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Análisis de manchas de ARN para la detección y cuantificación de microARN de plantas

DOI:

10.3791/61394

July 11th, 2020

In This Article

Summary

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Este método demuestra el uso de la técnica de hibridación del norte para detectar miRNAs a partir del extracto total de ARN.

Abstract

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Los microARN (miRNAs) son una clase de ARN pequeños expresados endógenamente, de 21 nt de pequeñas ANas implicadas en la regulación de la expresión génica tanto en plantas como en animales. La mayoría de los miRNAs actúan como interruptores negativos de la expresión génica dirigidos a genes clave. En las plantas, las transcripciones primarias de miRNAs (pri-miRNAs) son generadas por ARN polimerasa II, y forman diferentes longitudes de estructuras estables de bucle de tallo llamadas pre-miRNAs. Una endonucleasa, como Dicer1, procesa los pre-miRNAs en dúplex miRNA-miRNA*. Una de las hebras del dúplex miRNA-miRNA* se selecciona y se carga en la proteína Argonaute 1 o sus homólogos para mediar el escote de los ARNM objetivo. Aunque los miRNAs son moléculas clave de señalización, su detección a menudo se lleva a cabo por métodos basados en PCR menos que óptimos en lugar de un análisis sensible de la mancha del norte. Describimos un método norte simple, fiable y extremadamente sensible que es ideal para la cuantificación de los niveles de miRNA con muy alta sensibilidad, literalmente de cualquier tejido vegetal. Además, este método se puede utilizar para confirmar el tamaño, la estabilidad y la abundancia de miRNAs y sus precursores.

Introduction

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El reciente descubrimiento de pequeñas ARN reguladoras, microRNAs, ha liderado la investigación para entenderlos y su papel en plantas y animales1. Los precursores largos de los miRNAs se procesan en miRNAs maduras de 21 a 24 nt por HYL1 y proteínas específicas similares a los dados2,,3. Un miRNA de 22 nt puede iniciar el silenciamiento en cascada generando siRNAs secundarios4. Los estudios han demostrado el papel de los miRNAs y los siRNAs secundarios en el desarrollo, el destino celular y las respuestas de tensión5,,

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Protocol

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1. Preparación de un gel de poliacrilamida desnaturalado del 15%

  1. Pesar y añadir 4,8 g de urea, añadir 3,75 ml de 40% de acrilamida: bisacrilamida (19:1) solución y 1 ml de 10x TBE pH 8.2 en un tubo estéril de 50 ml.
  2. Disolver la urea con un baño de agua a 60 oC en una solución transparente.
  3. Mafiar el volumen a 10 ml con agua estéril recién autoclavada y enfríe la mezcla de gel a temperatura ambiente.
  4. Preparar solución fresca de persulfato de amonio al 10% (p/v).

2. Montaje de las placas de vidrio y la unidad de electroforesis

  1. Lave todo el aparato necesario para la electroforesis de gel ....

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Results

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En esta demostración, hemos detectado y cuantificado la expresión de miR397 en diferentes tejidos de arroz indica var whiteponni (Figura 1). miR397 es un miRNA de 22 nt y miRNA conservada. La expresión de miR397 se puede detectar en todas las muestras analizadas. Según los datos de secuenciación de próxima generación, la muestra 1 (tejido de plántulas) tiene miR397 a 5 lecturas por millón (rpm). Detectamos su señal cómodamente, indicando que el método es muy sensible y se p.......

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Discussion

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Este método se puede utilizar ampliamente para la detección y cuantificación de ARN pequeños, incluidos los miRNAs menos abundantes. El protocolo describe principalmente los pasos para desnaturalizar el ARN total en un tampón de carga, la separación del tamaño por electroforesis de gel, la transferencia de ARN a una membrana, la interconexión del ARN en la membrana e hibridar utilizando las sondas oligoeléctricas radiomarcadas deseadas.

El paso crítico para cualquier experimento de hinchazón e.......

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Disclosures

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No se declaran conflictos de intereses.

Acknowledgements

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Los autores reconocen el acceso al laboratorio de radiación proporcionado por el instituto anfitrión y BRIT para radioisótopo. El laboratorio PVS cuenta con el apoyo del Centro Nacional de Ciencias Biológicas, Instituto Tata de Investigación y Subvenciones Fundamentales (BT/PR12394/AGIII/103/891/2014; BT/IN/Swiss/47/JGK/2018-19; BT/PR25767/GET/119/151/2017) del Departamento de Biotecnología del Gobierno de la India. MP reconoce DBT-Research Associateship, DBT, Gobierno de la India.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Solución de acrilamida-bisacrilamida al 40%SigmaA9926
Persulfato de amonio (APS)BioRad1610700
Papel secantewhatmann papel secante I1001-125
Azul de bromofenolSigmaB5525-5G
Puntas de carga capilarBioRad2239915
Desionizado formamidaAmbionAM9342
Bloque calefactorEppendorff5350
Hybond N+membrana de nylonGERPN203B
Botella de hibridaciónSigmaZ374792-1EA
Horno de hibridaciónThermo Scientific1211V79
N,N,N',N'-Tetrametiletilendiamina (TEMED)SigmaT7024-25ml
PhosphorImagerGE- Escáner Typhoon29187194
PhosphorImager pantalla y caseteGE healthcareGE28-9564-75
PipetasGilson, modelos: P20 y P10FA10002M, FA10003M
Pipeta de plásticoFalcon357550
Aparato de gel de poliacrilamidaBioRad1658003EDU
Sephadex G-25 columnaGE Healthcare27532501
Speed Vac ConcentradorThermo Scientific20-548-130
SpinwinTarsons1010
T4 Polinucleótido quinasa (PNK)NEBM0201S
Aparato transblotBioRad1703946
ULTRAHyb tampón de hibridaciónAmbionAM8670
UreaFischer Scientific15985
ReticulanteUVP UVPCL-1000L
VortexTarsons3020
Baño de aguaNEOLABD-8810
Xileno cianolSigmaX4126-10G

References

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  1. Baulcombe, D. RNA silencing in plants. Nature. 431, 356-363 (2004).
  2. Anushree, N., Shivaprasad, P. V. Regulation of Plant miRNA Biogenesis. Proceedings of the Indian National Science Academy. 95, (2017).
  3. Narjala, A., Nair, A., Tirumalai, V., Hari Sundar, G. V., Shivaprasad, P. V.

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