Aquí, presentamos un método para la generación reproducible de astrocitos ventrales con patrón de mesencéfalo a partir de hiPSCs y protocolos para su caracterización para evaluar el fenotipo y la función.
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Artículo de método
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Aquí, presentamos un método para la generación reproducible de astrocitos ventrales con patrón de mesencéfalo a partir de hiPSCs y protocolos para su caracterización para evaluar el fenotipo y la función.
En la enfermedad de Parkinson, la disfunción progresiva y la degeneración de las neuronas dopaminérgicas en el mesencéfalo ventral causan síntomas que cambian la vida. La degeneración neuronal tiene diversas causas en el Parkinson, incluyendo mecanismos autónomos no celulares mediados por astrocitos. En todo el SNC, los astrocitos son esenciales para la supervivencia y la función neuronal, ya que mantienen la homeostasis metabólica en el entorno neuronal. Los astrocitos interactúan con las células inmunitarias del SNC, la microglía, para modular la neuroinflamación, que se observa desde las etapas más tempranas del Parkinson, y tiene un impacto directo en la progresión de su patología. En las enfermedades con un elemento neuroinflamatorio crónico, como el Parkinson, los astrocitos adquieren un fenotipo neurotóxico y, por lo tanto, potencian la neurodegeneración. En consecuencia, los astrocitos son un objetivo terapéutico potencial para retrasar o detener la enfermedad, pero esto requerirá una comprensión más profunda de sus propiedades y funciones en el Parkinson. Por lo tanto, se necesitan con urgencia modelos precisos de astrocitos ventrales mesencéfalos humanos para su estudio in vitro.
Hemos desarrollado un protocolo para generar cultivos de alta pureza de astrocitos ventrales específicos del mesencéfalo (vmAstros) a partir de hiPSCs que pueden ser utilizados para la investigación del Parkinson. Los vmAstros se pueden producir de forma rutinaria a partir de múltiples líneas hiPSC y expresan marcadores astrocíticos y ventrales específicos del mesencéfalo. Este protocolo es escalable y, por lo tanto, adecuado para aplicaciones de alto rendimiento, incluido el cribado de fármacos. De manera crucial, los vmAstros derivados de hiPSC demuestran características inmunomoduladoras típicas de sus contrapartes in vivo, lo que permite estudios mecanicistas de la señalización neuroinflamatoria en el Parkinson.
La enfermedad de Parkinson afecta al 2%-3% de las personas mayores de 65 años, lo que la convierte en el trastorno neurodegenerativo del movimiento más prevalente1. Es causada por la degeneración de las neuronas dopaminérgicas ventrales del mesencéfalo dentro de la sustancia negra, lo que resulta en síntomas motores debilitantes, así como problemas cognitivos y psiquiátricosfrecuentes. La patología de Parkinson se caracteriza por agregados de la proteína, α-sinucleína, que son tóxicos para las neuronas y provocan su disfunción y muerte 1,2,3
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1. Descongelación, mantenimiento y criopreservación de la línea hiPSC humana
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Metodología de diferenciación y progresión
En este trabajo se presenta el detalle tanto de los métodos empleados para la generación de vmAstros como de los protocolos utilizados para su posterior caracterización fenotípica. El método para la generación de vmAstros se compone de varias etapas de diferenciación distintas, que pueden ser monitoreadas por microscopía e identificando características morfológicas distintas (Figura 1A-F). Un cul.......
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Este método para la generación de vmAstros a partir de hiPSCs es altamente eficiente, generando cultivos puros de vmAstros, y siendo reproducible para la generación de vmAstros a partir de diferentes líneas de hiPSCs. Este protocolo se desarrolló en torno a la recapitulación de los eventos de desarrollo necesarios en el embrión para modelar correctamente el mesencéfalo en desarrollo y generar astrocitos y comprende tres etapas definidas: 1) inducción neural ventral del mesencéfalo para g.......
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Los autores no tienen nada que revelar.
Este trabajo fue financiado por una beca del proyecto Parkinson's UK (G-1402) y una beca de investigación. Los autores agradecen al Wolfson Bioimaging Facility por su apoyo y asistencia en este trabajo.
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Reactivos | |||
| 0,2M Tris-Cl (pH 8,5) | n/a | n/a | Compuesto por Tris base y más HCl |
| 0,5M EDTA, PH 8 | ThermoFisher | 15575-020 | 1:1000 en D-PBS a 0,5 mM final |
| 1,4-diazabicilo[2.2.2]octano (DABCO) | Sigma | D27802- | 25 mg/mL en solución de montaje Mowiol |
| cubreobjetos de 13 mm | VWR | 631-0149 | |
| 2-Mercaptoetanol (50 mM) | ThermoFisher | 31350010 | |
| Accutase | ThermoFisher | 13151014 | |
| Advanced DMEM/F12 | ThermoFisher | 12634010 | Tiene 1x NEAA pero añadimos a la concentración final de 2x (0,2 mM) |
| Ácido ascórbico | Sigma | A5960 | Stock de 200 mM, 1:1000 a 200 y micro; M final |
| B27 Suplemento | ThermoFisher | 17504-044 | 50x stock |
| BSA | Sigma | 5470 | |
| Medios de congelación celular | Sigma | C2874 | Cryostor CS10 |
| Recipiente de congelación celular | Nalgene | 5100-0001 | |
| CHIR99021 | Axon Medchem | 1386 | 0,8 mM stock, dilución 1:1000 a 0,8 y micro; M |
| final Crioviales | Sigma | CLS430487 | |
| DAPI | Sigma | D9542 | 1 mg/mL, 1:10.000 a 100ng/mL final (en PBS) |
| DMEM/F12 + Glutamax | ThermoFisher | 10565018 | |
| Dulbeccos-PBS (D-PBS sin Mg ni Ca) | ThermoFisher | 14190144 | pH 7,2 |
| E8 Kit | Flex ThermoFisher A2858501 | ||
| Formaldehído (solución al 36%) | Sigma | 47608 | |
| Geltrex | ThermoFisher | A1413302 | 1:100 o 1:400 en stock frío DMEM/F12 |
| Glutamax | ThermoFisher | 35050038 | 2 mM (1:200 en N2B27, 1:100 en medios ASTRO a 20 &; M final) |
| Glicerol | Sigma | G5516 | |
| BDNF Humano | Peprotech | 450-02 | 20 y micro; g/mL de culata, 1:1000 a 20 ng/mL final |
| Human BMP4 | Peprotech | 120-05 | 20 µ g/mL de caldo, 1:1000 a 20 ng/mL final |
| EGF humano | Peprotech | AF-100-15 | 20 y micro; g/mL de caldo, 1:1000 a 20 ng/mL final |
| GDNF humano | Peprotech | 450-10 | 20 y micro; g/mL de stock, 1:1000 a 20 ng/mL de solución final de |
| insulina humana | Sigma | I9278 | 10 mg/mL de culata, 1:2000 a 5 y micro; g/mL final |
| LIF humano | Peprotech | 300-05 | 20 µ g/mL de stock, 1:1000 a 20 ng/mL final |
| IL-6 ELISA kit | Biotechne | DY206 | |
| Isopropanol | Sigma | I9516-4L | Para llenar el recipiente de almacenamiento criogénico Mr Frosty |
| LDN193189 | Sigma | SML0559 | 100 y micro; Culata M, dilución 1:10.000 a 10 nM final |
| Mowiol 40-88 | Sigma | 324590 | |
| N2 Suplemento | ThermoFisher | 17502048 | 100x |
| Culata NEAA | ThermoFisher | 11140035 | 10 mM, 1:100 a 0,1 mM final |
| Medios neurobasales | ThermoFisher | 21103049 | |
| Suero de cabra normal | Vector Labs | S-1000-20 | |
| Revitacell | ThermoFisher A2644501 | 100x stock, 1:100 a 1x | |
| final SB431542 | Tocris | 1614 | 10 mM stock, dilución 1:1000 a 10 µ M final |
| SHH-C24ii | Biotechne | 1845-SH-025 | 200 µ g/mL de caldo, 1:1000 a 200 ng/mL final |
| Tris-HCl | Sigma | PHG0002 | |
| Triton-X | Sigma | X100 | |
| Tween-20 | Sigma | P7949 | |
| Vitronectina | ThermoFisher | A14700 | 1:50 en D-PBS |
| Anticuerpos fuertes > para inmunocitoquímica | Company | >Número de catálogo | Especie huésped |
| Anticuerpo contra el ratón S100b | Sigma | SAB4200671 | ; 1:200 |
| Anticuerpo contra el ratón FOXA2 | SCBT | NB600501 | ; 1:50 |
| Anticuerpo contra el conejo LMX1A | ProSci | 7087 | ; 1:300 |
| Anticuerpo contra LMX1A | Millipore | AB10533 | conejo; 1:2000 |
| Anticuerpo contra LMX1B | Proteintech | 18278-1-AP | Conejo; 1:300 |
| Anticuerpo contra GLAST | Proteintech | 20785-1-AP | Conejo; 1:300 |
| Anticuerpo contra GFAP | Dako | Z0334 | Conejo; 1:400 |
| Anticuerpo contra CD49f | Proteintech | 27189-1-AP | Conejo; 1:100 |
| Anticuerpo contra MSI1 | Abcam | ab52865 | Conejo; 1:400 |
| Alexa Fluor 488 Cabra Anti-Conejo | ThermoFisher | A32731 | Cabra; 1:500 |
| Alexa Fluor 488 Cabra Anti-Ratón | ThermoFisher | A32723 | Cabra; 1:500 |
| Alexa Fluor 568 Cabra Anti-Conejo | ThermoFisher | A11036 | Cabra; 1:500 |
| Alexa Fluor 488 Cabra Anti-Ratón | ThermoFisher | A11031 | Cabra; 1:500 |
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