Aquí, presentamos una metodología simple, potente y versátil para investigar la supervivencia neuronal ante el estrés citotóxico en neuronas corticales primarias con resolución celular en tiempo real o en material fijo.
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Artículo de método
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Aquí, presentamos una metodología simple, potente y versátil para investigar la supervivencia neuronal ante el estrés citotóxico en neuronas corticales primarias con resolución celular en tiempo real o en material fijo.
La pérdida neuronal está en el centro de muchas neuropatologías, como los accidentes cerebrovasculares, la enfermedad de Alzheimer y la enfermedad de Parkinson. Se desarrollaron diferentes métodos para estudiar el proceso de supervivencia neuronal ante el estrés citotóxico. La mayoría de los métodos se basan en enfoques bioquímicos que no permiten la resolución de una sola célula o implican metodologías complejas y costosas. Aquí se presenta un paradigma experimental versátil, barato y eficaz para estudiar la supervivencia neuronal. Este método aprovecha el escaso marcaje fluorescente de las neuronas seguido de imágenes en vivo y cuantificación automatizada. Con este fin, las neuronas se electroporan para expresar marcadores fluorescentes y se cocultivan con neuronas no electroporadas para regular fácilmente la densidad celular y aumentar la supervivencia.
El etiquetado disperso por electroporación permite una cuantificación automatizada sencilla y robusta. Además, el marcaje fluorescente puede combinarse con la coexpresión de un gen de interés para estudiar vías moleculares específicas. Aquí, presentamos un modelo de accidente cerebrovascular como modelo neurotóxico, a saber, el ensayo de privación de oxígeno-glucosa (OGD), que se realizó en una cámara hipóxica casera asequible y robusta. Por último, se describen dos flujos de trabajo diferentes utilizando IN Cell Analyzer 2200 o el ImageJ de código abierto para el análisis de imágenes para el procesamiento semiautomático de datos. Este flujo de trabajo puede adaptarse fácilmente a diferentes modelos experimentales de toxicidad y ampliarse para un cribado de alto rendimiento. En conclusión, el protocolo descrito proporciona un modelo in vitro de neurotoxicidad accesible, asequible y eficaz, que puede ser adecuado para probar las funciones de genes y vías específicas en imágenes en vivo y para el cribado de fármacos de alto rendimiento.
El estudio de los trastornos neuronales requiere modelos experimentales que sean susceptibles de análisis genéticos, moleculares y celulares. Las neuronas corticales primarias son un modelo muy potente para estudiar la supervivencia neuronal y la toxicidad 1,2,3,4. En las condiciones adecuadas, las neuronas primarias desarrollarán progresivamente contactos sinápticos y presentarán características distintivas de neuronas maduras. Por lo tanto, este modelo es más fiable que las líneas celulares inmortalizadas....
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Todos los procedimientos con animales deben ser supervisados por el comité de bioética animal del instituto y realizarse de acuerdo con las regulaciones locales. Los procedimientos aquí presentados fueron aprobados por la autoridad delegada y cumplen con la normativa vigente en España y Europa.
1. Cultivo neuronal primario
NOTA: Todos los pasos se realizan dentro de la campana de cultivo, utilizando materiales y soluciones estériles para mantener las condiciones estériles.
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Este protocolo tiene como objetivo establecer un modelo in vitro de ictus. Es importante obtener una densidad neuronal adecuada, que permitirá el reconocimiento de neuronas individuales electroporadas para analizarlas individualmente. La etapa del cultivo neuronal después de la siembra también es crucial. La maduración de las neuronas en cultivo es progresiva. La dependencia de los factores de crecimiento, el crecimiento de neuritas, la conectividad y la actividad electrofisiológica variarán mucho según la etapa.......
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Este protocolo muestra una forma eficaz de modelar un ictus in vitro. Para lograr este objetivo, propusimos el marcaje disperso de las neuronas corticales utilizando el sistema de electroporación NEPA215. Se trata de un sistema abierto que permite la personalización del protocolo con un coste operativo mínimo en comparación con otros sistemas que emplean kits o dispositivos específicos. El cultivo mixto de neuronas naïve y electroporadas permite una mayor.......
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Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.
Nos gustaría agradecer a Carlos Dotti por compartir su experiencia en cultura neuronal. También agradecemos a Alicia Martínez-Romero del Cytomics Core Facility del Centro de Investigación Príncipe Felipe (CIPF), que cuenta con el apoyo de la financiación europea FEDERER. El proyecto cuenta con el apoyo del Ministerio de Economía y Competitividad de España para los reactivos (SAF2017-89020-R), materiales y los salarios de YDC y PF. PF también cuenta con el apoyo de la subvención RyC-2014-16410. CGN y PF cuentan con el apoyo de la Conselleria de Sanitat de la Generalitat Valenciana, así como de la Junta General de Accionistas (ACIF/2019....
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Placas de Petri de 10 cm | FISHER SCIENTIFIC, S.L. | 1130-9283 | |
| Placas de Petri de 3,5 cm | Sterilin | ||
| Matraz de 75 cm2 | Corning | 430641U | |
| B-27 | Life Technologies | 17504-044 | |
| Placas de cultivo celular | Incorporación de Corning Costar® | 3513 | |
| Incubadora de células | Thermo Electron Corporation | Modelo 371 | |
| Colador de células 70 µ m | Falcon | 352350 | |
| Luces frías | Schott | 223488 | KL 1500 |
| Fundas LCD (15 mm) | Marienfeld | 111530 | |
| CU500 Cámara de Cubeta | Nepa Gene | ||
| CU600 Soporte de soporte para cubetas | Nepa Gene | ||
| DAPI | Sigma-Aldrich Quimica, S. L. | D9542-10MG | 1:2000 |
| DMSO | Panreac | A3672 | |
| Pinzas finas Dumont | FST | 11254-20 | |
| Pinzas finas Dumont | FST | 11252-00 | |
| EC-002S Cubetas de electroporación NEPA, espacio de 2 mm | Nepa | ||
| Falcon | 352350 | ||
| Tijeras finas-afiladas-romas | FST | 14028-10 | |
| Tijeras finas-ToughCut r | FST | 14058-09 | |
| GFP pollo IgY | Aves Labs | GFP-1010 | 1:600 |
| Glucosa | Sigma | 68769-100ml | |
| GlutaMAX-I Suplemento 200 mM 100 mL | Fisher Scientific | 35050-061 | |
| HBSS | Thermofisher | 14175-095 | https://www.thermofisher.com/es/es/home/technical-resources/media-formulation.156.html |
| Hepes 1 M | ThermoFisher | 15630-080 | |
| Suero de caballo | Invitrogen | 26050088 | |
| MEM | Thermofisher | 11095080 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/11095080#/11095080 |
| portaobjetos de microscopio (polilisina) | VWR | 631-0107 | Dimensión: 25 x 75 x 1 mm |
| Mowiol 4-88 | Sigma-Aldrich Química, S. L. | 81381-250G | |
| Agujas amarillas, calibre 30 | BD Microlance™ 3 | 304000 | |
| NEPA21 electroporador | Nepa Gene | ||
| Neubauer cámara | Blau Marca 717805 | ||
| Neurobasal | Medio ThermoFisher | 21103-49 | |
| Opti-MEM | Invitrogen | 31985-062 | |
| Parafilm | Cole-Parmer | PM996 | |
| Paraformaldehído (PFA), 95% | Sigma-Aldrich Química, S. L. | 158127-500G | Solución de uso: 4% |
| PEI | Polysciences | 23966-1 | |
| Plásmido para GFP | pCMV-GFP-ires-Cre, descrito en Fazzari et al., Nature, 2010 | ||
| Poly-L-Lysine | SIGMA | P2636 | |
| PS ( Penicilina, Estreptomicina) | ThermoFisher | 15140122 | |
| Pinzas de sierra | FST | 11152-10 | |
| Microscopio estereoscópico | WORLD PRECISION INSTRUMENTS | ||
| Jeringas | BD Plastipak 1ml | 303176 | |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich Quimica, S. L. | Número MDL: MFCD00128254 | |
| Tripsina-EDTA | ThermoFisher | ||
| Tubos 15 mL | Fisher | 05-539-4 | |
| Tubos 50 mL | VWR | 21008-242 | |
| Tupperware | - | - | Tupper hermético con tapa de rosca. SP Berner - Taper 1 L Redondo con Rosca. Cualquier Tupperware hermético equivalente se puede comprar en cualquier supermercado. |
| Baño de agua | SHELDON LABORATORY MODELO 1224 | 1641951 |
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