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Etiquetado Covalente Con Dietilpirocarbonato Para El Estudio De La Estructura De Orden Superior De Proteínas Por Espectrometría De Masas

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DOI:

10.3791/61983

15 de junio de 2021

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En este artículo

Resumen

Se describen los procedimientos experimentales para realizar el etiquetado covalente a base de dietilpirocarbonato con detección espectrométrica de masas. El dietilpirocarbonato simplemente se mezcla con la proteína o complejo proteico de interés, lo que lleva a la modificación de residuos de aminoácidos accesibles al disolvente. Los residuos modificados se pueden identificar después de la digestión proteolítica y la cromatografía líquida / análisis de espectrometría de masas.

Resumen

Caracterizar la estructura de orden superior de una proteína es esencial para comprender su función. La espectrometría de masas (EM) ha surgido como una poderosa herramienta para este propósito, especialmente para los sistemas de proteínas que son difíciles de estudiar por métodos tradicionales. Para estudiar la estructura de una proteína por EM, se realizan reacciones químicas específicas en solución que codifican la información estructural de una proteína en su masa. Un enfoque particularmente efectivo es utilizar reactivos que modifican covalentemente las cadenas laterales de aminoácidos accesibles con disolventes. Estas reacciones conducen a aumentos de masa que se pueden localizar con la resolución del nivel de residuos cuando se combinan con la digestión proteolítica y la espectrometría de masas en tándem. Aquí, se describen los protocolos asociados con el uso de dietilpirocarbonato (DEPC) como un reactivo de etiquetado covalente junto con la detección de MS. DEPC es una molécula altamente electrofílica capaz de etiquetar hasta el 30% de los residuos en la proteína media, proporcionando así una excelente resolución estructural. DEPC se ha utilizado con éxito junto con la EM para obtener información estructural de pequeñas proteínas de un solo dominio, como la β2-microglobulina, a grandes proteínas multidominio, como los anticuerpos monoclonales.

Introducción

Las proteínas son biomoléculas esenciales en prácticamente todos los procesos fisiológicos. La variedad de funciones que realizan las proteínas son posibles debido a las estructuras que adoptan y las interacciones que tienen con otras biomoléculas. Para entender la función de la proteína en un nivel más profundo, se necesitan herramientas bioquímicas y biofísicas para dilucidar estas importantes características e interacciones estructurales. Tradicionalmente, la cristalografía de rayos X, la microscopía electrónica criogénica y la espectroscopia de resonancia magnética nuclear (RMN) han proporcionado el detalle a nivel atómico deseado para revelar la estructura de la ....

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Protocolo

1. Preparación de proteínas y reactivos

Nota : este protocolo incluye un flujo de trabajo de ejemplo para etiquetar una proteína con DEPC. Algunas condiciones y concentraciones de reactivos enumeradas pueden variar según la proteína de elección.

  1. Prepare todas las soluciones de reactivos en tubos microcentrífugos de 1,5 mL.
  2. Preparar una solución proteica de la concentración deseada, generalmente en el rango de decenas de μM, en un tampón de ácido 3-(N-morfolino)propanesulfónico (MOPS) de 10 mM a pH 7.4. Alternativamente, prepare una solución de proteína de intercambio tampón existente en 10 mM pH 7.4 MOPS si la muestra co....

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Resultados

Identificación de sitios de modificación de DEPC y porcentajes de modificación
La adición de masa debida al etiquetado covalente puede medirse en los niveles (a) de proteínas intactas y (b)péptidos 8,9. A nivel intacto, se puede obtener una distribución de especies de proteínas con diferentes números de etiquetas a partir del análisis directo o LC-MS de muestras de proteínas etiquetadas. Para obtener información estructural de mayor resolución (es dec.......

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Discusión

Pasos críticos
Se deben considerar varios puntos relacionados con el diseño experimental para garantizar resultados de etiquetado confiables. En primer lugar, para maximizar el etiquetado de proteínas, es necesario evitar los tampones con grupos fuertemente nucleófilos (por ejemplo, Tris) porque pueden reaccionar con DEPC y reducir el alcance del etiquetado. También es concebible que tales tampones puedan reaccionar con residuos etiquetados, causando la eliminación de la etiqueta y, por lo tanto, la pérdida d.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Los autores reconocen el apoyo de los Institutos Nacionales de la Salud (NIH) bajo la Subvención R01 GM075092. El espectrómetro de masas Thermo Orbitrap Fusion utilizado para adquirir algunos de los datos descritos aquí fue adquirido con fondos de la subvención S10OD010645 de los Institutos Nacionales de Salud.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Tubo de microcentrífuga de 1,5 mLThermo Fisher Scientific3448
Ácido 3-(N-morfolino)propanosulfónicoMillipore SigmaM1254
Ácido 3-(N-morfolino)propanosulfónico sal sódicaMillipore SigmaM9381
Acclaim PepMap RSLC C18 ColumnaThermo Scientific164537300 μ m x 15 cm, C18, 2 μ m, 100 A
AcetonitriloFisher ScientificA998-1
DietilpirocarbonatoMillipore SigmaD5758
Agua de grado HPLCFisher ScientificW5-1
ImidazolMillipore SigmaI5513
Quimotripsina inmovilizadaProteoChemg4105
Tripsina inmovilizada, TPCK TratamientoThermo Fisher Scientific20230
YodoacetamidaMillipore SigmaI1149
Tris(2-carboxietil)fosfinaMillipore SigmaC4706

Referencias

  1. Katta, V., Chait, B. T., Carr, S. Conformational Changes in Proteins Probed by Hydrogen-exchange Electrospray-ionization. Rapid Communications in Mass Spectrometry. 5, 214-217 (1991).
  2. Wales, T. E., Engen, J. R. Hydrog....

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