Artículo de método

Purificación de tubulina con modificaciones posttranslacionales controladas e isotipos de fuentes limitadas por ciclos de polimerización-despolimerización

DOI:

10.3791/61826

5 de noviembre de 2020

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

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Este protocolo describe la purificación de la tubulina a partir de fuentes pequeñas/medianas como células cultivadas o cerebros de ratón único, utilizando ciclos de polimerización y despolimerización. La tubulina purificada se enriquece en isotipos específicos o tiene modificaciones posttranslacionales específicas y se puede utilizar en ensayos de reconstitución in vitro para estudiar dinámicas e interacciones de microtúbulos.

Resumen

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Un aspecto importante de los estudios del citoesqueleto de microtúbulos es la investigación del comportamiento de los microtúbulos en experimentos de reconstitución in vitro. Permiten el análisis de las propiedades intrínsecas de los microtúbulos, como la dinámica, y sus interacciones con proteínas asociadas a microtúbulos (MAPs). El "código de tubulina" es un concepto emergente que apunta a diferentes isotipos de tubulina y varias modificaciones posttranslacionales (PTM) como reguladores de propiedades y funciones de microtúbulos. Para explorar los mecanismos moleculares del código de tubulina, es crucial realizar experimentos de reconstitución in vitro utilizando tubulina purificada con isotipos y PTM específicos.

Hasta la fecha, esto era técnicamente desafiante como la tubulina cerebral, que es ampliamente utilizada en experimentos in vitro, alberga muchos PTM y tiene una composición isotipo definida. Por lo tanto, desarrollamos este protocolo para purificar la tubulina de diferentes fuentes y con diferentes composiciones isotipos y PTMs controlados, utilizando el enfoque clásico de los ciclos de polimerización y despolimerización. En comparación con los métodos existentes basados en la purificación de la afinidad, este enfoque produce tubulina pura y competente para la polimerización, ya que la tubulina resistente a la polimerización o despolimerización se descarta durante los sucesivos pasos de purificación.

Describimos la purificación de la tubulina de las líneas celulares, cultivada ya sea en suspensión o como cultivos adherentes, y de cerebros de ratón únicos. El método describe primero la generación de masa celular tanto en la suspensión como en los ajustes adherentes, el paso de lisis, seguido de las sucesivas etapas de purificación de la tubulina mediante ciclos de polimerización-despolimerización. Nuestro método produce tubulina que se puede utilizar en experimentos que abordan el impacto del código de tubulina en las propiedades intrínsecas de microtúbulos e interacciones de microtúbulos con proteínas asociadas.

Introducción

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Los microtúbulos desempeñan un papel crítico en muchos procesos celulares. Dan a las células su forma, construyen husillos meioticos y mitoticos para la segregación cromosómica, y sirven como pistas para el transporte intracelular. Para realizar estas diversas funciones, los microtúbulos se organizan de diferentes maneras. Una de las preguntas intrigantes en el campo es entender los mecanismos moleculares que permiten que los microtúbulos conservados estructural y evolutivamente se adapten a esta plétora de organizaciones y funciones. Un mecanismo potencial es la diversificación de los microtúbulos, que se define por el concepto conocido como el 'código de tubulina'

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Protocolo

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El cuidado y uso de animales para este estudio se realizó de acuerdo con las recomendaciones de la Comunidad Europea (2010/63/UE). Los procedimientos experimentales fueron aprobados específicamente por el comité de ética del Institut Curie CEEA-IC #118 (autorización Nº 04395.03 dada por la Autoridad Nacional) en cumplimiento de las directrices internacionales.

1. Preparación de reactivos para purificación de tubulina

NOTA: Todos los tampones utilizados para la purificación de la tubulina deben contener sales de potasio y NO sales de sodio30.

  1. Preparar 1 L de medio completo: el med....

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Resultados

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El objetivo principal de este método es producir tubulina de alta calidad y competente para el montaje en cantidades suficientes para realizar experimentos in vitro repetidos con los componentes purificados. Los microtúbulos ensamblados a partir de esta tubulina se pueden utilizar en ensayos de reconstitución basados en la técnica de microscopía de fluorescencia de reflexión interna total (TIRF) con microtúbulos dinámicos o estables, en experimentos que prueban dinámicas de microtúbulos, interacciones con MAPs o motores .......

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Discusión

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El método descrito aquí proporciona una plataforma para generar rápidamente tubulina de alta calidad y competente para el montaje en cantidades medianas y grandes a partir de líneas celulares y cerebros de ratón único. Se basa en el protocolo estándar de oro de purificación de tubulina de cerebros bovinos utilizados en el campo durante muchos años16,17. Una ventaja particular del enfoque es el uso de cultivos de suspensión de células HeLa S3, que, una vez estable.......

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Divulgaciones

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Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

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Este trabajo fue apoyado por el ANR-10-IDEX-0001-02, el LabEx Cell'n'Scale ANR-11-LBX-0038 y el Institut de convergencia Q-life ANR-17-CONV-0005. CJ cuenta con el apoyo del Institut Curie, la Agencia Nacional de Investigación francesa (ANR) otorga ANR-12-BSV2-0007 y ANR-17-CE13-0021, la subvención del Institut National du Cancer (INCA) 2014-PL BIO-11-ICR-1, y la beca de la Fundación pour la Recherche Medicale (FRM) DEQ20170336756. MMM es apoyado por la fundación Vaincre Alzheimer grant FR-16055p, y por la francia Alzheimer grant AAP SM 2019 n°2023. JAS recibió el apoyo del programa de investigación e innovación Horizonte 2020 de la Unión Europea en el marco del acuerd....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
1  M MgCl2 Sigma#M1028
recipientes de cultivo celular de 1 LTechne F7610 Se utiliza para cultivos giratorios. Nunca revuelva las botellas giratorias vacías. Cuando haya frascos giratorios en la incubadora de cultivos celulares, mantenga siempre las válvulas laterales de los frascos giratorios ligeramente abiertas para facilitar el equilibrio de los medios con la incubadora. s atmósfera. Después de su uso, llene las botellas giratorias inmediatamente con agua del grifo para evitar que se sequen las celdas restantes en las paredes de la botella. Lavar las botellas con agua desionizada, añadir aprox. 200 ml de agua desionizada y autoclave. Bajo una campana de cultivo celular estéril, retire el agua y deje que las botellas se sequen completamente, aún debajo de la campana, durante varias horas. Nunca use detergentes para limpiar las botellas giratorias porque cualquier rastro de detergente puede ser perjudicial para las células.
Tubos de 1,5 y 2 ml,
tubos de fondo redondo de 14 ml,
cultivo estériles de 15 cm de diámetro
tubos
, 2-mercaptoetanol;Sigma #M31482-mercaptoetanol es tóxico y debe usarse bajo el capó.
Fluoruro de 4-(2-aminoetil)-bencenosulfonilo Sigma 
40% de acrilamida Bio-Rad #161-0140
Jeringas de 5, 10 y 20 ml Pipetas
estériles de 5 ml, 10 ml, 25 ml Tubos
con tapón de rosca de 50 ml Persulfato
de amonio (APS)Sigma#A3678
Anticuerpo anti-alfa-tubulina, 12G10 Desarrollado por J. Frankel y M. Nelson, obtenido del Banco de Hibridomas de Estudios del Desarrollo, desarrollado bajo los auspicios del NICHD, y mantenido por la Universidad de Iowadilución: 1/500
Anticuerpo anti-tubulina glutamilada, GT335 AdipoGen #AG-20B-0020dilución: 1/20.000
Aprotinin Sigma 
Balance (0,1 – 10 g)
Botellas de polipropileno Beckman de 1 l Para la recolección de cultivos giratorios
CentrífugaPara la recolección de cultivos giratorios
Agitador biológico Techne MCS-104L Instalado en la incubadora de cultivos celulares (para cultivos giratorios), 25 rpm para células Hela S3 y HEK 293
Bis N,N'-Metileno-Bis-Acrilamida Bio-Rad #161-0201
Licuadora IKA Ultra-Turrax®  Para lisar el tejido cerebral, utilice una sonda de 5 mm, con la máquina ajustada a la potencia 6 o 7. Mezcle el tejido cerebral 2-3 veces durante 15 s en hielo.
Albúmina sérica bovina (BSA)Sigma 
Azul de bromofenol Sigma #1.08122
Carboxipeptidasa A (CPA)Sigma#C9268Concentración: 1.7  U/µ l
Campana de
Incubadora de cultivo celular establecida en 37 grados; C, 5%
(DMSO)  Sigma #D8418DMSO puede mejorar la permeabilidad celular y cutánea de otros compuestos. Evite el contacto y use protección para la piel y los ojos.
DMEM medio Tecnologías de la Vida #41965062
TDT, DL-Dithiothreitol Sigma 
EDTAEuromedex#EU0007-C
EGTASigma 
Absoluto de etanol  Fisher Chemical #E/0650DF/15
Suero fetal bovino (FBS)Sigma 
prensa francesa de celda de presión Thermo electron corporation #FA-078Acon una celda #FA-032; para lisar grandes cantidades de celdas. Ajustado en una relación media, y la presión manométrica de 1.000 psi (corresponde a 3.000 psi dentro de la cámara de interrupción).
Glicerol  Productos químicos de VWR #24388.295
GlycineSigma#G8898
GTP Sigma 
Bloque calefactor Stuart 
Células Hela ATCC® CCL-2 y comercio;
Células Hela S3 ATCCATCC® CCL-2.2 y comercio;
Ácido clorhídrico (HCl)VWR#20252.290
Microscopio invertido Con fluorescencia si se va a verificar la transfección celular
Isopropanol VWR #20842.298
jetPEIPolyplus #101
Rotor JLA-8.1000 Para la recolección de cultivos giratorios
KOH Sigma #P1767KOH es corrosivo y causa quemaduras; use protección para los ojos y la piel.
L-Glutamina Tecnologías de la Vida #25030123
Centrífuga de laboratorio para tubos de 50 mlSigma4-16 K 
Leupeptin Sigma#L2884
Nitrógeno líquido 
Micropipetas p2.5, p10, p20, p100, p200 y p1000 y puntas
MicromortillasEppendorf#0030 120.973
Tejido cerebral de ratón El cuidado y uso de los animales para este estudio se realizó de acuerdo con las recomendaciones de la Comunidad Europea (2010/63/UE). Los procedimientos experimentales fueron específicamente aprobados por el comité de ética del Institut Curie CEEA-IC #118 (autorización nº 04395.03 dada por la Autoridad Nacional) de acuerdo con las directrices internacionales.
Agujas 18G x 1 y frac12; ” (1,2 X 38 mmTerumo#18G
Agujas 20G x 1 y frac12; ” (0,9 X 38 mmTerumo#20G
Agujas 21G x 4 & frac34; ” (0,8 X 120 mmB.Braun#466 5643
Parafilm
PBS Tecnologías de la Vida #14190169
Penicilina-Estreptomicina Tecnologías de la Vida #15140130
pH-metro
de fluoruro de fenilmetanosulfonilo (PMSF)Sigma #P7626 polvo dePMSF es peligroso. Use protección para la piel y los ojos cuando prepare soluciones de PMSF.
PIPES Sigma 
Rotores de
Beckman 70.1 Ti; TLA-100.3; y equipo de electroforesis TLA 55
SDS-PAGE Bio-Rad 
SDS, sulfato de dodecilo de sodio VWR #442444HPara preparar el tampón Laemmeli 
SDS, sulfato de dodecilo de sodio Sigma #L5750Para la preparación de geles 'TUB' SDS-PAGE
Sonicator Branson#101-148-070Se utiliza para lisar células cultivadas como cultivos adherentes. Utilice una sonda de 6,5 mm de diámetro, ajuste el sonicador a " Control de salida" 1, " Ciclo de trabajo" 10% y tiempo dependiendo del tipo de célula utilizada.
Centrífuga de sobremesa para tubos de 1,5 mlEppendorf5417R 
TEMED, N, N, N′, N′-Tetrametiletilendiamina Sigma#9281
Trichostatina A (TSA)Sigma#T8552
Triton X-100 Sigma 
Trizma base (Tris)Sigma 
Tripsina Life Technologies#15090046
Rotores ultracentrífugos Rotores TLA-55, TLA-100.3 y 70.1 Ti ajustadosa 4° C o 30 grados; C en función de la necesidad del experimento 
Tubos de ultracentrífuga Beckman#357448 para usar con rotor TLA-55
Tubos de ultracentrífuga Beckman#349622rotor TLA-100.3
 Beckman#355631 para usar con rotor 70.1 Ti
UltracentrífugasBeckmanOptima L80-XP (o equivalente) y Optima MAX-XP (o equivalente)Ajustado a 4&grad; C o 30 grados; C en función de la necesidad del experimento 
de vórtice
Baño de agua equipado con flotadores o soportesAjustado a 30 ° C 
placas de, con tapón de rosca de 15 ml#A8456#A1153 Beckman Avanti J-26 XP #A7906cultivo celular de dimetilsulfóxido de CO2 #D9779#E3889#F7524#G8877#SBH130Dcorrespondientes#P6757pipeta#1658001FC#T9284#T1503 para usar con tubos de ultracentrífuga de Mezclador de tubo

Referencias

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Verhey, K. J., Gaertig, J. The tubulin code. Cell Cycle. 6 (17), 2152-2160 (2007).
  2. Janke, C. The tubulin code: Molecular components, readout mechanisms, and functions. Journal of Cell Biology. 206 (4), 461-472 (2014).
  3. Janke, C., Magiera, M. M.

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