Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Imágenes de lapso de tiempo de arborización neuronal utilizando el etiquetado de virus adenoasociados dispersos de poblaciones de células retinianas genéticamente dirigidas

2.8K visualizaciones

⸱

DOI:

10.3791/62308

⸱

19 de marzo de 2021

 , 

En este artículo

Resumen

Aquí, presentamos un método para investigar la morfogénesis de neuritas en explantes retinianos de ratón postnatales mediante microscopía confocal de lapso de tiempo. Describimos un enfoque para el etiquetado disperso y la adquisición de tipos de células retinianas y sus procesos finos utilizando vectores de virus adenoasociados recombinantes que expresan proteínas fluorescentes dirigidas a la membrana de una manera dependiente de Cre.

Resumen

Descubrir los mecanismos que modelan los cenadores dendríticos requiere métodos para visualizar, visualizar y analizar las dendritas durante el desarrollo. La retina de ratón es un potente sistema modelo para la investigación de mecanismos específicos del tipo celular de morfogénesis neuronal y conectividad. La organización y composición de los subtipos de retina están bien definidas, y las herramientas genéticas están disponibles para acceder a tipos específicos durante el desarrollo. Muchos tipos de células de la retina también restringen sus dendritas y / o axones a capas estrechas, lo que facilita las imágenes de lapso de tiempo. Los cultivos de explantes de retina de ratón son adecuados para la obtención de imágenes de células vivas mediante microscopía confocal o multifotónica, pero faltan métodos optimizados para la dinámica de las dendritas de imágenes con resolución temporal y estructural. Aquí se presenta un método para etiquetar e visualizar escasamente el desarrollo de poblaciones específicas de retina marcadas por el sistema Cre-Lox. Los virus adenoasociados (AVA) disponibles comercialmente utilizados aquí expresaron proteínas fluorescentes dirigidas a la membrana de una manera dependiente de Cre. La administración intraocular de AAV en ratones neonatales produce un marcado fluorescente de tipos de células objetivo a los 4-5 días después de la inyección (dpi). Las señales fluorescentes de membrana son detectables por imágenes confocales y resuelven estructuras y dinámicas de ramas finas. Los videos de alta calidad que abarcan de 2 a 4 h se adquieren a partir de imágenes de montajes planos de retina perfundidos con líquido cefalorraquídeo artificial oxigenado (aCSF). También se proporciona una tubería de postprocesamiento de imágenes para la deconvolución y la corrección de deriva tridimensional (3D). Este protocolo se puede utilizar para capturar varios comportamientos celulares en la retina intacta y para identificar nuevos factores que controlan la morfogénesis de la neurita. Muchas estrategias de desarrollo aprendidas en la retina serán relevantes para comprender la formación de circuitos neuronales en otras partes del sistema nervioso central.

Introducción

Las dendritas de las neuronas de la retina forman patrones intrincados, pero específicos, que influyen en su función dentro de los circuitos neuronales. En la retina de los vertebrados, diversos tipos de células ganglionares retinianas (RGC) e interneuronas de células amacrinas tienen morfologías dendríticas únicas que difieren en tamaño del cenador, ubicación, longitud de la rama y densidad1. Durante el desarrollo postnatal, las RGC y las células amacrinas extienden procesos dendríticos exuberantes en un neuropil llamado capa plexiforme interna (IPL), donde reciben entradas de células bipolares que transmiten señales fotorreceptoras2.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Protocolo

NOTA: Este protocolo abarca 2 días con un período mínimo de 4-5 días para la transducción viral entre días experimentales (Figura 1A). Los experimentos con animales se realizan de acuerdo con las Directrices del Consejo Canadiense de Cuidado animal para el uso de animales en investigación y cuidado de animales de laboratorio bajo protocolos aprobados por el Comité de Uso y Cuidado de Animales del Laboratorio de Servicios para Animales en el Hospital para Niños Enfermos (Toronto, Canadá).

1. Preparativos para las inyecciones neonatales de AAV y experimentos de imagen

  1. Seleccione una línea de ratón Cre p....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

Usando el protocolo anterior, se adquirió, descontornó y corrigió un video 3D de alta resolución del desarrollo de dendritas celulares starburst para la deriva 3D. Se produjeron proyecciones máximas en plano Z para realizar videos 2D para su análisis (Video Complementario 1, Figura 5A). La deconvolución 3D de cada punto temporal aumentó la resolución de las proyecciones de filopodia fina (Figura 5B, C). Las protuberancias finas .......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Discusión

Este video muestra una tubería experimental que utiliza las herramientas genéticas existentes para obtener imágenes de la dinámica de las dendritas del desarrollo de las neuronas de la retina con imágenes en vivo confocales. También se han demostrado las inyecciones intraoculares de AAV dependientes de Cre que codifican proteínas fluorescentes dirigidas a la membrana en ratones neonatales. Las células individuales de poblaciones genéticamente dirigidas están brillantemente etiquetadas tan pronto como 4-5 dpi. Se preparar.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos a Madison Gray por darme una mano cuando no tenía ninguna. Esta investigación fue apoyada por una beca de descubrimiento de NSERC (RGPIN-2016-06128), una beca Sloan en neurociencia y una cátedra de investigación de Canadá Nivel 2 (a J.L.L). S. Ing-Esteves fue apoyado por el Programa de Investigación de Ciencias de la Visión y las Becas de Postgrado-Doctorado de NSERC.

....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Preparación viral Addgene #45185-AAV9
Preparación viral Addgene #45186-AAV9
disección fuerte
celulosaWhatman1001-070
Pinza fina Dumont #5FST11252-20requieren dos pinzas Dumont #5 para la microdisección de retina
Pinza DumontVWR82027-426
Tijeras finasFST14058-09
Papeles de filtro de membrana de éster de celulosa mixta (MCE), hidrófilos, 0,45 y micro; m tamaño de poroMilliporeHABG01 300
Placa de Petri, 50 × 15 mmVWR470313-352
Pipeta de transferencia desechable de polietilenoVWR470225-034
Pincel de punta redonda, tamaño 3/0TiendaSe requieren dos pinceles de tamaño 3/0 (o más pequeños) para el montaje plano de retina
Tijeras quirúrgicasFST14007-14
Tijeras de resorte Vannas - Filo de corte de 2,5 mmFST15000-08
polietileno de cámara fuerte, PE-160 10'WarnerInstruments64-0755
Controlador de calentador de doble canal, modelo TC-344CWarner Instruments64-2401
Objetivo de inmersión HC FLUOTAR L 25x/0.95 W VISIRLeica15506374
Cable controlador de calentadorWarner InstrumentsCC-28
Cámara de incubación de baño grande con soporte de corteWarner InstrumentsRC-27L
MPII Mini-Bomba Peristáltica HarvardApparatus70-2027
PM-6D Plataforma calefactada magnética (calentador de cámara de incubación)Piezasde tubo de cabeza de bomba PM-6D
de Warner Instruments para bomba miniperistáltica MPIIAparato Harvard55-4148
Anclaje de muestra (arpas)Warner Instruments64-0260El anclaje de muestra debe ser compatible con la cámara de incubación
Calentador de solución en línea SlofloWarner InstrumentsSF-28
Inyecciones neonatales
10 y micro; L Jeringa de microlitros serie 700, aguja extraíbleHamilton Company80314
Agujas hipodérmicas de 30 g (0,5 pulgadas)BD PrecisionGlide305106
capilar de vidrio de pared delgada de 4 pulgadas, sin filamento (diámetro exterior de 1,0 mm/0,75 mm) WPI World Precision InstrumentsTW100-4
Etanol 99.8% (para diluir a 70% con agua bidestilada [ddH2O])Sigma-AldrichV001229 
AAV9.hEF1a.lox.TagBFP. lox.eYFP.lox.WPRE.hGH-InvBYFPenn Vector CoreAV-9-PV2453Addgene Plásmido #45185 
AAV9.hEF1a.lox.mCherry.lox.mTFP
1.lox. WPRE.hGH-InvCheTF
Penn Vector CoreAV-9-PV2454Addgene Plásmido #45186
ChAT-IRES-Cre línea de ratones transgénicos knock-inThe Jackson Laboratory6410
Fast Green FCF Contenido de tinte ≥ 85 %Sigma-AldrichF7252-25G
Tirador de micropipetas flameado/marrón, modelo P-97Sutter Instrument Co.P-97
Pasta de tatuaje verdeKetchum MFG Co329A
Solución salina tamponada con fosfato, pH 7,4, líquida, filtrada estéril, apta para cultivo celularSigma-Aldrich806552
PicoPump neumáticoWPI World Precision InstrumentsPV-820
Líquido cefalorraquídeo oxigenado (aCSF) Reactivos
Cloruro de calcio dihidratado (CaCl2· 2H2O)Sigma-AldrichC7902
Cárgeno (5% CO2, 95% O2)AirGasX02OX95C2003102El proveedor puede variar según la región
D-(+)-GlucosaSigma-AldrichG7021
HEPES, Ácido LibreBio BasicHB0264
Solución de ácido clorhídrico, 1 NSigma-AldrichH9892
Cloruro de magnesio hexahidratado (MgCl2· 6H2O)Sigma-AldrichM2670
pH-Tiras reactivas (6.0-7.7)VWRBDH35317.604
Cloruro de potasio (KCl)Sigma-AldrichP9541
Cloruro de sodio (NaCl)Bio BasicDB0483
Fosfato de sodio monobásico (NaH2PO4)Sigma-AldrichRDD007
Software
ImageJInstitutos Nacionales de Salud (NIH)Código
fuerte Se de artículos de arte convencional abierto

Referencias

  1. Lefebvre, J. L., Sanes, J. R., Kay, J. N. Development of dendritic form and function. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 31, 741-777 (2015).
  2. Graham, H. K., Duan, X. Molecular mechanisms regulating synapt....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Reimpresiones y permisos

Explorar más artículos

Marcado dispersomicroscopía confocalsistema Cre-Loxdinámica dendríticamontaje plano de retinadeconvolución 3D