Un ensayo de actividad acoplada a enzimas de alto rendimiento para sondear la interacción de moléculas pequeñas con la dNTPasa SAMHD1

Summary

SAMHD1 es una trifosfofosfato trifosfohidrolasa desoxinucleósido con funciones críticas en la salud y la enfermedad humanas. Aquí presentamos un ensayo versátil de actividad de SAMHD1 acoplado a enzimas, desplegado en un formato de microplaca de 384 pocillos, que permite la evaluación de moléculas pequeñas y análogos de nucleótidos como sustratos, activadores e inhibidores de SAMHD1.

Abstract

El motivo alfa estéril y la proteína 1 que contiene el dominio de la EH (SAMHD1) es un regulador fundamental de los grupos intracelulares de trifosfato de desoxinucleósidos (dNTP), ya que esta enzima puede hidrolizar los dNTP en sus correspondientes nucleósidos y trifosfatos inorgánicos. Debido a su papel crítico en el metabolismo de los nucleótidos, su asociación a diversas patologías y su papel en la resistencia a la terapia, actualmente se están llevando a cabo intensas investigaciones para comprender mejor tanto la regulación como la función celular de esta enzima. Por esta razón, es vital el desarrollo de métodos sencillos y económicos de alto rendimiento para sondear la interacción de moléculas pequeñas con SAMHD1, como reguladores alostéricos, sustratos o inhibidores. Para ello, el ensayo verde de malaquita acoplado a enzimas es un ensayo colorimétrico simple y robusto que se puede implementar en un formato de placa de 384 micropocillos que permite la medición indirecta de la actividad de SAMHD1. Como SAMHD1 libera el grupo trifosfato de los sustratos de nucleótidos, podemos acoplar una actividad pirofosfatasa a esta reacción, produciendo así fosfato inorgánico, que puede ser cuantificado por el reactivo verde de malaquita a través de la formación de un complejo verde de malaquita de fosfomolibdato. En este trabajo se muestra la aplicación de esta metodología para caracterizar inhibidores conocidos de SAMHD1 y descifrar los mecanismos implicados en la catálisis de sustratos no canónicos por SAMHD1 y su regulación por activadores alostéricos, ejemplificados por fármacos anticancerígenos basados en nucleósidos. Por lo tanto, el ensayo verde de malaquita acoplado a enzimas es una herramienta poderosa para estudiar SAMHD1 y, además, también podría utilizarse en el estudio de varias enzimas que liberan especies de fosfato.

Introduction

El motivo alfa estéril y la proteína 1 que contiene el dominio histidina-aspartato (SAMHD1) es un regulador central de la homeostasis de nucleótidos en células de mamíferos¹ con muchas funciones en la salud y la enfermedad^{humanas 2}. Esta enzima es capaz de hidrolizar trifosfatos desoxinucleósidos (dNTPs) en sus moléculas afines de desoxinucleósido y trifosfato inorgánico ^3,4, siendo esta actividad regulada alostéricamente por la abundancia de (d)NTP (revisado en la referencia⁵). Cada monómero SAMHD1 contiene dos sitios alostéricos (AS1 y AS2) y un sitio catalítico, y la formación de la enzima activa requiere el ensamblaje ordenado de un homotetrámero tras la unión de (d)NTP. La dimerización de los monómeros SAMHD1 se desencadena primero a través de la unión de un trifosfato de guanina (GTP o dGTP) a AS1, y la tetramerización posterior se logra cuando una molécula dNTP adicional se une a AS2, lo que permite el acceso del sustrato al sitio catalítico y la posterior hidrólisis.

Los sustratos de SAMHD1 incluyen los cuatro dNTPs canónicos ^3,4 junto con algunos nucleótidos modificados con base y azúcar, incluyendo los metabolitos trifosfato de varios fármacos basados en nucleósidos utilizados en el tratamiento de infecciones virales y cáncer, varios de los cuales también pueden servir como activadores alostéricos ^{6,7,8,9,10,11}. En consecuencia, SAMHD1 modula la eficacia de muchos de estos compuestos en modelos de enfermedad 7,8,9,10,11,12,13,14,15 y, además, en el caso del análogo de la desoxicitidina citarabina (ara-C), que se ha mantenido como tratamiento estándar para la leucemia mieloide aguda (LMA) durante décadas, en realidad dicta eficacia del tratamiento en esta enfermedad ^7,8,16. Por lo tanto, SAMHD1 es un biomarcador potencial y una diana terapéutica para mejorar la eficacia de las terapias basadas en nucleósidos¹⁷ y, en consecuencia, nosotros y otros hemos tratado de identificar estrategias para inactivar SAMHD1 en las células. Propusimos el uso de la proteína viral X (Vpx) como inhibidor biológico para dirigirse a SAMHD1 para su degradación dentro de las células cancerosas⁷, sin embargo, este enfoque tiene una serie de limitaciones (discutidas en la referencia¹²), y también informamos recientemente un enfoque indirecto para suprimir la actividad de SAMHD1 a través de la inhibición de la ribonucleótido reductasa que demostramos en varios modelos de LMA¹⁸. Varios estudios han buscado identificar moléculas pequeñas capaces de inhibir directamente la SAMHD1 y, hasta la fecha, se han reportado varias moléculas de este tipo, sin embargo, solo se ha documentado la inhibición in vitro 6,9,19,20,21,22. En consecuencia, la falta de moléculas pequeñas que inhiban de forma potente la actividad de SAMHD1 en las células, junto con los complejos mecanismos de catálisis de SAMHD1 de las terapias basadas en nucleósidos, subraya la necesidad de seguir investigando. Por lo tanto, los métodos robustos e idealmente de alto rendimiento para sondear la interacción de moléculas pequeñas con SAMHD1 son ideales para identificar sustratos, reguladores alostéricos e inhibidores de esta enzima clínicamente relevante.

Existen varias metodologías que miden directamente la actividad dNTPasa de SAMHD1, como la cromatografía en capa fina (TLC)^9,20,23 y la cromatografía líquida de alta resolución (HPLC)^9,21, pero no son fácilmente susceptibles de configuraciones de alto rendimiento. Una excepción es el ensayo reportado por Mauney et al., que explota la capacidad de SAMHD1 para hidrolizar bis (4-nitrofenil) fosfato (b4NPP) a p-nitrofenol y p-nitrofenil fosfato cuando se usa Mn²⁺ como catión activador, lo que resulta en un cambio colorimétrico que se puede medir fácilmente en una placa de micropocillos²¹. Este ensayo se ha utilizado con éxito para la identificación y caracterización de inhibidores de SAMHD1, pero debe tenerse en cuenta que la hidrólisis se produce en ausencia de activadores de (d)NTP y en presencia de un probable catión activador no fisiológico, siendo ambas advertencias importantes a tener en cuenta. Esto también hace que este ensayo sea menos aplicable al estudio e identificación de reguladores alostéricos de SAMHD1.

En este contexto, un enfoque acoplado a enzimas combinado con el reactivo verde de malaquita, como se detalla en este informe, puede ser un método versátil para medir indirectamente la actividad de la dNTPasa de SAMHD1 y, además, interrogar el impacto de varias moléculas pequeñas sobre ella. El ensayo de verde de malaquita es una técnica colorimétrica robusta y fiable para la detección de fosfato inorgánico libre (Pi), basada en la formación de un complejo de ácido molibdofosfórico que conduce a un cambio colorimétrico medido a 620 nm²⁴. Como la hidrólisis de SAMHD1 libera el grupo trifosfato de los sustratos de nucleótidos, es necesario acoplar esta reacción con una actividad de (piro)fosfatasa, que generará fosfato inorgánico libre, antes de la adición del reactivo verde de malaquita. El ensayo de verde de malaquita es sensible y rentable y se ha utilizado ampliamente para la identificación y caracterización de inhibidores y sustratos para enzimas que liberan grupos fosfato inorgánicos, ya sea en sus reacciones o en presencia de una enzima de acoplamiento. Se ha aplicado ampliamente en la caracterización de las actividades ATPasa de las helicasas 25,26,27, o en el estudio de la actividad enzimática CD73, que media la degradación del AMP a adenosina y fosfato inorgánico²⁸. Además, cuando se acopla, se ha empleado en el descubrimiento de antibióticos dirigidos a la UDP-2,3-diacilglucosamina pirofosfatasa LpxH, una enzima esencial en la mayoría de los patógenos gramnegativos²⁹. Con respecto a la investigación del cáncer, el enfoque acoplado a enzimas se ha desplegado ampliamente contra las hidrolasas NUDIX, una familia de enzimas metabolizadoras de nucleótidos, tanto en la caracterización de sustratos ^30,31,32 como en la identificación y desarrollo de fármacos y sondas químicas 33,34,35,36.

Con respecto a la dNTPasa SAMHD1, este enfoque se ha utilizado en varios informes. Utilizando la exopolifosfatasa Ppx1 de Saccharomyces cerevisiae como enzima de acoplamiento, este ensayo se utilizó para probar varios análogos de nucleótidos como sustratos, activadores o inhibidores de SAMHD1, y dio como resultado la identificación del metabolito trifosfato del fármaco antileucémico clofarabina como activador y sustrato⁶. Además, con pirofosfatasa inorgánica de Escherichia coli como enzima de acoplamiento, se ha empleado en el cribado de una biblioteca de compuestos clínicamente aprobados contra SAMHD1 para identificar inhibidores²⁰. En nuestra investigación, utilizamos este enfoque para demostrar que ara-CTP, el metabolito activo de ara-C, es un sustrato de SAMHD1 pero no un activador alostérico⁷ y, posteriormente, utilizamos este ensayo para demostrar que varias moléculas pequeñas que podían sensibilizar modelos de LMA a ara-C de una manera dependiente de SAMHD1, en realidad no inhibían directamente SAMHD1¹⁸. En este informe, detallaremos este método versátil y demostraremos su aplicabilidad, en una configuración de alto rendimiento, para la identificación de inhibidores, activadores y sustratos de SAMHD1.

Protocol

En la Figura 1 se muestra una descripción general esquemática de los métodos a continuación y una lista detallada de materiales y reactivos está disponible en la Tabla de materiales.

1. Preparación de tampones de ensayo.

1. Preparación de buffers de stock.
   NOTA: Como el ensayo es sensible a la detección de fosfatos, que puede ser común, enjuague la cristalería tres veces con agua ultrapura o bidestilada para evitar la contaminación. Todos los tampones se pueden almacenar a temperatura ambiente (RT).
   1. Prepare 1 L de solución madre tampón de reacción (RB) SAMHD1 (25 mM de Tris-Acetato pH 8, 40 mM NaCl, 1 mM MgCl₂) disolviendo 4,5 g de acetato de Tris, 2,3 g de NaCl y 0,2 g de MgCl₂, en aproximadamente 800 ml de agua antes de ajustar al pH 8 y al volumen final.
   2. Prepare 5 ml de solución madre de TCEP 0,1 M diluyendo 1 ml de TCEP 0,5 M en 4 ml de agua.
   3. Prepare 50 ml de solución madre de Tween-20 al 11 % diluyendo 5 ml de Tween-20 al 100 % en 44,5 ml de agua.
      NOTA: Tween-20 es sensible a la luz.
   4. Prepare 50 ml de solución de parada de EDTA 0,5 M disolviendo 9,3 g de EDTA en aproximadamente 40 ml de agua antes de ajustar a pH 8 y volumen final.
   5. Prepare la solución madre de verde de malaquita (MG) (3,2 mM de verde de malaquita en_H2, SO,₄) agregando lentamente 60 ml de ácido sulfúrico concentrado a 300 ml de agua en una botella de vidrio marrón. Enfriar la solución a RT y disolver 0,44 g de verde de malaquita.
      CAUTELA: La reacción del ácido sulfúrico con el agua es exotérmica, por lo que la botella puede calentarse y provocar una acumulación de presión; Asegúrese de que esta presión se libere con frecuencia.
      NOTA: La solución naranja resultante es sensible a la luz (por lo tanto, botella marrón) y estable durante al menos 1 año en RT. El precipitado puede formarse con el tiempo, asegúrese de que solo se use el sobrenadante.
   6. Preparar 50 ml de solución madre de molibdato amónico al 7% disolviendo 3,75 g de molibdato amónico en 50 ml de agua.
      NOTA: El precipitado puede formarse con el tiempo, asegúrese de usar solo el sobrenadante.
2. Preparación de tampones de ensayo completos
   NOTA: Esto debe hacerse el día del experimento
   1. Prepare SAMHD1 RB completo (25 mM de Tris-Acetato pH 8, 40 mM de NaCl, 1 mM de MgCl₂, 0,3 mM de TCEP, 0,005% de Tween-20). Utilice existencias de TCEP de 11% para Tween-20 y 0,1 M previamente preparadas para añadir estos componentes a una concentración final de 0,005% para Tween-20 y 0,3 mM para TCEP a la acción de SAMHD1 RB.
   2. Prepare la solución de parada de EDTA (25 mM de Tris-Acetato pH 8, 40 mM de NaCl, 1 mM de MgCl₂, 0,3 mM de TCEP, 0,005% de Tween-20, 7,9 mM de EDTA). Para completar SAMHD1 RB, utilice una solución madre de EDTA 0,5 M para añadir EDTA a una concentración final de 7,9 mM.
   3. Prepare la solución de trabajo de MG (2,5 mM de verde de malaquita, 1,4% de molibdato de amonio, 0,18% de Tween-20) mezclando 10 partes de solución madre de MG con 2,5 partes de molibdato de amonio al 7% y 0,2 partes de Tween-20 al 11%.

2. Ensayo de inhibición de SAMHD1 y determinación del compuesto IC₅₀

NOTA: Las condiciones finales del ensayo se muestran en la Tabla 1.

1. Preparación de compuestos en placa de ensayo
   NOTA: Los compuestos de peso molecular pequeño generalmente se disuelven en DMSO al 100% y análogos de nucleótidos en agua. La concentración de stock oscila entre 10 y 100 mM y está influenciada por la potencia y la solubilidad de los compuestos, junto con la tolerancia al DMSO del ensayo. Compruebe que la concentración final de DMSO en la reacción no supere el 1% para asegurarse de que las actividades enzimáticas no se vean afectadas por este disolvente. Es una buena práctica probar la tolerancia del ensayo al disolvente antes del experimento.
   1. Prepare compuestos de prueba diluidos en serie a una concentración final de 100 veces en el disolvente correspondiente (por ejemplo, 100 % de DMSO para moléculas pequeñas o agua para análogos de nucleótidos) en una placa transparente de polipropileno de 96 pocillos de fondo redondo utilizando una pipeta multicanal o un equipo automatizado de manipulación de líquidos.
      NOTA: Dependiendo de la estabilidad del compuesto, las placas de dilución pueden prepararse con antelación, sellarse y almacenarse a -20 °C. Deje que las placas se equilibren a RT antes de continuar con el protocolo.
   2. Utilizando SAMHD1 RB completo, diluya los compuestos hasta una concentración final de 25 veces (para mantener la concentración final de disolvente por debajo del 1 %) y transfiera 5 μl a los pocillos apropiados de una placa de ensayo transparente de fondo plano de 384 pocillos. Repita el procedimiento con muestras de control solo con disolvente.
2. Preparación de los componentes de la reacción
   NOTA: Esto debe hacerse el día del ensayo. Las alícuotas recombinantes humanas de SAMHD1 y E. coli pirofosfatasa (PPasa) se almacenan a largo plazo a -80 °C y se diluyen a 9,1 mg/ml y 23,0 mg/ml, respectivamente, en tampón de almacenamiento (20 mM HEPES pH 7,5, 300 mM NaCl, 10% glicerol, 2 mM TCEP). Una vez descongeladas, las alícuotas se almacenan a corto plazo a -20 °C.
   1. Prepare la mezcla maestra de la enzima (SAMHD1/PPasa) diluyendo la proteína SAMHD1 humana recombinante y la PPasa recombinante en SAMHD1 RB completa hasta 4 veces la concentración final deseada, es decir, 1,4 μM de SAMHD1 y 50 U/mL de PPasa.
   2. Prepare el dGTP activador/sustrato diluyendo el material de dGTP (normalmente 10 o 100 mM en agua) en SAMHD1 RB completo a una concentración final de 2x, es decir, 50 μM de dGTP.
3. Realizar el ensayo
   NOTA: Todos los componentes del ensayo deben equilibrarse a RT. Las adiciones de líquido se pueden realizar con una pipeta multicanal o un dispensador de líquido reactivo a granel.
   1. En una placa de ensayo de 384 pocillos que contenga diluciones de compuestos y controles de solo disolvente, dispense 5 μL de mezcla maestra SAMHD1/PPasa. A los pocillos de control no enzimáticos, dispense 5 μL de SAMHD1 RB completo. Preincubar la enzima y los compuestos durante 10 min en RT.
   2. A todos los pocillos, dispense 10 μL de solución 2x dGTP para iniciar la reacción.
   3. Incubar la reacción durante 20 min a RT.
   4. Detenga la reacción dispensando 20 μL de solución de tope de EDTA a todos los pocillos.
      NOTA: El experimento se puede pausar aquí si se desea.
   5. Agregue 10 μL de solución de trabajo MG a todos los pocillos.
      CAUTELA: La solución de trabajo MG contiene ácido sulfúrico.
   6. Asegure la mezcla del contenido del pocillo utilizando un agitador orbital de placas de micropocillos y la centrifugación a 1.000 x g durante 1 min.
   7. Incubar la placa durante 20 min a RT.
   8. Lea la absorción a una longitud de onda de 630 nm en un lector de placas de micropocillos.
4. Visualización y análisis de datos
   1. Calcular la media y la desviación estándar de los pocillos de control positivo y negativo (positiva, reacción completa con disolvente; negativa, dGTP solo con disolvente). Calcule el factor^{Z 37} como indicador de la calidad del ensayo.
   2. Normalice cada valor de absorbancia a los valores medios de los controles positivos y negativos, estableciendo el control positivo como 100% de actividad SAMHD1 y el control negativo como 0% de actividad SAMHD1.
   3. Grafique la actividad de SAMHD1 (%) en función de la concentración del compuesto y ajuste una curva dosis-respuesta de pendiente variable de cuatro parámetros, lo que permite la determinación del compuesto IC₅₀.

3. Activador SAMHD1 y pantalla de sustrato

NOTA: Las condiciones finales del ensayo se muestran en la Tabla 2. Las alícuotas recombinantes de SAMHD1 y PPasa se almacenan a largo plazo a -80 °C diluidas a 9,1 mg/ml y 23,0 mg/ml, respectivamente, en tampón de almacenamiento (20 mM HEPES pH 7,5, 300 mM NaCl, 10% glicerol, 2 mM TCEP) a -80 °C. Una vez descongeladas, las alícuotas se almacenan a corto plazo a -20 °C.

1. Preparación de análogos de nucleótidos en placa de ensayo
   1. Diluir las existencias de análogos de nucleótidos (normalmente 10 o 100 mM en agua) a una concentración final de 4 veces en SAMHD1 RB completo, en nuestro caso un análogo de nucleótido de 800 μM, y transferir 5 μL a los pocillos apropiados de una placa de ensayo de 384 pocillos.
2. Preparación de los componentes de la reacción
   NOTA: Esto debe hacerse el día del ensayo
   1. Prepare la mezcla maestra de la enzima (SAMHD1/PPasa) diluyendo la proteína SAMHD1 humana recombinante y la PPasa recombinante de E. coli en SAMHD1 RB completa hasta 2 veces la concentración final deseada, es decir, 0,7 μM de SAMHD1 y 25 U/mL de PPasa.
   2. Prepare la solución de PPasa sola diluyendo la PPasa recombinante de E. coli en SAMHD1 RB completa a 2 veces la concentración final deseada, por lo tanto, 25 U/mL de PPasa.
   3. Prepare activadores GTP (AS1) y dGTPαS (AS1 y AS2) diluyendo material (normalmente 10 o 100 mM en agua) en SAMHD1 RB completo a una concentración final de 4x, por lo tanto, 50 μM GTP o dGTPαS.
3. Realizar el ensayo
   NOTA: Todos los componentes del ensayo deben equilibrarse a RT. Las adiciones de líquido se pueden realizar con una pipeta multicanal o un dispensador de líquido reactivo a granel.
   1. En una placa de ensayo de 384 pocillos que contenga análogos de nucleótidos, dispense 5 μL del activador (ya sea GTP o dGTPαS) o complete SAMHD1 RB a los pocillos apropiados.
   2. Inicie la reacción dispensando 10 μL de mezcla maestra SAMHD1/PPasa, PPasa sola o SAMHD1 RB completa a los pocillos apropiados.
   3. Incubar la reacción durante 20 min a RT.
   4. Detenga la reacción dispensando 20 μL de solución de parada de EDTA a todos los pocillos.
      NOTA: El experimento se puede pausar aquí si se desea.
   5. Agregue 10 μL de MG de solución de trabajo a todos los pocillos.
      CAUTELA: La solución de trabajo MG contiene ácido sulfúrico.
   6. Asegure la mezcla del contenido del pocillo utilizando un agitador orbital de placas de micropocillos y la centrifugación a 1.000 x g durante 1 min.
   7. Incubar la placa durante 20 min a RT.
   8. Lea la absorción a una longitud de onda de 630 nm en un lector de placas de micropocillos.
4. Visualización y análisis de datos
   1. Calcule los valores medios de absorbancia para los pocillos de reacción de PPase (control negativo o señal de fondo).
      NOTA: Como control positivo de un activador alostérico SAMHD1 y sustrato, se puede incluir dGTP en la placa. En este caso, puede utilizar esta condición para calcular el factor Z como indicador de la calidad del ensayo.
   2. Reste el valor de fondo de los pocillos correspondientes en las reacciones SAMHD1/PPase.
   3. Grafique los valores de absorbancia corregidos para cada análogo de nucleótido con condiciones de tampón, GTP y dGTPαS.

Representative Results

Discussion

El ensayo de actividad acoplada a enzimas que se detalla aquí es un ensayo colorimétrico de alto rendimiento que permite la medición indirecta de la hidrólisis de dNTP mediante SAMHD1. Este método aprovecha la capacidad de la PPasa inorgánica de E. coli, que cuando se incluye en exceso en la mezcla de reacción, convierte cada trifosfato inorgánico generado por SAMHD1 en tres fosfatos libres individuales que se pueden cuantificar utilizando el reactivo verde de malaquita simple y económico. Proporcionamos este ensayo en un formato de placa de 384 micropocillos, que es ideal para el cribado de bibliotecas de compuestos, y demostramos la aplicabilidad y versatilidad de esta técnica en la identificación y caracterización de inhibidores, activadores y sustratos de SAMHD1.

Al igual que con todos los ensayos de cribado bioquímico in vitro , hay una serie de pasos críticos y consideraciones importantes, y muchos de ellos se analizan en profundidad en el Manual de orientación de ensayos³⁹, disponible gratuitamente. La integridad de las enzimas recombinantes purificadas, tanto SAMHD1 como la enzima acoplada PPasa inorgánica, es extremadamente importante y debe confirmarse antes de establecer el ensayo. Y, en consecuencia, cada nueva purificación de estas enzimas debe estar sujeta a cierto nivel de pruebas por lotes, ya que las variabilidades de un lote a otro podrían introducir inconsistencias en los resultados. Idealmente, se debe utilizar un ensayo directo ortogonal, como la HPLC, que permite la detección tanto del sustrato como del producto de reacción, para verificar la actividad de la trifosfohidrolasa dNTP de la SAMHD1 recombinante purificada que se está utilizando.

En cuanto a las limitaciones de este ensayo, la principal es que mide la actividad dNTPasa de SAMHD1 de manera indirecta, explotando la actividad de la PPasa inorgánica, lo que tiene una serie de implicaciones. Es importante confirmar que la PPasa posee poca o ninguna actividad hacia los nucleótidos utilizados en el ensayo y, del mismo modo, que las pequeñas moléculas inhibidoras identificadas no poseen actividad hacia la PPasa. Por lo tanto, con respecto a la detección, una contradetección contra PPase puede ser una consideración importante. La presencia de PPasa en la reacción también hace que sea fundamental utilizar un ensayo ortogonal para confirmar los hallazgos. Con respecto a los ensayos de actividad directa, hasta la fecha se han descrito varios de ellos, incluidos TLC ^9,20,23 y HPLC ^9,21, que detectan con precisión el agotamiento del sustrato y la formación de productos. Además, el ensayo b4NPP²¹, que también es de alto rendimiento, podría utilizarse para probar posibles inhibidores; Sin embargo, no es ideal para probar sustratos o activadores alostéricos. Los ensayos biofísicos, como la fluorimetría diferencial de barrido (DSF), de la que hemos informado previamente con SAMHD1¹⁸, también pueden ser especialmente potentes para identificar y caracterizar ligandos. Otra limitación del ensayo, específicamente como se muestra en la configuración aquí para identificar sustratos y activadores, es el uso del análogo dGTP no hidrolizable dGTPαS como activador de AS1 y AS2. Si bien esto permite la activación de SAMHD1 sin actividad observable en el ensayo, dGTPαS es un inhibidor competitivo de SAMHD1 y, por lo tanto, el uso de altas concentraciones inactivará la enzima. A medida que avanza nuestra comprensión de SAMHD1, los estudios futuros podrían utilizar moléculas que ocupen exclusivamente cada sitio de SAMHD1, negando así este problema potencial.

Como hemos mostrado aquí, este método es versátil y se puede utilizar para abordar una serie de cuestiones bioquímicas. Hemos descrito dos variaciones de este ensayo, una para la identificación de reguladores alostéricos y sustratos de SAMHD1, y otra para la caracterización de inhibidores, pero se pueden hacer más adaptaciones. Con respecto a los inhibidores potenciales, este ensayo, al estar basado en placas de micropocillos, lo hace muy adecuado para estudios posteriores de mecanismos de acción^39,40. Del mismo modo, para una mayor caracterización de sustratos y reguladores alostéricos, esta técnica puede ser utilizada para determinar parámetros cinéticos de catálisis, como hicimos para el metabolito activo de citarabina y clofarabina⁷. Sin embargo, un inconveniente es que el ensayo acoplado a enzimas que se informa aquí es un ensayo de criterio de valoración y, por lo tanto, aunque es adecuado para el cribado, un ensayo continuo sería más adecuado para algunos estudios mecanicistas. Arnold et al. informaron de un ensayo continuo acoplado a enzimas que utiliza el biosensor MDCC-PBP⁶, que se basa en el uso de la proteína de unión al fosfato periplásmico (PBP) marcada con fluoróforo de maleimida de cumarina (MDCC) que puede unirse a un grupo fosfato libre. MDCC-PBP es muy sensible y permite la cuantificación de concentraciones de fosfato muy bajas, con un tiempo de respuesta del sensor de milisegundos a segundos.

SAMHD1 desempeña una serie de funciones importantes en la salud y la enfermedad^{humanas 2} , muchas de las cuales podrían estar relacionadas con su papel central en el mantenimiento de los niveles intracelulares de dNTP¹. Por lo tanto, la identificación de una sonda química de alta calidad hacia la actividad dNTPasa de SAMHD1 sería una herramienta poderosa para definir estos enlaces, y el ensayo acoplado a enzimas reportado aquí podría emplearse fácilmente para identificar tales sondas. Además, dado que los fármacos basados en nucleósidos, muchos de los cuales están modulados por SAMHD1, constituyen un grupo diverso e importante de fármacos terapéuticos⁴¹; Las sondas químicas podrían convertirse en fármacos dirigidos a SAMHD1 en el entorno clínico, con el objetivo de mejorar la eficacia de estas terapias. También es fundamental comprender el alcance total de la interacción de estos compuestos basados en nucleósidos con SAMHD1, una cuestión que también puede abordarse utilizando este ensayo acoplado a enzimas. En conjunto, el ensayo de actividad SAMHD1 acoplado a enzimas, como se informa aquí, es un ensayo de bajo costo, versátil y de alto rendimiento que se puede utilizar para ampliar nuestra comprensión de esta importante enzima.

Materials

2'-deoxyadenosine-5'-triphosphate (dATP)	Jena bioscience	NU-1001	Compound tested in SAMHD1 activator/substrate assay
2'-deoxycytidine-5'-triphosphate (dCTP)	Jena bioscience	NU-1002	Compound tested in SAMHD1 activator/substrate assay
2'-Deoxyguanosine-5'-(α-thio)-triphosphate (dGTPαS)	Jena bioscience	NU-424	Non-hydrolyzable dGTP analogue for SAMHD1 activator/substrate assay
2'-deoxyguanosine-5'-triphosphate (dGTP)	GE Healthcare	27-1870-04	SAMHD1 allosteric activator and substrate used in inhibition assay and activator/substrate assay
2'-Deoxythymidine-5'-[(α,β)-imido]triphosphate (dTMPNPP)	Jena bioscience	NU-907-1	Compound tested in SAMHD1 inhibition assay
2'-deoxythymidine-5'-triphosphate (dTTP)	Jena bioscience	NU-1004	Compound tested in SAMHD1 activator/substrate assay
2'Deoxyguanosine mohohydrate (dGuo)	Sigma-Aldrich	D0901	Compound tested in SAMHD1 inhibition assay
384 well clear flat-bottom  microplate	Thermo Fisher Scientific	262160	Assay plate
96 well clear U-bottom polypropylene  microplate	Thermo Fisher Scientific	267245	Compound dilution plate
Ammonium heptamolybdate tetrahydrate	Sigma-Aldrich	A1343	Reagent required for malachite green working reagent
ara-Cytidine-5'-triphosphate (ara-CTP)	Jena bioscience	NU-1170	Compound tested in SAMHD1 activator/substrate assay
Clofarabine-5'-triphosphate (Cl-F-ara-ATP)	Jena bioscience	NU-874	Compound tested in SAMHD1 activator/substrate assay
Dimethyl sulphoxide (DMSO)	VWR	23486.297	Solvent
Ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt dihydrate (EDTA)	Sigma-Aldrich	E5134	EDTA stop solution component
Gemcitabine-5'-triphosphate (dF-dCTP)	Jena bioscience	NU-1607	Compound tested in SAMHD1 activator/substrate assay
GraphPad Prism	GraphPad Software	Prism 8	Data analysis and visualisation
Guanosine 5′-triphosphate (GTP) sodium salt hydrate	Sigma-Aldrich	G8877	Allosteric activator for SAMHD1 activator/substrate assay
His-tagged E. coli inorganic pyrophosphatase  (PPase)	Generated in house using Protein Science Facility, Karolinska Institutet	–	Recombinant PPase protein, hydrolises inorganic triphosphate and pyrophosphate to orthophosphate so it can form complex with malachite green
His-tagged human SAMHD1	Generated in house using Protein Science Facility, Karolinska Institutet	–	Recombinant SAMHD1 protein, hydrolizes dNTPs into its corresponding nucleoside and inorganic triphosphate
Hydroxyurea	Sigma-Aldrich	H8627	Compound tested in SAMHD1 inhibition assay
Lomofungin	National Cancer Institute (NCI)/Division of Cancer Treatment and Diagnosis (DCTD)/Developmental Therapeutics Program (DTP)	NSC106995	Compound tested in SAMHD1 inhibition assay
Magnesium Chloride hexahydrate (MgCl<sub>2</sub>)	Sigma-Aldrich	M2670	SAMHD1 reaction buffer component
Malachite green Carbinol hydrochloride	Sigma-Aldrich	213020	Malachite green stock component
Microplate Reader	Hidex	Hidex Sense Microplate reader	Data acquisition, absorption read at 630 nm wavelength
Sodium Chloride (NaCl)	Sigma-Aldrich	31434	SAMHD1 reaction buffer component
Sodium hydroxide (NaOH)	Sigma-Aldrich	567530	SAMHD1 reaction buffer component
Sodium phosphate (Na<sub>3</sub>PO<sub>4</sub>)	Sigma-Aldrich	342483	Required for phosphate standard curve
Sulphuric acid 95-97%	Sigma-Aldrich	84720	Malachite green stock component
Tris-Acetate salt	Sigma-Aldrich	T1258	SAMHD1 reaction buffer component
Tris(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride (TCEP)	Sigma-Aldrich	C4706	SAMHD1 reaction buffer component
Tween-20	Sigma-Aldrich	P1379	SAMHD1 reaction buffer and malachite green working reagent component