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Artículo de método

Un método escalable para estudiar la supervivencia neuronal en cultivo neuronal primario con resolución unicelular y en tiempo real

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DOI:

10.3791/62759

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26 de julio de 2021

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* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Aquí, presentamos una metodología simple, potente y versátil para investigar la supervivencia neuronal ante el estrés citotóxico en neuronas corticales primarias con resolución celular en tiempo real o en material fijo.

Resumen

La pérdida neuronal está en el centro de muchas neuropatologías, como los accidentes cerebrovasculares, la enfermedad de Alzheimer y la enfermedad de Parkinson. Se desarrollaron diferentes métodos para estudiar el proceso de supervivencia neuronal ante el estrés citotóxico. La mayoría de los métodos se basan en enfoques bioquímicos que no permiten la resolución de una sola célula o implican metodologías complejas y costosas. Aquí se presenta un paradigma experimental versátil, barato y eficaz para estudiar la supervivencia neuronal. Este método aprovecha el escaso marcaje fluorescente de las neuronas seguido de imágenes en vivo y cuantificación automatizada. Con este fin, las neuronas se electroporan para expresar marcadores fluorescentes y se cocultivan con neuronas no electroporadas para regular fácilmente la densidad celular y aumentar la supervivencia.

El etiquetado disperso por electroporación permite una cuantificación automatizada sencilla y robusta. Además, el marcaje fluorescente puede combinarse con la coexpresión de un gen de interés para estudiar vías moleculares específicas. Aquí, presentamos un modelo de accidente cerebrovascular como modelo neurotóxico, a saber, el ensayo de privación de oxígeno-glucosa (OGD), que se realizó en una cámara hipóxica casera asequible y robusta. Por último, se describen dos flujos de trabajo diferentes utilizando IN Cell Analyzer 2200 o el ImageJ de código abierto para el análisis de imágenes para el procesamiento semiautomático de datos. Este flujo de trabajo puede adaptarse fácilmente a diferentes modelos experimentales de toxicidad y ampliarse para un cribado de alto rendimiento. En conclusión, el protocolo descrito proporciona un modelo in vitro de neurotoxicidad accesible, asequible y eficaz, que puede ser adecuado para probar las funciones de genes y vías específicas en imágenes en vivo y para el cribado de fármacos de alto rendimiento.

Introducción

El estudio de los trastornos neuronales requiere modelos experimentales que sean susceptibles de análisis genéticos, moleculares y celulares. Las neuronas corticales primarias son un modelo muy potente para estudiar la supervivencia neuronal y la toxicidad 1,2,3,4. En las condiciones adecuadas, las neuronas primarias desarrollarán progresivamente contactos sinápticos y presentarán características distintivas de neuronas maduras. Por lo tanto, este modelo es más fiable que las líneas celulares inmortalizadas....

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Protocolo

Todos los procedimientos con animales deben ser supervisados por el comité de bioética animal del instituto y realizarse de acuerdo con las regulaciones locales. Los procedimientos aquí presentados fueron aprobados por la autoridad delegada y cumplen con la normativa vigente en España y Europa.

1. Cultivo neuronal primario

NOTA: Todos los pasos se realizan dentro de la campana de cultivo, utilizando materiales y soluciones estériles para mantener las condiciones estériles.

  1. Recubrimiento de poli-L-lisina (PLL)
    1. Lave los cubreobjetos (CV, 15 mm) con etanol al 7....

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Resultados

Este protocolo tiene como objetivo establecer un modelo in vitro de ictus. Es importante obtener una densidad neuronal adecuada, que permitirá el reconocimiento de neuronas individuales electroporadas para analizarlas individualmente. La etapa del cultivo neuronal después de la siembra también es crucial. La maduración de las neuronas en cultivo es progresiva. La dependencia de los factores de crecimiento, el crecimiento de neuritas, la conectividad y la actividad electrofisiológica variarán mucho según la etapa.......

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Discusión

Este protocolo muestra una forma eficaz de modelar un ictus in vitro. Para lograr este objetivo, propusimos el marcaje disperso de las neuronas corticales utilizando el sistema de electroporación NEPA215. Se trata de un sistema abierto que permite la personalización del protocolo con un coste operativo mínimo en comparación con otros sistemas que emplean kits o dispositivos específicos. El cultivo mixto de neuronas naïve y electroporadas permite una mayor.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.

Agradecimientos

Nos gustaría agradecer a Carlos Dotti por compartir su experiencia en cultura neuronal. También agradecemos a Alicia Martínez-Romero del Cytomics Core Facility del Centro de Investigación Príncipe Felipe (CIPF), que cuenta con el apoyo de la financiación europea FEDERER. El proyecto cuenta con el apoyo del Ministerio de Economía y Competitividad de España para los reactivos (SAF2017-89020-R), materiales y los salarios de YDC y PF. PF también cuenta con el apoyo de la subvención RyC-2014-16410. CGN y PF cuentan con el apoyo de la Conselleria de Sanitat de la Generalitat Valenciana, así como de la Junta General de Accionistas (ACIF/2019....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Placas de Petri de 10 cmFISHER SCIENTIFIC, S.L.1130-9283
Placas de Petri de 3,5 cmSterilin
Matraz de 75 cm2Corning430641U
B-27Life Technologies17504-044
Placas de cultivo celularIncorporación de Corning Costar®3513
Incubadora de célulasThermo Electron CorporationModelo 371
Colador de células 70 µ mFalcon352350
Luces fríasSchott223488KL 1500
Fundas LCD (15 mm)Marienfeld111530
CU500 Cámara de CubetaNepa Gene
CU600 Soporte de soporte para cubetasNepa Gene
DAPISigma-Aldrich Quimica, S. L.D9542-10MG1:2000
DMSOPanreacA3672
Pinzas finas DumontFST11254-20
Pinzas finas DumontFST11252-00
EC-002S Cubetas de electroporación NEPA, espacio de 2 mmNepa
Falcon352350
Tijeras finas-afiladas-romasFST14028-10
Tijeras finas-ToughCut rFST14058-09
GFP pollo IgYAves LabsGFP-10101:600
GlucosaSigma68769-100ml
GlutaMAX-I Suplemento 200 mM 100 mLFisher Scientific35050-061
HBSSThermofisher14175-095https://www.thermofisher.com/es/es/home/technical-resources/media-formulation.156.html
Hepes 1 MThermoFisher15630-080
Suero de caballoInvitrogen26050088
MEMThermofisher11095080https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/11095080#/11095080
portaobjetos de microscopio (polilisina)VWR631-0107Dimensión: 25 x 75 x 1 mm
Mowiol 4-88Sigma-Aldrich Química, S. L.81381-250G
Agujas amarillas, calibre 30BD Microlance™ 3304000
NEPA21 electroporadorNepa Gene
Neubauer cámaraBlau Marca 717805
NeurobasalMedio ThermoFisher21103-49
Opti-MEMInvitrogen31985-062
ParafilmCole-ParmerPM996
Paraformaldehído (PFA), 95%Sigma-Aldrich Química, S. L.158127-500GSolución de uso: 4%
PEIPolysciences23966-1
Plásmido para GFPpCMV-GFP-ires-Cre, descrito en Fazzari et al., Nature, 2010
Poly-L-LysineSIGMAP2636
PS ( Penicilina, Estreptomicina)ThermoFisher15140122
Pinzas de sierraFST11152-10
Microscopio estereoscópicoWORLD PRECISION INSTRUMENTS
JeringasBD Plastipak 1ml303176
Triton X-100Sigma-Aldrich Quimica, S. L.Número MDL: MFCD00128254
Tripsina-EDTAThermoFisher
Tubos 15 mLFisher05-539-4
Tubos 50 mLVWR21008-242
Tupperware--Tupper hermético con tapa de rosca. SP Berner - Taper 1 L Redondo con Rosca. Cualquier Tupperware hermético equivalente se puede comprar en cualquier supermercado.
Baño de aguaSHELDON LABORATORY MODELO 12241641951
Colador de filtro genético no iónica 25300054

Referencias

  1. Salazar, I. L., Mele, M., Caldeira, M., Costa, R. O., Correia, B., Frisari, S., Duarte, C. B. Preparation of primary cultures of embryonic rat hippocampal and cerebrocortical neurons. Bio-protocol. 7 (18), 2551(2017).
  2. Kaech, S., Banker, G. Culturing hippocampal neurons. Nature Protocols<....

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