovino (FBS)Gibco26140079Serum
FF652SemrockDivisor de haz
FF731/137SemrockFiltro de paso de banda
FluoroBrite DMEMThermoFisherA1896701Medio
de cultivo celularHal4000Zhuang Lab, UniversidadSoftware de adquisición de datos
Ixon89Ultra DU-897UAndorCámara EMCCD para detección de fotones
Láser 405, 488, 561, 640 nmCW-OBIS Láserespara excitación
Insight3Zhuang Lab, UniversidadSoftware de localización de molécula única
L-GlutaminaGibco25030-081Aminoácido necesario para el cultivo
celular Solución de adquisición de imágenes de células vivasThermoFisherA14291DJtampón de imagen
Lysotracker GreenThermoFisherL7526Marcador de lisosoma basado en Bodipy
Células ATCC U2OS de mamíferos (Manassas, VA)Dr. Jochen Mueller (Universidad de Minnesota)
Nikon-CFI Apo 100 1.49 N.ANikonInmersión en aceite
Objetivo Penicilina estreptomicinaGibco15140-122Antibióticos
Piruvato de sodioGibco11360-070Suplemento para cultivo celular
T562lpxrChromaBeam splitter
Trypsin-EDTAGibco15400-054Disociación de la célula adherente
W303 MATa cepaHorizon-DharmaconYSC1058Cepa de levadura
parental Levadura Base nitrogenadaSigma-AldrichY1250Base nitrogenada sin aminoácidos
zt405/488/561/640rdcChromaEspejo dicroico cuádruple
de Harvard de Harvard

Referencias

  1. Rust, M. J., Bates, M., Zhuang, X. Sub-diffraction-limit imaging by stochastic optical reconstruction microscopy (STORM). Nature Methods. 3 (10), 793-796 (2006).
  2. Betzig, E., et al. Imaging intracellular fluorescent proteins at nanometer resolution.

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Reimpresiones y permisos

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