Artículo de método

Protocolos de PCR digital de gotas con transcripción inversa de dos pasos para la detección y cuantificación del SARS-CoV-2

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DOI:

10.3791/62295

31 de marzo de 2021

En este artículo

Resumen

Este trabajo resume los pasos para desarrollar diferentes ensayos para la detección del SARS-CoV-2 utilizando un sistema ddPCR de dos colores. Los pasos son elaborados y se han incluido notas sobre cómo mejorar los ensayos y el rendimiento del experimento. Estos ensayos se pueden utilizar para múltiples aplicaciones RT-ddPCR del SARS-CoV-2.

Resumen

El diagnóstico de la actual pandemia de SARS-CoV-2 es una prioridad para todos los países del mundo. Actualmente, la PCR cuantitativa con transcripción inversa (RT-qPCR) es el estándar de oro para el diagnóstico del SARS-CoV-2, ya que no hay una solución permanente disponible. Por muy efectiva que pueda ser esta técnica, han surgido investigaciones que muestran sus limitaciones en la detección y el diagnóstico, especialmente cuando se trata de objetivos poco abundantes. Por el contrario, se ha demostrado que la PCR digital por gotas (ddPCR), una tecnología emergente reciente con ventajas superiores a la qPCR, supera los desafíos de la RT-qPCR en el diagnóstico del SARS-CoV-2 a partir de muestras objetivo poco abundantes. Prospectivamente, en este artículo, las capacidades de RT-ddPCR se amplían aún más al mostrar los pasos sobre cómo desarrollar ensayos simplex, dúplex, mezcla de sonda triplex y cuádruples utilizando un sistema de detección de dos colores. Usando cebadores y sondas dirigidas a sitios específicos del genoma del SARS-CoV-2 (N, ORF1ab, RPP30 y RBD2), se demuestra que el desarrollo de estos ensayos es posible. Además, se proporcionan protocolos detallados paso a paso, notas y sugerencias sobre cómo mejorar el flujo de trabajo de ensayos y analizar datos. La adaptación de este flujo de trabajo en trabajos futuros garantizará que el número máximo de objetivos se pueda detectar con sensibilidad en una muestra pequeña, lo que mejorará significativamente el costo y el rendimiento de la muestra.

Introducción

La reacción en cadena de la polimerasa (PCR), una técnica bien reconocida, ha sufrido varias transformaciones desde su advenimiento para convertirse en una técnica poderosa capaz de proporcionar respuestas a la investigación de ácidos nucleicos. Estas transformaciones han sido una mejora constante de la vieja técnica. Estas transformaciones se pueden resumir en tres generaciones1. La primera generación es la PCR convencional que se basa en la electroforesis en gel para cuantificar y detectar objetivos amplificados. La segunda generación es la PCR cuantitativa en tiempo real (qPCR) que puede detectar muestras en tiempo real y basarse en una curv....

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Protocolo

Declaración ética
El Instituto de Virología de Wuhan (WHIOV) se encuentra entre los laboratorios e institutos aprobados por los CDC de China de la ciudad de Wuhan para realizar investigaciones sobre el SARS-CoV-2 y detectar COVID-19 a partir de muestras clínicas. La investigación sobre el desarrollo de nuevas técnicas de diagnóstico para COVID-19 utilizando muestras clínicas también ha sido aprobada por el comité ético del Instituto de Virología de Wuhan (2020FCA001).

1. Flujo de trabajo de procesamiento de muestras (Figura 1A)

NOTA: En todo el protocolo, es importa....

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Resultados

En un estudio de prueba de concepto, el rendimiento analítico de los ensayos multiplex se probó en muestras clínicas y de investigación19. El rendimiento de los ensayos multiplex fue superior al de una RT-PCR19. Dado que un número bajo de gotitas puede indicar un problema durante la generación de gotas, en este artículo se estableció un límite de 10,000 gotas por pocillo basado en datos empíricos.

Una buena separación entre gotas positivas y nega.......

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Discusión

Hay pocos recursos disponibles sobre cómo desarrollar ensayos RT-ddPCR para la detección del SARS-CoV-2. Aunque no se utiliza en este artículo, las muestras estándar con copias conocidas se pueden utilizar para desarrollar y optimizar ensayos. Sin embargo, en este trabajo, las muestras de SARS-CoV-2 cultivadas en células Vero-E6 se enriquecieron en un fondo de ARN genómico humano y se utilizaron como muestras estándar para desarrollar los ensayos. Las secuencias adecuadas de cebadores y sondas son esenciales al desarroll.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos que revelar.

Agradecimientos

Esta investigación fue financiada por el Megaproyecto de Control de Enfermedades Infecciosas del Ministerio de Salud de China, número de subvención 2017ZX10302301-005 y el Centro de Investigación Conjunta Sino-África, número de subvención SAJC201605.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Extractor de ácidos nucleicos totalmente automático de 32 canales Purificador 32Genfine BiotechFHT101-32Extractor automatizado para ARN
AutoDG Aceite para sondasBioRad12003017QX200 AutoDG consumible
ddPCR Placas de 96 pocillosBioRad12003185
ddPCR Supermix para sondas (sin dUTP)BioRad1863024Fabricación de la mezcla maestra del ensayo ddPCR
Cartuchos DG32 AutoDG BioRad1864108QX200 Consumible AutoDG
Olla de baño de agua termostática electrónicaBeijing Changfeng Instrument and Meter CompanyXMTD-8000Inactivación térmica de muestras
FineMag Rapid Bead Virus Kit de extracción de ADN/ARN GenfineBiotechFMY502T5Extracción de perlas magnéticas de muestras de ARN inactivado
Sellos térmicosde lámina perforableBioRad1814040
Puntas de pipeta para el AutoDGBioRad1864120QX200 AutoDG consumibles
Puntas de pipeta Contenedores de residuos para el AutoDG BioRad1864125QX200 Consumible AutoDG
PrimeScript RT Master Mix (perfecto en tiempo real)TaKaRaRR036AGeneración de ADNc
PX1 Sellador de placas PCRBioRad1814000Selle la placa de gotas de Software AutoDG
QuantaSoft 1.7 BioRad10026368Adquisición y análisis de datos
QuantaSoft Analysis Pro 1.0BioRadN/AAnálisis de datos
QX200 Automated Droplet Gererator (AutoDG)BioRad1864101QX200 Consumible AutoDG
QX200 Lector de gotas BioRad1864003Lectura de gotas y adquisición de datos
T100 TermocicladorBioRad1861096Amplificación de dianas (PCR) y generación de ADNc

Referencias

  1. Nyaruaba, R., Mwaliko, C., Kering, K. K., Wei, H. Droplet digital PCR applications in the tuberculosis world. Tuberculosis. 117, 85-92 (2019).
  2. Baker, M. Digital PCR hits its stride. Nature Methods. 9 (6), 541-544 (2012).
  3. Quan, P. L., Sauzade, M., Brouzes, E.

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