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Artículo de método

Un ensayo ex vivo para estudiar Candida albicans Morphogenesis hifal en el tracto gastrointestinal

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DOI:

10.3791/61488

⸱

1 de julio de 2020

 ,  , 
1College of Veterinary Medicine, Midwestern University, 2Masters in Biomedical Science Program, College of Graduate Studies, Midwestern University, 3Department of Pathology and Population Medicine, College of Veterinary Medicine, Midwestern University

En este artículo

Resumen

El ensayo ex vivo descrito en este estudio utilizando extractos de homogeneización intestinal y tinción de inmunofluorescencia representa un método novedoso para examinar la morfogénesis hifágica de Candida albicans en el tracto gastrointestinal. Este método se puede utilizar para investigar las señales ambientales que regulan la transición morfogenética en el intestino.

Resumen

Candida albicans hyphal morphogenesis in the gastrointestinal (GI) está estrechamente controlada por varias señales ambientales, y desempeña un papel importante en la difusión y patogénesis de este patógeno fúngico oportunista. Sin embargo, los métodos para visualizar las hifas fúngicas en el tracto gastrointestinal in vivo son desafiantes, lo que limita la comprensión de las señales ambientales en el control de este proceso de morfogénesis. El protocolo descrito aquí demuestra un novedoso método ex vivo para la visualización de la morfogénesis hifal en extractos de homogeneización intestinal. Utilizando un ensayo ex vivo, este estudio demuestra que el contenido de cecal de ratones tratados con antibióticos, pero no de ratones de control no tratados, promueven la morfogénesis hiphal de C. albicans en el contenido intestinal. Además, la adición de grupos específicos de metabolitos intestinales al contenido de cecal de ratones tratados con antibióticos regula diferencialmente la morfogénesis hifílo ex vivo. En conjunto, este protocolo representa un método novedoso para identificar e investigar las señales ambientales que controlan la morfogénesis hipófrica de C. albicans en el tracto gastrointestinal.

Introducción

Candida albicans es un patógeno fúngico oportunista y polimórfico que normalmente es commensal, pero puede sufrir un cambio morfológico en una forma virulenta capaz de causar infecciones potencialmente mortales en individuos inmunocomprometidos1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13. C. albicans es una de las principales causas de infecciones nosocomiales sistémicas, con una tasa de mortalidad de 40-u201260% incluso con tratamiento antifúngico2,14,15. Aunque C. albicans reside en diferentes nichos de acogida, incluido el sistema reproductivo femenino16,17, la cavidad oral de individuos sanos18 y el tracto gastrointestinal (GI)19,20, la mayoría de las infecciones sistémicas se originan en el tracto gastrointestinal y, además, la fuente de infección sistémica se confirma a menudo como el tracto gastrointestinal21,22,23,24,25,26,27,28,29,30,31,32,33,34. C. patogenicidad albicans en el tracto gastrointestinal está influenciado por una amplia gama de factores; sin embargo, una característica importante necesaria para la virulencia es la transición de una morfología celular de levadura a una morfología celular hiphal virulenta35,36,37,38,39,40,41,42,43,44. C. El apego y la difusión de los hongos del tracto gastrointestinal durante la infección está altamente asociado con su capacidad de transición de una levadura commensal a hifas virulentas, permitiendo que los hongos causen enfermedades invasivas44,45,46,47,48,49,50,51,52,53.

Una variedad de factores en el intestino, incluyendo n-acetilglucosamina, regular la formación de hiphal por C. albicans. Por lo tanto, es crucial reducir la brecha en el conocimiento con respecto a la morfogénesis hifal de este patógeno fúngico en el tracto gastrointestinal54,55,56. La evidencia reciente indica que varios metabolitos intestinales controlan diferencialmente la morfogénesis hifral de C. albicans in vitro57,58,59,60. Sin embargo, las limitaciones técnicas presentan problemas al intentar estudiar la formación de las hifas de C. albicans en muestras intestinales in vivo, especialmente la tinción de células de levadura e hifas y el análisis cuantitativo del desarrollo hiphal. Para entender la morfogénesis hifrética de C. albicans en el tracto gastrointestinal, se desarrolló un método ex vivo utilizando extractos solubles de contenido intestinal homogeneizado de ratones para estudiar el efecto de los metabolitos en la morfogénesis hipófológica fúngica. Utilizando muestras intestinales de ratones que son resistentes y susceptibles a la infección por C. albicans GI, este método ayudará a identificar y estudiar el efecto de metabolitos, antibióticos y xenobióticos en la morfogénesis hipófológica fúngica en el tracto gastrointestinal.

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Protocolo

Todos los protocolos de animales fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad del Medio Oeste (IACUC) como se describió antesdel 57. El Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad del Medio Oeste aprobó este estudio bajo el Protocolo MWU IACUC #2894. Las políticas de cuidado animal de MWU siguen la Política del Servicio de Salud Pública (PHS) sobre cuidado y uso humano de animales de laboratorio y las políticas establecidas en la Ley de Bienestar Animal (AWA).

1. Los ratones estudian el protocolo estándar

  1. Utilice ratones C57BL/6J machos y hembras de al menos seis semanas de edad. Suplementarlos con agua estéril con o sin cefoperazona (0,5 mg/ml).
    1. Co-casa de ratones en grupos de 5, con cada jaula que contiene todos los ratones macho o hembra. Proporcione a los ratones comida de ratón estándar y agua (a través de una botella de 400 ml) en todo momento.
    2. Revise las jaulas diariamente para asegurarse de que los niveles de alimentos y agua sean suficientes, y para examinar a los ratones en busca de signos de angustia.
  2. Sustituya el agua por cefoperazona cada 48 h para asegurarse de que se suministra antibiótico fresco independientemente del agua restante en las botellas de alimentación de la jaula.
  3. Después de 5 días de tratamiento con cefoperazona, eutanasia a los ratones a través de la asfixia porCO2 observando el protocolo establecido de la IACUC. Confirme la muerte por luxación cervical.
  4. Disecciona ratones usando tijeras afiladas esterilizadas con autoclave y fórceps esterilizadas con autoclave.
    1. Después de la eutanasia, fije el animal a una superficie de disección fijando todas las extremidades de tal manera que el abdomen esté expuesto.
    2. Rocíe la región abdominal con 70% de etanol para evitar que el pelaje se pegue a fórceps, tijeras o secciones intestinales durante la disección.
    3. Usa fórceps para pellizcar y levantar una sección de la piel en la base del abdomen y crea una pequeña incisión a través de la piel y la fascia subyacente usando tijeras. Tenga mucho cuidado al hacer esta incisión para evitar perforar el cecum o la pared intestinal.
    4. Extienda este corte a la caja torácica, exponiendo parcialmente la cavidad peritoneal. Haga un corte comenzando en el punto de la incisión inicial a cada lado extendiéndose hacia arriba y lateralmente.
    5. Tire de estas aletas lateralmente y ancle a la superficie de disección para exponer completamente la cavidad peritoneal.
  5. Extraer el tracto gastrointestinal usando fórceps, mientras que el uso de tijeras para hacer cortes superiores al estómago y en la región distal del intestino grueso para asegurar la recolección de la mayor cantidad de contenido intestinal de cada sección.
  6. Al retirar el tracto gastrointestinal, tenga cuidado de evitar la rotura de los componentes individuales. Separe el estómago, el intestino delgado, el cecum y el intestino grueso individualmente usando tijeras en sus extremos proximal y distal.
  7. Para la recolección de cada contenido intestinal de cada sección, haga una sola incisión en el extremo distal de cada sección usando tijeras, seguida de expulsar manualmente el contenido intestinal en un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml utilizando fórceps.
  8. Almacene el contenido intestinal a -80 oC para ensayos ex vivos.

2. Preparación de placas de agar de extracto de levadura-peptona-dextrosa (YPD)

  1. A una botella de vidrio de 1 L añadir 25 g de extracto de levadura de caldo de peptona-dextrosa en polvo, 10 g de agar, y agua ultrapura a un volumen final de 500 mL.
  2. Autoclave a 121 oC durante 30 min en un ciclo de líquido para esterilizar el medio.
  3. Bajo una capucha de flujo laminar, vierta aproximadamente 20 ml de medios de agar en una placa petri estéril. 500 ml de soporte de agar deben producir aproximadamente 25 placas.
  4. Almacene las placas a 4oC hasta que estén listas para su uso.

3. Preparación ex vivo para el ensayo de morfosis hifígena

  1. Raya un nuevo cultivo de C. albicans SC5314 en una placa de agar YPD e incuba durante la noche a 30oC.
  2. Escoja de dos a tres colonias individuales de tamaño mediano del cultivo de C. albicans SC5314 cultivado durante la noche y vuelva a suspender en 1 ml de solución salina tamponada de fosfato (PBS).
  3. Recuperar el contenido del intestino congelado del congelador de -80 oC y descongelar a 25 oC.
  4. Pesar alrededor de 150 mg de contenido intestinal en un nuevo tubo de 1,5 ml.
  5. Re-suspender el contenido intestinal con 150 s de PBS (contenido intestinal y PBS en una relación peso-volumen de 1:1).
  6. Vórtice a alta velocidad durante 30 s para homogeneizar el contenido intestinal y dejar reposar a temperatura ambiente durante aproximadamente un minuto.
  7. Centrifugar los homogeneizas a 1000 x g durante 3 min.
  8. Transfiera el sobrenadante a un nuevo tubo de 1,5 ml.
  9. Repita los pasos 3.7 y 3.8 para eliminar todos los residuos del sobrenadante.
  10. Añadir 10 l del inóculo C. albicans SC5314 preparado arriba a este sobrenadante
  11. Mezclar bien e incubar a 37oC durante 4 a 5 h.

4. Adición exógena de metabolitos a los extractos de homogeneato intestinal para el ensayo de morfosis hifígena

  1. Recuperar el contenido intestinal congelado del congelador de -80 oC y volver a suspenderlo en PBS a una relación 1:1 (peso: volumen).
  2. Añadir la concentración deseada de metabolitos intestinales al contenido intestinal y la mezcla de PBS.
  3. Vórtice a alta velocidad durante 30 s para homogeneizar el contenido intestinal que contiene metabolitos y permitir sentarse a temperatura ambiente durante unos 10 min.
  4. Centrifugar los homogeneizas a 1000 x g durante 3 min.
  5. Transfiera el sobrenadante a un nuevo tubo de 1,5 ml. Repita los pasos 4.4 y 4.5 para eliminar todos los residuos del sobrenadante.
  6. Añadir 10 l del inóculo C. albicans SC5314 preparado arriba a este sobrenadante. Mezclar bien e incubar a 37oC durante 4 a 5 h.

5. C. Ensayo de morfogénesis de C. albicans (inmunosu manchado e imágenes)

  1. Centrifugar las muestras a 1000 x g durante 2 min y deseche el sobrenadante a través de pipeteo.
  2. Fijar las muestras en 100 l de 2% de paraformaldehído (PFA) durante 15 min.
  3. Centrifugar a 1000 x g durante 2 min y deseche el sobrenadante a través de pipeteo.
  4. Lave las muestras dos veces con 1 ml de PBS. Para lavar las muestras, vuelva a suspender el pellet en PBS pipeteando suavemente. No vórtice la muestra, ya que esto puede dañar las estructuras hiphales. Después de la re-suspensión, centrifugar a 1000 x g durante 2 minutos y deseche el sobrenadante a través de pipeteo.
  5. Incubar las muestras a temperatura ambiente en 100 ml de PBS que contenga anticuerpo policlonal C. albicans (1:100 dilución) durante 30 min.
  6. Lave las muestras tres veces con 1 ml de PBS.
    NOTA: Cuando se utiliza un anticuerpo fluorescente, se recomienda que todos los pasos de dilución y lavado se realicen con poca luz para evitar el blanqueo fotográfico y mejorar la longevidad de la muestra.
  7. Incubar las muestras a temperatura ambiente durante 15 minutos en 100 ml de PBS que contenga anticuerpos anti-Rabbit IgG Alexafluor 488 a 1:500 dilución. Realice la incubación en un cajón oscuro o habitación para evitar el blanqueo fotográfico.
  8. Lave las muestras tres veces con 1 ml de PBS.
  9. Vuelva a suspender las muestras en 100 oL de PBS y transfiera a una placa de 96 pocillos para la toma de imágenes.
    NOTA: Cuando no se está tomando una imagen, se recomienda que la placa de 96 pozos se envuelva en papel de aluminio para evitar el blanqueo fotográfico.
  10. Imagen de células fúngicas utilizando lentes objetivo 20x y 40x utilizando un microscopio de imágenes de fluorescencia. Utilice un filtro de proteína fluorescente verde (GFP) (longitud de onda de excitación 470/40 y longitud de onda de emisión 525/50) para detectar la fluorescencia.

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Resultados

Estos resultados junto con los hallazgos anteriores del laboratorio Thangamani60 indican que cuando C. albicans se cultiva ex vivo en extractos de homogeneato intestinal tomados del estómago, intestino delgado e intestino grueso de control no tratado y ratones tratados con antibióticos, C. albicans generalmente se desarrolla con una morf levaduraología (Figura 1B). Sin embargo, cuando se cultiva en el extracto de cecal de ratones tratados con ant...

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Discusión

El método descrito aquí presenta una forma novedosa de investigar el efecto de los impactos antibiótico, dietético, xenobiótico y terapéutico en la morfogénesis hiphal de C. albicans en el tracto gastrointestinal. Dado que la mayoría de las infecciones sistémicas se originan en el tracto gastrointestinal21,22,23,24,25,26

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Divulgaciones

Los autores no tienen intereses financieros competidores u otros conflictos de intereses.

Agradecimientos

Los autores reconocen los recursos y el apoyo de la central de investigación de núcleos celulares y moleculares de la Universidad del Medio Oeste.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
1 - 10 y micro; L Puntas de pipetaFisher Scientific02-707-454Miscelánea
100 - 1000 µ L Puntas de pipetaFisher Scientific02-707-400Miscelánea
20 - 200 µ L Puntas de pipetaFisher Scientific02-707-451Miscelánea
Ácido 2-metilbutíricoSigma193070-25GCompuesto inhibidor de hifas
488 cabra anti-conejo IgGInvitrogen (Fisher)A11008IF Tinción secundaria ab
AgarFisherBP1423-500YPD
Microscopio de imagen automatizadoKeyenceBZX700
Candida Albicans AnticuerpoInvitrogen (Fisher)PA1-27158IF Tinción primaria de ab
cefoperazonaCayman16113antibiótico
ácido desoxicólicoSigma30960compuesto inhibidor de hifas
D-glucosaFisherD16-500compuesto promotor de hifas
pinza Fisher08-885
ácido lácticoAlfa AesarAAAL13242-06Compuesto inhibidor de hifas
ácido litocólicoSigmaL6250-10GCompuesto inhibidor de hifas
palmíticoSigmaP5585-10GCompuesto inhibidor de hifas
ParaformaldehídoAlfa AesarA11313IF Fijador de tinción
Solución salina tamponada con fosfato (PBS), 10xAlfa AesarJ62692PBS componente
ácido p-tolicacéticoSCBTsc-257959compuesto inhibidor de hifas
ácido sebácicoSigma283258-250Gcompuesto inhibidor de hifas
tijeras de punta afiladaFisher28301
agua estéril Milli-Q N/AN/AMiscelánea
YPD CaldoBD Biosciences242810Componente de agar YPD
componente de agar ácido

Referencias

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