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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Los tumores de cáncer de mama humanorecién exhalados se caracterizan por espectroscopia de terahercios e imágenes siguiendo protocolos de manejo de tejidofresco. El posicionamiento del tejido se tiene en cuenta para permitir una caracterización eficaz, al tiempo que se proporciona un análisis de manera oportuna para futuras aplicaciones intraoperatorias.
Este manuscrito presenta un protocolo para manejar, caracterizar e imaginar tumores de mama humanos recién extirpados utilizando técnicas de imágenes y espectroscopia de terahercios pulsadas. El protocolo implica el modo de transmisión de terahercios con incidencia normal y el modo de reflexión de terahercios en un ángulo oblicuo de 30o. Los datos experimentales recopilados representan pulsos de dominio de tiempo del campo eléctrico. La señal de campo eléctrico de terahercios transmitida a través de un punto fijo en el tejido extirpado se procesa, a través de un modelo analítico, para extraer el índice de refracción y el coeficiente de absorción del tejido. Utilizando un escáner de motor paso a paso, el pulso emitido por terahercios se refleja desde cada píxel del tumor proporcionando una imagen plana de diferentes regiones de tejido. La imagen se puede presentar en el dominio de tiempo o frecuencia. Además, los datos extraídos del índice de refracción y el coeficiente de absorción en cada píxel se utilizan para proporcionar una imagen terahercio tocográfica del tumor. El protocolo demuestra una clara diferenciación entre tejidos cancerosos y sanos. Por otro lado, no adherirse al protocolo puede dar lugar a imágenes ruidosos o inexactos debido a la presencia de burbujas de aire y restos de líquido en la superficie del tumor. El protocolo proporciona un método para la evaluación de márgenes quirúrgicos de tumores mamarios.
La imagen y la espectroscopia de Terahertz (THz) ha sido un área de investigación en rápido crecimiento en la última década. El continuo desarrollo de emisores de THz más eficientes y consistentes en el rango de 0,1-4 THz ha hecho que sus aplicaciones crezcan significativamente1. Un área donde THz ha demostrado ser prometedor y un crecimiento significativo es el campo biomédico2. Se ha demostrado que la radiación THz es no ionizante y biológicamente segura a los niveles de potencia generalmente utilizados para analizar los tejidos fijos3. Como resultado, la imagen tHz y la espectroscopia se ha utilizado para clasificar y diferenciar diversas características del tejido, como el contenido de agua para indicar daño a quemaduras y curación4, cirrosis hepática5,y cáncer en los tejidos extirpado66,7. La evaluación del cáncer en particular abarca una amplia gama de posibles aplicaciones clínicas y quirúrgicas, y se ha investigado para los cánceres del cerebro8, hígado9, ovarios10, tracto gastrointestinal11, y mama7,12,13,14,,15,16,17,18,19.
Las aplicaciones de THz para el cáncer de mama se centran principalmente en apoyar la cirugía de conservación de mamas, o lumpectomía, a través de la evaluación del margen. El objetivo de una tumorectomía es extirpar el tumor y una pequeña capa de tejido sano circundante, en contraste con la mastectomía completa, que extirpa toda la mama. El margen quirúrgico del tejido extirpado se evalúa a través de la patología una vez que la muestra se ha fijado en formalina, seccionada, incrustada en parafina y montada en rodajas de 4 m a 5 m en portaobjetos de microscopio. Este proceso puede llevar mucho tiempo y requiere un procedimiento quirúrgico secundario en un momento posterior si se observa un margen positivo20. Las directrices actuales de la Sociedad Americana de Oncología Radioterápica definen este margen positivo como que las células cancerosas se encontacto con la tinta de margen a nivel superficial21. Las imágenes de THz para tejido hidratado de alta absorción se limitan principalmente a imágenes superficiales con alguna penetración variable en función del tipo de tejido, que es suficiente para satisfacer las necesidades quirúrgicas de evaluación rápida del margen. Un análisis rápido de las condiciones del margen durante el ajuste quirúrgico reduciría en gran medida los costos quirúrgicos y la tasa de procedimiento de seguimiento. Hasta la fecha, THz ha demostrado ser eficaz para diferenciar entre el cáncer y el tejido sano en los tejidos fijos en formalina, incrustados en parafina (FFPE), pero se necesita una investigación adicional para proporcionar una detección fiable del cáncer en los tejidos recién extirpados7.
Este protocolo detalla los pasos para realizar imágenes y espectroscopia de THz en muestras de tejido humano recién extirpadas obtenidas de un biobanco. Las aplicaciones de THz basadas en tejidos de cáncer de mama humano recién extirpado rara vez se han utilizado en la investigación publicada7,18,22,23, especialmente por grupos de investigación no integrados con un hospital. El uso de tejidos recién extirpado es igualmente raro para otras aplicaciones de cáncer, con la mayoría de los ejemplos de cáncer humano no mamario que se reportan para el cáncer de colon24,25. Una razón para esto es que los bloques de tejido FFPE son mucho más fáciles de acceder y manejar que el tejido recién extirpado a menos que el sistema de THz que se utiliza para el estudio es parte del flujo de trabajo quirúrgico. Del mismo modo, la mayoría de los sistemas de THz de laboratorio comercial no están preparados para manejar tejido fresco, y los que lo hacen todavía están en las etapas de uso del crecimiento de la línea celular o sólo han comenzado a mirar el tejido extirpado de los modelos animales. Para aplicar THz a un entorno intraoperatorio se requiere que se desarrollen pasos de imagen y caracterización para el tejido fresco de antemano para que el análisis no interfiera con la capacidad de realizar patologías estándar. Para las aplicaciones que no están intrínsecamente destinadas a ser intraoperatorias, la caracterización de tejido fresco sigue siendo un paso difícil que debe abordarse para trabajar hacia aplicaciones in vivo y diferenciación.
El objetivo de este trabajo es proporcionar una directriz para la aplicación de THz para el tejido recién extirpado utilizando un sistema comercial de THz. El protocolo fue desarrollado en un sistema de imágenes y espectroscopia THz26 para tumores de cáncer de mama murino13,17,19 y se extendió al tejido quirúrgico humano obtenido de biobancos7,18. Mientras que el protocolo se generó para el cáncer de mama, los mismos conceptos se pueden aplicar a sistemas de imágenes de THz similares y otros tipos de cánceres de tumor sólido que se tratan con cirugía donde el éxito depende de la evaluación de márgenes27. Debido a una cantidad bastante pequeña de resultados de THz publicados en tejidos recién extirpado, este es el primer trabajo a los conocimientos de los autores para centrarse en el protocolo de manejo de tejido fresco para la toma de imágenes y caracterización de THz.
Este protocolo sigue todos los requisitos establecidos por el departamento de Salud y Seguridad Ambiental de la Universidad de Arkansas.
1. Configurar el área de manipulación de tejidos

Figura 1: Configuración del área de manipulación de tejidos. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
2. Manejo del tumor de cáncer de mama fresco para la espectroscopia de transmisión de THz
PRECAUCION: Antes de manipular cualquier tejido vivo, ponte guantes de mano de nitrilo, gafas de protección para los ojos, una máscara facial y una capa de laboratorio. Utilice siempre pinzas de laboratorio para manipular los tejidos y evitar tocarlos directamente con las manos. Todo el trabajo con tejido fresco fuera de un recipiente sellado o de la etapa de exploración debe llevarse a cabo en el área de manipulación de tejidos establecida en el paso 1.1.
NOTA: Todos los tejidos tratados en este trabajo fueron enviados en el medio modificado de Dulbecco (DMEM) y la solución antibiótica del biobanco.

Figura 2: Seccionamiento del tumor para las mediciones de espectroscopia de transmisión de THz. (A) Fotografía del tumor a granel. (B) Fotografía de las pequeñas secciones (0,5 mm) del tumor cortado del tumor a granel. (C) La sección tumoral en rodajas colocada en el soporte de muestra líquida entre las dos ventanas de cuarzo con un espaciador de politetrafluoroetileno de 0,1 mm para la medición de espectroscopia. Figura reeditada de T. Bowman et al.18 con permiso de SPIE. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
3. Mediciones de Espectroscopia de Transmisión THz

Figura 3: Configuración del módulo de espectroscopia de transmisión THz. (A) Cámara de núcleo THz con el módulo de transmisión montado en ella. (B) Una fotografía del soporte de la muestra líquida. (C) El soporte de muestra colocado dentro de la cámara central para las mediciones. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
4. Manejo del tumor de cáncer de mama fresco para imágenes del modo de reflexión THz

Figura 4: Preparación de muestras de tumores frescos para imágenes de THz. (A) Tumor colocado en papel filtrante para secar. (B) Tumor colocado en la placa de poliestireno sobre la ventana de imágenes con almohadillas de toallita de tejido para absorber el exceso de líquidos. (C) Tumor visto desde abajo para rastrear la orientación y comprobar si hay burbujas de aire. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 5: Configuración del sistema para la creación de imágenes de reflexión. (A) Base de espejo del módulo de imágenes de reflexión. (B) Etapa de escaneado. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
NOTA: Otros espesores y materiales de placa son adecuados para el paso 4.5, pero deben tener un espesor uniforme y ser de absorción lo suficientemente baja como para no impedir la señal de THz.

Figura 6: Reflejos de THz de las interfaces inferior y superior de la placa de poliestireno. (A) Incidente de señal de THz y se refleja a partir de una placa de poliestireno de 1,2 mm de espesor. (B) Señales de dominio de tiempo THz primarias y secundarias medidas del poliestireno. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
5. Postprocesamiento del Tejido Fresco en Preparación para el Procedimiento de Histopatología

Figura 7: Post procesamiento del tumor después de la toma de imágenes de THz. (A) Tumor colocado boca abajo sobre el soporte de cartón y teñido con tinte de marcado tisular. (B) Filtrar el papel colocado sobre el tumor y pegado para mantener el contacto. (C) Tumor manchado fijado en el cartón sumergido en una solución de formalina tamponada 10% neutra y sellado con parafilm. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
6. Eliminación de Residuos Peligrosos

Figura 8: Fotografía de la bolsa de residuos biopeligrosas. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
7. Procesamiento de datos para construir imágenes THz


es el coeficiente de propagación complejo en la región j, donde es la frecuencia angular, c es la velocidad de la luz en vacío, nj es la parte real del índice de refracción, y elabs,j es el coeficiente de absorción18. La región 1 es aire, la Región 2 es la placa de poliestireno, y la Región 3 es el tejido.8. Extracción de propiedades eléctricas del tejido utilizando datos de espectroscopia de transmisión

en general se define como . ñ es el índice de
refracción complejo definido como , donde n es la parte real del índice de refracción; c es la velocidad de la luz; es la frecuencia angular; y abs es el coeficiente de absorción15.Los resultados de las imágenes de THz18 obtenidos siguiendo el protocolo antes mencionado de la muestra de tumor de cáncer de mama humano #ND14139 recibidos del biobanco se presentan en la Figura 9. Según el informe patológico, el tumor #ND14139 era un carcinoma ductal infiltrante de grado I/II obtenido de una mujer de 49 años a través de un procedimiento de cirugía de lumpectomía mamaria izquierda. La fotografía del tumor se muestra en la Figura 9A,la imagen patopatología de la Figura 9By la imagen de espectros de potencia de THz obtenida mediante la ecuación (1) en el protocolo se muestra en la Figura 9C. La evaluación de la imagen patopatología fue realizada por nuestro patólogo consultor en la Universidad Estatal de Oklahoma. Al correlacionar la imagen de THz con la imagen patológica, estaba claro que la región del cáncer (es decir, la región de color rojo en la Figura 9C)mostraba un mayor reflejo que la región grasa (es decir, la región de color azul en la Figura 9C). El círculo azul cerca del centro de la región cancerosa en la Figura 9C se debió a la presencia de una burbuja de aire debajo del tumor durante el proceso de diagnóstico por imágenes.
También se presentan imágenes tomográficas basadas en las propiedades eléctricas del tumor obtenidas utilizando el modelo mencionado anteriormente para cada píxel (2.477 píxeles en total). Las imágenes tomográficas basadas en los datos del coeficiente de absorción (cm-1) (imágenes) y del índice de refracción(n- imagen) del tumor obtenidos en la frecuencia 0,5 THz y 1,0 THz se muestran en las figuras 9D, 9E, 9Fy 9G,respectivamente. A medida que aumentaba la frecuencia, los valores calculados del coeficiente de absorción (cm-1) para el cáncer y los píxeles de grasa aumentaron, con píxeles de cáncer que muestran valores más altos que la grasa en ambas frecuencias. Por el contrario, el índice de refracción de ambos tejidos disminuyó a medida que aumentaba la frecuencia. Cabe señalar que la fase medida se convirtió en objeto de variaciones a escala de micrómetro en la nivelación de la etapa de imagen, el espesor de la placa de poliestireno y la fluctuación del motor paso a paso a medida que aumentaba la frecuencia. Por ejemplo, las líneas horizontales observadas en las figuras 9E y 9G se debieron al pequeño desplazamiento de fase introducido por los motores paso a paso durante el proceso de escaneo, que no se observó a frecuencias más bajas.

Figura 9: Análisis del tumor de cáncer de mama #ND14139 utilizando la técnica de diagnóstico por imágenes de THz. (A) Fotografía del tumor. (B) Imagen patopatología de baja potencia del tumor. (C) imagen de espectros de potencia de THz sobre el rango de frecuencia0,5 THz–1,0 THz. (D) imagen del coeficiente de absorción tomográfica de THz obtenida a 0,5 THz. Esta imagen fue construida utilizando los datos del coeficiente de absorción extraídoen en cada píxel de los datos de imágenes de reflexión sin procesar del tumor. (E) Imagen del coeficiente de absorción obtenida a 1,0 THz. (F) Imagen de índice de refracción (n- imagen) obtenida a 0,5 THz. Esta imagen se construyó utilizando los datos de índice de refracción extraídos en cada píxel a partir de los datos de imágenes de reflexión sin procesar del tumor. (G) Imagen de índice de refracción (n- image) obtenida a 1,0 THz. Figura republicada de T. Bowman et al.18 con permiso de SPIE. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Los resultados de THz discutidos en la Figura 9 se obtuvieron siguiendo con éxito el protocolo descrito. Un manejo insuficiente del tejido puede conducir a resultados de imágenes engañosas. Por ejemplo, los resultados de las imágenes de THz en la Figura 10 para los #ND10405 de tumor de cáncer de mama humano muestran los efectos del secado insuficiente. El exceso de solución DMEM en el tejido dominó la imagen del espectro de potencia THz del tumor en la Figura 10B28 con alta reflexión que no se correlacionacon con la imagen patopatología mostrada en la Figura 10A28. Esto condujo a un resultado falso positivo, lo que sugiere una mayor presencia de cáncer en el tumor. DMEM mostró un índice de refracción igualmente alto y un coeficiente de absorción al agua, como se ve en las figuras 10C19 y 10D19,por lo que se recomienda secar el tumor correctamente antes de tomar imágenes.

Figura 10: El efecto sobre las imágenes tumorales extraídas de la solución DMEM sin secarse con papel filtrante. (A) Imagen patopatología de baja potencia del tumor #ND10405. (B) Imagen de espectro de potencia de THz de #ND10405 tumoral en el rango de frecuencia0,5 THz–1,0 THz. (C) La gráfica de índice de refracción de transmisión para DMEM, PBS y agua que va desde 0,15 THz–3,5 THz. (D) La gráfica de coeficiente de absorción de transmisión (cm–1) para DMEM, PBS, y el agua que va desde 0.15 THz–3.5 THz. Figura 10A, 10B se vuelven a publicar de T. Bowman y al.28 con permiso de IEEE y Figura 10C, Figura 10D se vuelven a publicar de N. Vohra et al.19 con permiso de IOP Publishing, Ltd. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Otro ejemplo de adherencia insuficiente al protocolo se muestra para el tumor #ND11713 en la Figura 11. En este caso, las burbujas de aire entre la placa de poliestireno y el tumor no se extirparon cuando el tumor se colocó en la placa para el procedimiento de diagnóstico por imágenes. Esto dio lugar a varios puntos de baja reflexión a través de la imagen de THz en la Figura 11B,que impidió la comparación precisa con la patología en la Figura 11A. Por lo tanto, si se observan burbujas de aire después de colocar el tumor en la placa, presione con las pinzas o levante el tumor y enrolle suavemente sobre el poliestireno hasta que se retiren los huecos de aire.

Figura 11: Los artefactos en la imagen de THz causados por la presencia de burbujas de aire entre la placa de poliestireno y el tumor. (A) Imagen patopatología de baja potencia del #ND11713 tumoral. (B) Imagen de espectro de potencia de THz de #ND11713 tumoral en el rango de frecuencia de 0.5–1.0 THz. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
En la Figura 12se presentan los resultados de la espectroscopia de transmisión18 para la misma muestra (n.o ND14139). Las secciones tumorales fueron tomadas de puntos
y
en la Figura 12A y se caracterizaron siguiendo el protocolo. Ambos puntos seleccionados fueron tomados de la región del tejido canceroso en el tumor de acuerdo con la imagen patológica en la Figura 12B. El coeficiente de absorción extraído y el índice de refracción para ambas secciones tumorales se presentan en la Figura 12C,D. Ambos puntos mostraron un buen acuerdo para todo el rango de frecuencias. La curva negra de 0.15–2 THz en la Figura 12C y la Figura 12D representa los datos obtenidos de la literatura23 para comparar los resultados obtenidos en nuestro trabajo.

Figura 12: La caracterización del tumor de cáncer de mama #ND14139 utilizando espectroscopia de transmisión de THz. (A) La fotografía del tumor
con dos puntos seleccionados marcados y desde donde se cortaron las secciones de 0,5 mm de espesor del tumor para las mediciones de espectroscopia de transmisión. (B) Imagen patopatología de baja potencia del tumor. (C) La gráfica del coeficiente de absorción de la transmisión (cm
–1) oscila entre 0,15–3,5 THz en puntos
y . (D) La gráfica del índice de refracción de transmisión
que oscila entre 0,15–3,5 THz en puntos y . Figura reeditada de T. Bowman et al.18 con permiso de SPIE. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Los autores declaran que no tienen conflicto de intereses.
Los tumores de cáncer de mama humanorecién exhalados se caracterizan por espectroscopia de terahercios e imágenes siguiendo protocolos de manejo de tejidofresco. El posicionamiento del tejido se tiene en cuenta para permitir una caracterización eficaz, al tiempo que se proporciona un análisis de manera oportuna para futuras aplicaciones intraoperatorias.
Este trabajo fue financiado por el Premio de los Institutos Nacionales de Salud (NIH) R15CA208798 y en parte por el Premio de la Fundación Nacional de Ciencias (NSF) n.o 1408007. La financiación del sistema de THz pulsado se obtuvo a través del Premio NSF/MRI n.o 1228958. Reconocemos el uso de tejidos adquiridos por el National Disease Research Interchange (NDRI) con el apoyo de la subvención DE NIH U42OD11158. También reconocemos la colaboración con el Laboratorio de Diagnóstico de Enfermedades Animales de Oklahoma en la Universidad Estatal de Oklahoma para llevar a cabo el procedimiento de histopatología en todos los tejidos manejados en este trabajo.
| 70 % de alcohol isopropílico | VWR | 89108-162 | Contiene un 70 % de isopropanol de grado USP y un 30 % de agua desionizada de grado USP |
| Detergente en polvo Alconox | VWR | 21835-032 | Detergente concentrado para eliminar contaminantes orgánicos de vidrio, metal, acero inoxidable, porcelana, cerámica, plástico, caucho y fibra de vidrio |
| Bolsas de riesgo biológico | Fisher Scientific | 19-033-712 | Bolsas de repuesto para contenedores de residuos de riesgo biológico aprobados por Justrite FM |
| Soporte de cartón | N/A | N/A | Cartón de desecho para mantener intacta la cara de la imagen del tejido cuando se sumerge en formol |
| Tubos de centrífuga | VWR | 10026-078 | Tubos de centrífuga con tapas planas, fondo cónico, polipropileno, estéril, línea estándar |
| Hisopos de algodón | Walmart | 551398298 | hisopos de algodón originales utilizados para teñir el Alcohol |
| etílico | VWR | 71002-426 | KOPTECH Alcohol etílico anhidro puro (sin desnaturalizar) (200 grados/100%) |
| Gafas de protección ocular | VWR | 89130-918 | Kimberly-clark Gafas de seguridad profesionales |
| Mascarilla | VWR | 95041-774 | Mascarillas quirúrgicas DUKAL Corporation |
| Papel de filtro | Sigma Aldrich | Z240087 | Whatman Filtros de celulosa de grado 1 |
| Solución de formalina | Sigma Aldrich | HT501128-4L | 10% formalina tamponada neutra |
| Tumores humanos recién extirpados (Carcinoma ductal infiltrante (IDC))Intercambio | Nacional de Investigación de Enfermedades (biobanco NDRI | N/A | Se firma un protocolo con el NDRI para el tipo de tumores requeridos |
| IRADECON Solución de lejía | VWR | 89234-816 | Solución prediluida de hipoclorito de sodio |
| Toallitas KIMTECH SCIENCE | VWR | 21905-026 | Kimberly-clark toallitas profesionales Kim |
| Bata de laboratorio | VWR | 10141-342 | Este número de catálogo es para abrigos de tamaño mediano |
| Pinzas de laboratorio/Pinzas | VWR | 82027-388 | Se puede utilizar cualquier pinza de laboratorio siempre que no dañe el tejido |
| Portamuestras de líquido (dos ventanas de cuarzo con un espaciador de teflón de 0,1 mm) | TeraView, Ltd | N/A | Ventanas de cuarzo de 1" de diámetro y 0,1452" de espesor |
| nitrilo | VWR | 82026-426 | Este número de catálogo es para guantes de tamaño mediano |
| Cilindro de nitrógeno | Airgas | NI UHP300 | NITRÓGENO UHP GR 5.0 TAMAÑO 300 |
| Toalla de papel | VWR | 14222-321 Hojas de | 11" x 8,78", 1 capa |
| Parafilm | VWR | 52858-076 | Termoplástico flexible. Hoja enrollada e impermeable entrelazada con papel para evitar la autoadherencia. |
| Placa de Petri | VWR | 470210-568 | VWR Placa de Petri, Deslizante, Placa mono (parte inferior individida) |
| Placa de poliestireno | Home Depot | 1S11143A | ~ Pieza cuadrada de 10 cm x 10 cm cortada de una lámina de estireno antideslumbrante de 11" x 14" x 0,05" Software de |
| ScanAcquire | TeraView, Ltd | N/A | Software para mediciones de imágenes de reflexión THz |
| Cuchilla de acero inoxidable de perfil bajo (#4689) | VWR | 25608-964 | Tissue-Tek Accu-Edge Hojas de micrótomo desechables |
| Bandeja metálica de acero inoxidable Quick | Medical | 10F | Polar Ware Bandejas de instrumentos médicos de acero inoxidable |
| Tintes para marcado de tejidos | Ted Pella, Inc | Tinte amarillo #27213-1 Tinte rojo #27213-2 Tinte azul #27213-4 | Se utiliza para orientar muestras de tejido extirpadas enviadas al laboratorio de histopatología |
| TPS Spectra 3000 | TeraView, Ltd | N/A | Sistema de imagen y espectroscopía de THz |
| TPS Spectra Software | TeraView, Ltd | N/A | Software del sistema para mediciones de espectroscopia de transmisión de THz |