Method Article

Tinción Inmunofluorescente Para La Visualización De Proteínas Asociadas A La Heterocromatina En Las Glándulas Salivales Drosophila

DOI:

10.3791/62408

August 21st, 2021

In This Article

Summary

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Este protocolo tiene como objetivo visualizar agregados de heterocromatina en células de Politeno de Drosophila.

Abstract

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La visualización de los agregados de la heterocromatina immunostaining puede ser desafiadora. Muchos componentes mamíferos de la cromatina se conservan en Drosophila melanogaster. Por lo tanto, es un excelente modelo para estudiar la formación y el mantenimiento de la heterocromatina. Las células politenizadas, como las que se encuentran en las glándulas salivales de las larvas de D. melanogaster de tercer estadio, proporcionan una excelente herramienta para observar la cromatina amplificada casi mil veces y han permitido a los investigadores estudiar los cambios en la distribución de la heterocromatina en el núcleo. Aunque la observación de los componentes de la heterocromatina se puede llevar a cabo directamente en preparaciones cromosómicas de politeno, la localización de algunas proteínas puede verse alterada por la gravedad del tratamiento. Por lo tanto, la visualización directa de la heterocromatina en las células complementa este tipo de estudio. En este protocolo, describimos las técnicas immunostaining usadas para este tejido, el uso de anticuerpos fluorescentes secundarios, y la microscopia confocal de observar estos agregados de la heterocromatina con mayor precisión y detalle.

Introduction

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Desde los primeros estudios de Emil Heitz1,la heterocromatina ha sido considerada un importante regulador de procesos celulares como la expresión génica, la separación meiótica y mitótica de los cromosomas, y el mantenimiento de la estabilidad del genoma2,3,4.

La heterocromatina se divide principalmente en dos tipos: heterocromatina constitutiva que define característicamente secuencias repetitivas, y elementos transponibles que están presentes en sitios cromosómicos específicos como los telómeros y centrómeros. Este tipo de....

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Protocol

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1. Cultivo de larvas de tercer estadio

  1. Preparar 1 litro de medio estándar añadiendo 100 g de levadura, 100 g de azúcar de caña entera sin refinar, 16 g de agar, 10 mL de ácido propiónico y 14 g de gelatina. Disuelva todos los ingredientes excepto la levadura en 800 mL de agua del grifo y luego disuelva la levadura. Autoclave inmediatamente durante 30 minutos.
    1. Después, deje que el medio se enfríe a 60 °C y agregue ácido propiónico a una concentración final al 0.01%. Dejar reposar la botella hasta que se forme la gelatina.
  2. Para optimizar el cultivo de larvas de 3o instar, primero recoja a los adultos mayores de 5 a 10 días y colo....

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Results

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Los resultados representativos de la inmunotensión de HP1a en las glándulas salivales de Drosophila se muestran en la Figura 1. Un resultado positivo es observar un punto focal(Figura 1a)(agregado heterocromático o condensado). Un resultado negativo es ninguna señal o una señal dispersa. A veces se puede observar una señal doble, es decir, con un punto doble (Figura 1c), pero por lo general se produce en cantidades más pequ.......

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Discussion

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La función celular de los organismos eucariotas puede definir la estructura 3D dentro del núcleo, que está respaldada por interacciones entre diferentes proteínas con cromatina y varias moléculas, incluido el ARN. En los últimos tres años, los condensados biológicos que han tenido relevancia, incluida la heterocromatina, han tomado un papel fundamental en la determinación de la separación de fases promoviendo la organización espacial nuclear distinta de la cromatina activa y represiva 16,

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Disclosures

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Los autores declaran que no tienen intereses contrapuestos.

Acknowledgements

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Agradecemos a Marco Antonio Rosales Vega y Abel Segura por tomar algunas de las imágenes confocales, a Carmen Muñoz por la preparación de los medios y al Dr. Arturo Pimentel, M.C. Andrés Saralegui y al Dr. Chris Wood del LMNA por el asesoramiento sobre el uso de los microscopios.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Tubos de microcentrífuga de 1,5 mLAxygen MCT-150-C11351904marca no crítica
16% de formaldehídoThermo Scientific28908
AF1 CitifluorTed pella1947025 mL
BSA, Biología Molecular GradoRoche10735078001marca no crítica
Completo, inhibidores de la proteasa Proteasa ultra libre de EDTA
inhibidores Merck
5892953001
CoverslipCorningCLS285022-200EA22x22, marca no crítica
DTTSigmad9779marca no crítica
EDTASigmaE5134marca no crítica
Marca EGTAno crítica
Corredera de vidrioSello de oromarca 3011no crítica
H3BO3Baker0084-01marca no crítica
H3K9me3Abcam8889
HP1aHybridoma BankC1A9Forma del producto  Concentrado 0.1 mL
KClMarca Baker3040-01crítico
MetanolMarca Baker9070-03No crítico
NaClSigma71376marca no crítico
Marca NaOHno crítico
Marca PIPESno crítico
RotadorThermo Scientific13-687-12Q  Labquake Agitador de tubos
Thermo Mixer CEppendorf13527550SmartBlock 1.5 mL
TrisMilipore648311marca no crítica
Triton X-100SigmaT8787100 mL, marca no crítica
β-mercaptoetanolBio-Rad 161071025 mL, marca no crítica
No

References

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  1. Berger, F. Emil Heitz, a true epigenetics pioneer. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 20 (10), 572(2019).
  2. Irick, H. A new function for heterochromatin. Chromosoma. 103 (1), 1-3 (1994).
  3. Kasinathan, B., et al.

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Immunofluorescent StainingHeterochromatin ProteinsDrosophila Salivary GlandsPolytene ChromosomesConfocal MicroscopyFluorescent AntibodiesHP1 ProteinChromatin VisualizationGenetic MutantsProtein Localization

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