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Artículo de método

Digestión de ojos enteros del ratón para el análisis citométrico de flujo multiparamétrico de fagocitos mononucleares

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DOI:

10.3791/61348

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17 de junio de 2020

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* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Este protocolo proporciona un método para digerir los ojos enteros en una sola suspensión celular con el propósito de análisis citométrico de flujo multiparamétrico con el fin de identificar poblaciones fagocíticas mononucleares oculares específicas, incluyendo monocitos, microglia, macrófagos y células dendríticas.

Resumen

El sistema inmunitario innato desempeña un papel importante en la fisiopatología ocular, incluida la uveítis, la retinopatía diabética y la degeneración macular relacionada con la edad. Las células inmunes innatas, específicamente fagocitos mononucleares, expresan marcadores de superficie celular superpuestos, lo que hace que identificar estas poblaciones sea un desafío. La citometría de flujo multiparamétrico permite el análisis simultáneo y cuantitativo de múltiples marcadores de superficie celular con el fin de diferenciar monocitos, macrófagos, microglia y células dendríticas en los ojos del ratón. Este protocolo describe la enucleación de ojos enteros del ratón, disección ocular, digestión en una sola suspensión celular y tinción de la suspensión de una sola célula para marcadores de células mieloides. Además, explicamos los métodos adecuados para determinar voltajes utilizando controles de un solo color y para delinear puertas positivas usando fluorescencia menos uno controles. La principal limitación de la citometría de flujo multiparametrista es la ausencia de arquitectura tisular. Esta limitación puede superarse mediante citometría de flujo multiparar de compartimentos oculares individuales o tinción de inmunofluorescencia gratuita. Sin embargo, la inmunofluorescencia está limitada por su falta de análisis cuantitativo y la reducción del número de fluoróforos en la mayoría de los microscopios. Describimos el uso de citometría de flujo multiparamétrico para proporcionar un análisis altamente cuantitativo de fagocitos mononucleares en neovascularización coroidal inducida por láser. Además, la citometría de flujo multiparametrismo se puede utilizar para la identificación de subconjuntos de macrófago, mapeo del destino y clasificación celular para estudios transcriptómicos o proteómicos.

Introducción

El sistema inmunitario innato incluye múltiples tipos celulares que estimulan la activación y la inflamación del complemento. Las células inmunes innatas incluyen células asesinas naturales (NK), mastocitos, basófilos, eosinófilos, neutrófilos y fagocitos mononucleares. Los fagocitos mononucleares, compuestos por monocitos, macrófagos y células dendríticas, se han implicado en la fisiopatología de múltiples afecciones oftálmicas como la uveítis, la retinopatía diabética y la degeneración macular relacionada con la edad (DMAE)1. En este protocolo, nos centraremos en la identificación de fagocitos mononucleares utilizando análisis citométricos de....

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Protocolo

Todos los procedimientos fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad Northwestern. Los ratones C57BL/6 estaban alojados en una instalación de barrera en el Centro de Medicina Comparada de la Universidad Northwestern (Chicago, IL). Todos los animales estaban alojados en ciclo claro/oscuro de 12/12 h con libre acceso a alimentos y agua.

1. Recolección de tejido ocular

  1. Sacrificar ratones C57BL/6J de 10-12 semanas de edad de cualquiera de los dos sexos usando la administración regulada de dióxido de carbono hasta que el ratón no responda y ya no inhale. Realizar dislocación cervical u ot....

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Resultados

La Figura 1 mostró histogramas de frecuencia no compensados para los SCCs y las celdas para el láser rojo: Alexa647, Alexa700 y APC-Cy7. En la Figura 1A,la línea magenta representaba el pico del SCC para Alexa647, mientras que la línea de cian mostraba la diferencia de registro 0.5 prevista. Observe que el pico en Alexa700 y APC-Cy7 fue a la izquierda (menos brillante) de la línea de cian. También tenga en cuenta que todas las celdas estaban a la izquierda de la.......

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Discusión

La citometría de flujo multiparamétrico permite el análisis cuantitativo de múltiples tipos de células en un tejido complejo. En este informe, describimos la detección citométrica de flujo de poblaciones mononucleares de fagocitos, incluidos monocitos, células dendríticas y subconjuntos de macrófagos, después de lesiones láser en el ojo del ratón. Liyanage et al recientemente informó de una estrategia de gating similar para detectar neutrófilos, eosinófilos, linfocitos, DCs, macrófagos, macrofagos infiltrados y monocitos.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

JAL fue apoyado por la subvención de los NIH K08EY030923; Cmc fue apoyado por una subvención K01 (5K01AR060169) del Instituto Nacional de Artritis y Enfermedades Musculoesqueléticos del NIH y una Nueva Beca de Investigación (637405) de la Alianza de Investigación lupus.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Tubos de microcentrífuga de 0,6 mlFisher Scientific05-408-120
Tubos de microcentrífuga de 1,7 mlCostar3620
pipetas de 10 mlFisher Scientific431031
cónicas de 15 mlThermoFisher339650
1x HBSS, 500 mlGibco14025-092
Jeringa de 2,5 mlHenke Sass Wolf7886-1
Solución de paraformaldehído al 20%Microscopía Electrónica Sciences15713-S
Pipetas de 25 mlFisher Scientific431032
aguja de 30 GExel26437
3ml jeringa Luer LockFisher Scientific 14955457
41 x 41 x 8 mm plato de pesaje de poliestirenoFisher Scientific08-732-112
50 ml cónicas Falcon352070
Placa de ensayo de 96 pocillos, fondo en U sin tapaFalcon353910
Perlas reactivas a la aminaThermoFisherA10628
Software de análisisFlowJov 10
Juego de cuentas Ig kappa anti-ratas y anti-hámsterBD Biosciences552845
Ratones C57BL/6JLaboratorio Jackson664
Contador de célulasInvitrogenAMQAX1000
Portaobjetos de contador de célulasInvitrogenC10283
Cuentas de compensaciónThermoFisher01-1111-42
Cuentas de conteoThermoFisher01-1234-42
Pinzas curvasFisher Scientific16-100-123
Enzima de digestiónSigma Aldrich5401020001
Microscopio de disecciónNational Optical and Scientific Instruments, Inc.DC3-420T Tubos
de disociaciónMiltenyi Biotec130-096-334
DNaseRoche10104159001
Disociador electrónicoMiltenyi Biotec130-095-937
FACS Diva softwareBD Biosciences
Fc bloque, rata anti-ratón CD16/CD32BD Biosciences553142
Pinza finaIntegra Miltex17035X
Tampón de flujoMiltenyi Biotec130-091-221
Citómetrode flujo BD Biosciences
Tubos de flujoHalcón352008
Hamster anti-ratón CD11c BV421BD Biosciences
CubiteraFisher Scientific07-210-123
Tinte vivo/muertoThermoFisher65-0866-14
Solución de lisado, solución 10xBD Biosciences555899
Micro titulación de tubo y gradillaFisher Scientific02-681-380
Antiratón CD64 PEBioLegend139304
Antiratón NK1.1 PECF594BD Biosciences562864
Puntas de pipeta P1000Denville ScientificP2404
Pipeta P1000GilsonFA10006M
Puntas de pipeta P2Eppendorf22491806
P2GilsonFA10001M
Pipeta P20 Puntas de pipetaGilsonFA10003M
P200Denville ScientificP2401
Pipeta P200GilsonFA10005M
Pipeta hombreFisher ScientificFB14955202
Rata anti-ratón B220 PECF594 BDBiosciences562313
Rata anti-ratón CD11b APC-Cy7BD Biosciences557657
Rata anti-ratón CD19 AlexaFluor 700BD Biosciences557958
Rata anti-ratón CD19 PEBD Biosciences553786
Rata anti-ratón CD4 PECF594BD Biosciences562314
Rata anti-ratón CD45 FITC ThermoFisher11-0451-82
Rata anti-ratón CD45 PE-Cy7BD Biosciences552848
Rata anti-ratón CD8 PECF594BD Biosciences562315
Rata anti-ratón Ly6CBD Biosciences
Rata anti-ratón Ly6G PECF594BD Biosciences562700
Rata anti-ratón MHC II AlexaFluor 700BioLegend107622
Rata anti-ratón Siglec F PECF594BD Biosciences562757
Rata anti-ratón Tim4 AlexaFluor647BD Biosciences564178
Incubadora de agitaciónLabnet311DS
Tijeras de resorteFine Science Tools15024-10
Colador de células estériles, malla de nailon de 40 mmFisher Scientific22363547
Agua estéril, 500 mlGibcoA12873-01
Centrífuga de cubo oscilanteeppendorf5910 R
Azul tripano, solución al 0,4%Gibco15250061
562782 561085

Referencias

  1. Chinnery, H. R., McMenamin, P. G., Dando, S. J. Macrophage physiology in the eye. Pflugers Archiv: European Journal of Physiology. 469 (3-4), 501-515 (2017).
  2. Droho, S., Cuda, C. M., Perlman, H., Lavine, J. A.

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Reimpresiones y permisos

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Citometría de flujo multiparamétricadigestión del ojo de ratónsuspensión de células únicasmarcadores de superficie celularfluorescencia menos unoselección de poblaciones por citometría de flujosubconjuntos de macrófagosidentificación de la microglíaanálisis de células dendríticas