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Artículo de método

Preparación de cortes agudos de cerebro del polo dorsal del hipocampo de roedores adultos

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DOI:

10.3791/61699

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10 de septiembre de 2020

En este artículo

Resumen

El propósito de este protocolo es describir un método para producir cortes del hipocampo dorsal para el examen electrofisiológico. Este procedimiento emplea la perfusión con ACSF refrigerado antes de la preparación del corte con un ángulo de corte cercano al coronal que permite la preservación de las neuronas principales sanas.

Resumen

Los registros de patch-clamp de células enteras de cortes agudos de cerebro de roedores son un pilar de la investigación neurofisiológica moderna, ya que permiten una medición precisa de las propiedades celulares y sinápticas. Sin embargo, existe una necesidad cada vez mayor de realizar análisis correlacionados entre diferentes modos experimentales además de la electrofisiología de cortes, por ejemplo: inmunohistoquímica, biología molecular, imágenes in vivo o registro electrofisiológico; para responder a preguntas cada vez más complejas sobre la función cerebral. Sin embargo, sacar conclusiones significativas a partir de estos diversos enfoques experimentales no es sencillo, ya que incluso dentro de estructuras cerebrales relativamente bien descritas, existe un alto grado de variación subregional de la función celular. En ninguna parte se ejemplifica esto mejor que en el CA1 del hipocampo, que tiene propiedades dorso-ventrales bien definidas, basadas en propiedades celulares y moleculares. Sin embargo, muchos estudios publicados examinan los patrones de expresión de proteínas o la actividad in vivo correlacionada conductualmente en la extensión dorsal del hipocampo; y explicar los hallazgos mecanicistas con la electrofisiología celular de la región ventromedial. Esto se confunde aún más por el hecho de que muchos experimentos electrofisiológicos de corte agudo se realizan en animales jóvenes, mientras que otros modos experimentales se realizan en animales más maduros. Para abordar estos problemas, este método incorpora la perfusión transcárdica de roedores maduros (>60 días de edad) con líquido cefalorraquídeo artificial, seguida de la preparación de cortes coronales modificados, incluido el polo septal del hipocampo dorsal, para registrar las células piramidales CA1. Este proceso conduce a la generación de cortes agudos sanos del hipocampo dorsal, lo que permite la interrogación electrofisiológica celular basada en cortes que coincide con otras medidas.

Introducción

El hipocampo es posiblemente la estructura mejor estudiada en el cerebro de los mamíferos, debido a su tamaño relativamente grande y su estructura laminar prominente. El hipocampo ha sido implicado en una serie de procesos conductuales: la navegación espacial, la memoria contextual y la formación de episodios. Esto se debe, en parte, a la relativa facilidad de acceso a las porciones dorsales del hipocampo en roedores para análisis in vivo . De hecho, las principales celdas de salida suelen estar a menos de 2 mm de la superficie del pial.

En los roedores, el hipocampo es una estructura relativamente....

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Protocolo

Todos los animales fueron generados y mantenidos de acuerdo con las directrices del Ministerio del Interior e Institucionales (HO# P135148E). Todas las ratas se mantuvieron en un ciclo de luz/oscuridad de 12 horas y se les dio acceso ad libitum a comida y agua.

1. Perfusión transcárdica de ACSF refrigerado

  1. Antes de todos los experimentos, coloque ~200 mL de sacarosa-ACSF (Tabla 1) en el congelador a -20 °C (hasta que esté semicongelada, para cortar) y otros ~100-200 mL de sacarosa-ACSF filtrada en hielo (para perfusión), burbujeando con carbgeno (95% Ø2/5% CO....

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Resultados

El protocolo descrito anteriormente permite la preparación de cortes viables desde el polo septal del hipocampo dorsal en ratas maduras. Un factor clave en este protocolo es la perfusión de sacarosa refrigerada-ACSF, antes de la preparación del corte, lo que da como resultado CA1 PC sanos proximales a la superficie del corte. La calidad del corte producido se evalúa visualmente bajo la óptica IR-DIC, y las células sanas identificadas con cuerpos celulares grandes y de forma ovoide se encuentran en toda la extensión del <.......

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Discusión

Aquí, se describe un protocolo para producir cortes de cerebro de alta calidad a partir de la extensión dorsal del CA1 del hipocampo, lo que permite grabaciones de múltiples neuronas viables dentro de esta región. El enfoque combinatorio del registro de células completas a partir de cortes cercanos a la corona seguido de la visualización de neuronas es fundamental para la confirmación de la viabilidad y la identidad de la célula.

Este protocolo produce de form.......

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Divulgaciones

El autor declara que no tiene intereses financieros contrapuestos.

Agradecimientos

El autor desea agradecer al Prof. David JA Wyllie, a la Dra. Emma Perkins, a Laura Simoes de Oliveira y al Prof. Peter C Kind por sus útiles comentarios sobre el manuscrito y la optimización del protocolo, y a The Simons Initiative for the Developing Brain por proporcionar los costos de publicación.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Software de adquisiciónMolecular DevicespClamp 10
Ratas adultasVariosn/aCualquier cepa de rata adulta (60 días o más)
AmplificadorMolecular DevicesAxopatch 700B
Software de análisisFreewareStimfithttps://github.com/neurodroid/stimfit
Tijeras para huesosFST16152-12Estilo Littauer
Vidrio capilarHarvard Apparatus30-0060Pipetas de vidrio de borosilicato con filamento de 1,5 mm de diámetro exterior, 0,86 mm de diámetro interior.
CarbogenBOCVarios95% O2/5% CO2
CCD cámaraScientificaSciCamProhttps://www.scientifica.uk.com/products/
Químicos/ReactivosSigmaAldrich VariosTodos los reactivos de laboratorio adquiridos de Sigma Aldrich.
Cianoacrilato (es decir, RS Pro 3)Componentes RS918-6872Evite las formulaciones de cianoacrilato a base de gel
DigitalizadorDispositivos molecularesDigidata 1550B
Alfileres/agujas de disecciónVariosVariosUso Agujas de calibre 16 (arriba)
Sistema de electrofisiologíaScientificaSliceScopehttps://www.scientifica.uk.com/products/ scientifica-slicescope
Tijeras de iris finoFST14568-12Con puntas de carburo de tungsteno Placa de
Petri de vidrioFisher Scientific12911408
Agujas hipodérmicasBD HealthcareVarioscalibre 16, 18 y 22
100% W/W (es decir, IsoFlo)Zoetis50019100
Tijeras tipo MayoFST14110-17Micromanipuladores de puntas romas
ScientificaMicrostarhttps://www.scientifica.uk.com/products/scientifica-microstar-micromanipulator
PincelTienda de arten/aUn pincel de cerdas finas, adquirido en una tienda de arte local.
Pipeta PasteurFisher Scientific 11546963Una pipeta Pasteur de vidrio, pero cortada de manera que el extremo romo se utilice para transferir la pipeta.
Bomba peristálticaWatson Marlow12466260Bomba peristáltica de un solo canal
Extractor de pipetasSutter InstrumentsP-97Otros modelos y métodos de producción de pipetas funcionarían igual de bien.
Jeringas de plástico (1, 2, 5 mL)BD HealthcareVarios
Herramienta ósea RongeurFST16021-14
Cámara de retención de rebanadasHecho en
Peso de rebanadas/arpaAparato HarvardSHD-22L/15Las alternativas serían adecuadas.
Pentobarbital sódico (es decir, Pentoject)Animalcare Ltd10347/4014200 mg/mL; otras formulaciones de pentobarbital serían adecuadas
EspátulaBochem3213Disponible en Fisher Scientific
Filtros de jeringaScientific10482012Corning marca Filtros, 0,22 y micro; m diámetro de poro.
VibtratomeLeica1491200S001modelo VT1200S con
baño de aguaFisher Scientific15167015baño de agua de 5 litros, por ejemplo: Grant Instruments™ JBA5 scientifica-scicam-pro
Isofluorano de casa Fisher Vibrocheck

Referencias

  1. Amaral, D. G., Witter, M. P. The three-dimensional organization of the hippocampal formation: a review of anatomical data. Neuroscience. 31 (3), 571-591 (1989).
  2. Moser, M. B., Moser, E. I. Functional differentiation in the hippocampus. Hippocampus. 8....

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