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Artículo de método

Estudio de transferencia de energía de fluorescencia de molécula única de síntesis de proteínas ribosómicas

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DOI:

10.3791/62664

6 de julio de 2021

En este artículo

Resumen

La transferencia de energía de fluorescencia de molécula única es un método que rastrea la dinámica del ARNt durante la síntesis de proteínas ribosómicas. Al rastrear ribosomas individuales, se identifican poblaciones no homogéneas, lo que arroja luz sobre los mecanismos. Este método se puede utilizar para rastrear cambios biológicos conformacionales en general para revelar relaciones de función dinámica en muchos otros biosistemas complejados. Los métodos de molécula única pueden observar pasos no limitantes de velocidad e intermedios clave poco poblados, a los que no son accesibles los métodos de conjunto convencionales debido al efecto promedio.

Resumen

El ribosoma es un gran complejo de ribonucleoproteínas que ensambla proteínas procesivamente a lo largo de plantillas de ARNm. El diámetro del ribosoma es de aproximadamente 20 nm para acomodar grandes sustratos de ARNt en los sitios A, P y E. En consecuencia, la dinámica del ribosoma se desesfálice naturalmente rápidamente. El método de molécula única puede detectar cada ribosoma por separado y distinguir poblaciones no homogéneas, lo cual es esencial para revelar los complicados mecanismos de los sistemas de múltiples componentes. Informamos los detalles de un método smFRET basado en el microscopio invertido Nikon Ti2 para sondear la dinámica de los ribosomas entre la proteína ribosómica L27 y los ARNt. El L27 está etiquetado en su posición única Cys 53 y reconstituido en un ribosoma que está diseñado para carecer de L27. El ARNt está etiquetado en la región del codo. A medida que el ARNt se mueve a diferentes ubicaciones dentro del ribosoma durante el ciclo de elongación, como la pre y post-translocación, las eficiencias y dinámicas de FRET exhiben diferencias, lo que ha sugerido múltiples subpoblaciones. Estas subpoblaciones no son detectables por métodos de conjunto. El microscopio smFRET basado en TIRF está construido sobre un microscopio invertido manual o motorizado, con iluminación láser casera. Las muestras de ribosomas se purifican mediante ultracentrifugación, se cargan en una célula de muestra multicanal construida en casa y luego se iluminan a través de un campo láser evanescente. El punto láser de reflexión se puede utilizar para lograr el control de retroalimentación del enfoque perfecto. Las señales de fluorescencia están separadas por una torreta de filtro motorizada y recogidas por dos cámaras CMOS digitales. Las intensidades se recuperan a través del software NIS-Elements.

Introducción

El ribosoma es un complejo de ribonucleoproteína grande de ø 20 nm de una subunidad grande (50S) y una pequeña (30S). Ensambla péptidos largos a lo largo de la plantilla de ARNm de manera procesiva y cooperativa. El ribosoma 30S se une al fMet-tRNAfMet y al ARNm para iniciar la síntesis de proteínas, y el 50S luego se une para formar el complejo de iniciación 70S. Los ARNt llevan aminoácidos al ribosoma en el sitio A (sitio de unión aminoacil-ARNt), mientras que la cadena peptidilada alargada se mantiene en el sitio P (sitio de unión peptidil-ARNt). En el complejo de pre-translocación, la cadena de peptidil se transfiere al ARNt en el sitio A con un aminoác....

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Protocolo

1. Preparación de ribosoma y ARNt etiquetados para la detección de FRET

  1. Aislar ribosoma sin L27 de la cepa de E. coli IW312 según protocolos estándar20,21. Extraiga el ribosoma regular de la cepa MRE600 de E. coli.
  2. Clonar el gen rpmA de L27 con C-terminal His-tag en plásmido pET-21b (+), que se transforma y se expresa en células BL21(DE3)pLysS15. Purificar la proteína a través de una columna de sefalrosa preenvasada.
  3. Etiquetado de L27
    1. Incubar 20-100 μM de L27 purificado en 100 μL con un exceso de 2-10 veces de TCEP (Tris-2-carboxie....

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Resultados

El smFRET tenía el ribosoma etiquetado en la posición media del tráfico de ARNt, para distinguir la translocación del ARNt del sitio A- al P (Figura 1)15. La distancia desde el residuo de etiquetado L27 hasta el ARNt del sitio A o P es de 52 o 61 Å, respectivamente, lo que corresponde a una eficiencia FRET de 0,47 y 0,65. Después de la recolección de imágenes, las intensidades de fluorescencia de los canales donante y aceptor se recuperaron y trazaron como lapsos de t.......

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Discusión

SmFRET es sensible a las señales de fondo. Primero, es necesario recubrir la cámara de muestra con una interpolación al 0,05% y luego agregarse simultáneamente con la solución de ribosoma para bloquear la unión no específica del ribosoma a la superficie. Para ver la fluorescencia de la emisión de Cy5 aceptor, el cóctel eliminador de oxígeno (soluciones deoxy, glucosa y Trolox) es esencial. Sin esta solución, el blanqueo es demasiado rápido en el canal aceptor para obtener información útil. Otro paso crítico para los expe.......

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Divulgaciones

Y. Wang declara que no hay conflictos de intereses.

Agradecimientos

Este trabajo cuenta con el apoyo de los Institutos Nacionales de Salud de los Estados Unidos (R01GM111452) y la Fundación Welch (E-1721).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
AminosilanoLaysanbioMPEG-SIL-5000
Biotina-PEGLaysanbioBiotina-PEG-SVA-5000
BL21(DE3)pLysS célulasNovagen71403
Catalasamillipore sigmaC3515
CS150FNX Micro Ultracentrífuganuaire
Cy3/C5-maleimidaApexBioA8138/A8140
Microscopio invertido ECLIPSE Ti2Nikon
EdgeGARD Campana de flujo laminarBaker
Glucosa oxidasamillipore sigmaG2133
Columna Histrap HP (columna de sefarosa preempaquetada)Cytiva17524701
cubreobjetos de microscopioVWR48393-230
Portaobjetos de vidrio para microscopioVWR470235-792
ORCA-Flash4.0 V3 cámaraHamamatsu
PEG (5.000)LaysanbioMPEG-SVA-5000
pET-21b (+) plásmidoNovagen69741
SonicatorVWRCPX-952-518R
TCEPApexbioB6055
TroloxMillipore Sigma238813

Referencias

  1. Ramakrishnan, V. What we have learned from ribosome structures. Biochemical Society Transactions. 36, Pt 4 567-574 (2008).
  2. Frank, J., Agrawal, R. K. A ratchet-like inter-subunit reorganization of the ribosome during translocation. Nature. 406 (6793....

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

FRET de mol cula nicadin mica del ribosomamovimiento del tRNAmicroscop a TIRFpurificaci n por ultracentrifugaci nmarcado de la prote na L27inhibici n por antibi ticosim genes de lapso de tiempo