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Análisis de la traducción en el cerebro del ratón en desarrollo utilizando perfiles de polisoma

DOI:

10.3791/62088

May 22nd, 2021

In This Article

Summary

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El desarrollo del cerebro de los mamíferos requiere un control adecuado de la expresión génica a nivel de traducción. Aquí, describimos un sistema de perfilado de polisoma con una plataforma de degradado y fraccionamiento de sacarosa fácil de ensamblar para evaluar el estado traslacional de los ARNM en el cerebro en desarrollo.

Abstract

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El desarrollo adecuado del cerebro de los mamíferos se basa en un fino equilibrio de proliferación de células madre neurales y diferenciación en diferentes tipos de células neuronales. Este equilibrio está estrictamente controlado por la expresión génica que está afinada en múltiples niveles, incluyendo transcripción, post-transcripción y traducción. En este sentido, un creciente cuerpo de evidencia destaca un papel crítico de la regulación traslacional en la coordinación de las decisiones sobre el destino de las células madre neurales. El fraccionamiento de polisomas es una poderosa herramienta para la evaluación del estado traslacional del ARNM tanto a nivel global como individual. Aquí, presentamos una tubería interna de perfiles de polisoma para evaluar la eficiencia traslacional en las células de la corteza cerebral del ratón en desarrollo. Describimos los protocolos para la preparación del gradiente de sacarosa, lisis tisular, ultracentrifugación y análisis basado en fraccionamientos del estado traslacional del ARNm.

Introduction

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Durante el desarrollo del cerebro de los mamíferos, las células madre neurales proliferan y se diferencian para generar neuronas y glia1,2. La perturbación de este proceso puede conducir a alteraciones en la estructura y función cerebral, como se ve en muchos trastornos del neurodesarrollo3,4. El comportamiento adecuado de las células madre neurales requiere la expresión orquestada de genes específicos5. Si bien el control epigenético y transcripcional de estos genes ha sido estudiado intensamente, hallazgos recientes sugieren q....

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Protocol

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Todo el uso de animales fue supervisado por el Comité de Cuidado animal de la Universidad de Calgary. Los ratones CD1 utilizados para el experimento fueron comprados al proveedor comercial.

1. Preparación de soluciones

NOTA Para evitar la degradación del ARN, rocíe la mesa de trabajo y todos los equipos con solución de descontaminación RNase. Los consejos sin RNase se utilizan para el experimento. Todas las soluciones se preparan en agua sin RNase.

  1. Preparar solución de material de cicloheximida (100 mg/ml) en DMSO y almacenar a -20 °C.
  2. Prepare la solución de caldo de sacarosa de 2,2 M añadiend....

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Results

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Como demostración, el lisato cortical que contenía 75 μg de ARN (agrupado de 8 embriones) fue separado por el gradiente de sacarosa en 12 fracciones. Picos de absorbancia UV a 254 nm identificaron fracciones que contienen el subunidad 40S, subunidad 60S, monosoma 80S y polisomas (Figura 4A). Análisis de fracciones por mancha occidental para la gran subunidad ribosomal, Rpl10 mostró su presencia en la subunidad 60S (fracción 3), monosoma (fracción 4) y polisomas (fracciones 5-12) (

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Discussion

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El perfilado de polisomas es una técnica comúnmente utilizada y potente para evaluar el estado traslacional en niveles únicos de genes y de todo el genoma14. En este informe, presentamos un protocolo de perfilado de polisoma utilizando una plataforma montada en casa y su aplicación para analizar la corteza del ratón en desarrollo. Esta plataforma rentable es fácil de montar y generar gradientes de sacarosa robustos y reproducibles y perfiles de polisoma con alta sensibilidad.

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Disclosures

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Los autores no declaran intereses en competencia.

Acknowledgements

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Este trabajo fue financiado por una NSERC Discovery Grant (RGPIN/04246-2018 a G.Y.). G.Y. es una Cátedra de Investigación de Canadá. S.K. fue financiado por Mitacs Globalink Graduate Fellowship y ACHRI Graduate Student Scholarship.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
1,5 mL microtubos sin ARNAxygenMCT-150-C
Plato de 10 cmGreiner-Bio664160
1M MgCl2InvitrogenAM9530G
21-23Gaguja BD305193
2M KClInvitrogenAM8640G
30 mL jeringaBD302832
Extremo romo agujaVWR20068-781
BreadboardThorlabsMB2530/M
Azul de bromofenolSigma115-39-9
CD1Charles River Laboratory
Pinzas de punta curvaSigma#Z168785
CicloheximidaSigma66-81-9 Software de adquisición de
datos TracerDAQComputación de medición Convertidor
Computación de mediciónUSB-1208LS
Kit de minipreparación de ARN Direct-zolZymoR2070
Dithiothreitol (DTT)Bio-basic12-03-3483
DMSOBioshop67-68-5
Pinzas Dumont No.5Sigma#F6521
Colector de fraccionesBio-RadModelo 2110
HBSSWisent311-513-CL
Actuador de etapa linealRattmmotorCBX1605-100A
ARN de control de luciferasaPromegaL4561
Maxima kit de síntesis de ADNc de primera cadenaThemo FisherM1681
Abrazadera en V en miniaturaThorlabsVH1/M
Mini-series BreadboardThorlabsMSB7515/M
Mini-series poste ópticoThorlabsMS2R/M
Mini-series Base de soporte de poste de pedestalThorlabsMBA1
NaClBio-basic7647-14-5
Medios neurobasalesGibco21103-049
Ø Poste de aluminio de 12,7 mmThorlabsTRA150/M
ParafilmBemisPM992
PerfeCTa SYBR verde fastmixQuanta BioCA101414-274
Solución salina tamponada con fosfato (PBS)Wisent311-010-CL
PuromycinBioshop58-58-2
Abrazadera de ángulo rectoThorlabsRA90/M
Ángulo recto y Oslash; 1/2" a Ø Abrazadera de poste de 6 mmThorlabsRA90TR/M
Rnase AWAYMolecular BioProducts7002
Puntas sin RNasaFrogga BioFT10, FT200, FT1000
Agua sin RNasaWisent 809-115-CL
RNasinPromegaN2111
Soporte de ángulo recto delgadoThorlabsAB90B/M
Abrazadera en V pequeñaThorlabsVC1/M
Desoxicolato de sodioSigma302-95-4
Controlador de motor paso a pasoSongHeTB6600
SacarosaBioshop57501
SW 41 Rotor TiBeckman Coulter331362
Bomba de jeringaHarvard Apparatus70-4500
Bomba de jeringaHarvard Apparatus70-4500
Triton-X-100Bio-basic9002-93-1
TrizolThermofisher Scientific15596018
Perforadora de tubosBrandelBR-184
UltracentrífugaBeckman CoulterL8-70M
Tubos de ultracentrífugaBeckman Coulter331372
UltraPure 1M Tris-HCl pH 7.5Invitrogen15567-027
UNO project super starter kitElegooEL-KIT-003
monitor UVBio-RadEM-1 Econo
Soporte verticalThorlabsVB01A/M
Ratón digital

References

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  1. Götz, M., Huttner, W. B. The cell biology of neurogenesis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 6, 777-788 (2005).
  2. Guillemot, F. Spatial and temporal specification of neural fates by transcription factor codes. Development. 134, 3771-3780 (2007).

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Polysome ProfilingTranslational RegulationMouse Brain DevelopmentSucrose GradientNeural Stem CellsmRNA TranslationUltracentrifugationFraction CollectionRibosomal SubunitsWestern Blot

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