Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Utilizando la mejora de la fluorescencia inducida por proteínas resueltas en el tiempo para identificar conformaciones locales estables un monómero α-sinucleína a la vez

2.4K visualizaciones

DOI:

10.3791/62655

30 de mayo de 2021

En este artículo

Resumen

La mejora de la fluorescencia inducida por proteínas de una sola molécula resuelta en el tiempo es un útil sensor de proximidad espectroscópico de fluorescencia sensible a los cambios estructurales locales en las proteínas. Aquí mostramos que se puede usar para descubrir conformaciones locales estables en α-sinucleína, que también se conoce como globularmente no estructurada e inestable cuando se mide utilizando la regla FRET de mayor alcance.

Resumen

El uso de reglas espectroscópicas para rastrear múltiples conformaciones de biomoléculas individuales y su dinámica han revolucionado la comprensión de la dinámica estructural y sus contribuciones a la biología. Mientras que la regla basada en FRET informa sobre las distancias entre colorantes en el rango de 3-10 nm, otras técnicas espectroscópicas, como la mejora de la fluorescencia inducida por proteínas (PIFE), informan sobre la proximidad entre un colorante y una superficie de proteína en el rango más corto de 0-3 nm. Independientemente del método de elección, su uso en la medición de biomoléculas de difusión libre de una en una recupera histogramas del parámetro experimental que producen subtensiones separadas de biomoléculas distribuidas centralmente, donde cada subpuesto representa una sola conformación que permaneció sin cambios en milisegundos, o múltiples conformaciones que se interconvierten mucho más rápido que milisegundos, y por lo tanto una subalidad promediada. En fret de molécula única, donde el parámetro reportado en los histogramas es la eficiencia fretante entre colorantes, una proteína intrínsecamente desordenada, como el monómero de α-sinucleína en tampón, se informó previamente como exhibiendo una sola sub-población promediada de múltiples conformaciones que se interconvierten rápidamente. Si bien estos hallazgos anteriores dependen del rango de 3-10 nm de la regla basada en FRET, buscamos poner esta proteína a prueba utilizando PIFE de molécula única, donde rastreamos la vida útil de fluorescencia de las proteínas de α-sinucleínas α-Synuclein etiquetadas con sCy3 específicas del sitio. Curiosamente, utilizando este sensor de proximidad espectroscópico de corto alcance, la α-Sinucleína etiquetada con sCy3 exhibe varias subtensiones de por vida con vidas medias claramente diferentes que se interconvierten en 10-100 ms. Estos resultados muestran que, si bien α-sinucleína puede estar desordenada a nivel mundial, sin embargo, alcanza estructuras locales estables. En resumen, en este trabajo destacamos la ventaja de utilizar diferentes sensores de proximidad espectroscópicos que rastrean los cambios estructurales locales o globales una biomolécula a la vez.

Introducción

En las últimas dos décadas, los métodos basados en fluorescencia de una sola molécula se han convertido en una poderosa herramienta para medir biomoléculas1,2,sondeando cómo se distribuyen los diferentes parámetros biomoleculares, así como cómo se interconvierten dinámicamente entre diferentes subtensiones de estos parámetros a una resolución de menos de milisegundos3,4,5. Los parámetros en estas técnicas incluyen la eficiencia de transferencia de energía en las mediciones FRET 6,

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Protocolo

1. Transformación de plásmidos

  1. Preparación de 0,5 L de SOC medio
    1. Pesar 10 g de triptona, 2,5 g de extracto de levadura, 0,25 g de cloruro de sodio (NaCl), 0,1 g de cloruro de potasio (KCl).
    2. Agregue agua de doble destilación (DDW) hasta un volumen total de 0.5 L.
    3. Ajuste al pH 7 agregando hidróxido de sodio (NaOH).
    4. Preparar alícuotas de stock de 100 mL y autoclave.
    5. Antes de usar, agregue 0.5 ml de cloruro de magnesio estéril (MgCl2) y 1.8 ml de glucosa estéril a 100 ml de SOC.
  2. Descongelar las células competentes de Escherichia coli BL21 (DE3) en hielo.
  3. Mezc....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

Como IDP, cuando no está unido a otra biomolécula, α-Syn exhibe dinámica estructural entre múltiples conformaciones, con transiciones a pocos microsegundos40 e incluso a cientos de nanosegundos41. Cuando α-Syn cruza la mancha confocal, puede sufrir miles de transiciones entre conformaciones. De hecho, este fue el caso cuando se utilizó smFRET39,40. Aquí realizamos mediciones smPIFE para sondear la dinámica conformac.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Discusión

Se realizaron extensos estudios bioquímicos y biofísicos para estudiar las características estructurales de α-Syn y su naturaleza desordenada33,34,35,36,37,38. Varios trabajos ya han utilizado smFRET de libre difusión para investigar la dinámica intramolecul molecular del monómero α-Syn libre de unión. Estos trabajos reportar.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

Todos los autores no comparten ningún conflicto de intereses.

Agradecimientos

El plásmido pT-t7 que codifica el mutante A56C α-Syn nos fue dado como regalo por el Dr. Asaf Grupi, el Dr. Dan Amir y el Dr. Elisha Haas. Este documento fue apoyado por los Institutos Nacionales de Salud (NIH, subvención R01 GM130942 a E.L. como subaward), la Fundación de Ciencias de Israel (subvención 3565/20 dentro del Programa de Investigación KillCorona - Frenar el Coronavirus), el Fondo Milner y la Universidad Hebrea de Jerusalén (fondos de inicio).

....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Unidades de filtro centrífugo Amicon Ultra-15 MercC7715corte: 100 kDa
sulfato de amonioSigma-AldrichA4418
BSASigma-AldrichA9647
cisteaminaSigma-Aldrich30070
bolsas de diálisis - MEGA GeBaFlex-tubeBio-Application MEGA320
ditiotreitol (DTT)Sigma-Aldrich43815
ácido etilendiaminotetraacético (EDTA)Sigma-AldrichE5134
Solución rápida de tinción SeeBandBioaplicación génicaSB050
GlycineSigma-Aldrich50046
D-GlucosaSigma-AldrichG7021
HEPESSigma-Aldrich54457
HiTrap Desalinizador 5 mLSigma-AldrichGE17-1408
Ácido 6-hidroxi-2,5,7,8-tetrametilcromán-2-carboxílico (TROLOX)Sigma-Aldrich238813
isopropilo β-d-1-tiogalactopiranósido (IPTG)Sigma-AldrichI5502
LB caldoSigma-AldrichL3152
Magnesio cloruroSigma-Aldrich63068
Columna MonoQSigma-Aldrich54807
proteína LoBind tuboSigma-AldrichEP00301080940,5 mL
Enjuague un µ-slide 18Ibidi81816
SDSSigma-Aldrich75746
Acetato de sodioSigma-AldrichS2889
Hidróxido de sodioSigma-AldrichS8045
Fosfato de sodio monobásico monohidratadoSigma-Aldrich71507
Esparcidores de células estériles, espátulas Drigalskimini-plast815-004-05-001
sulfato de estreptomicinaSigma-AldrichS9137
sulfo-Cy3  maleimidaABCAMAB146493
Clorhidrato de Tris(2-carboxietil)fosfina (TCEP)Sigma-Aldrich75259
Tris-HClSigma-Aldrich93363
TriptonaSigma-AldrichT7293
Extracto de levaduraSigma-AldrichY1625

Referencias

  1. Gust, A., et al. A starting point for fluorescence-based single-molecule measurements in biomolecular research. Molecules. 19 (10), 15824-15865 (2014).
  2. Weiss, S. Fluorescence spectroscopy of single biomolecules. Science. 283 (5408), 1676-1683 (1....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Reimpresiones y permisos

Etiquetas

PIFE de molécula únicamonómero de alfa-sinucleínatiempo de vida de fluorescenciasubpoblaciones estructuralesmarcado sitio-específicoanálisis de ráfagasdinámica conformacionalsensor de proximidad espectroscópicoproteína intrínsecamente desordenada