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Artículo de método

Métodos espectrofotométricos para el estudio del metabolismo del glucógeno eucariota

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DOI:

10.3791/63046

19 de agosto de 2021

En este artículo

Resumen

Se presentan técnicas para medir la actividad de enzimas clave del metabolismo del glucógeno, utilizando un espectrofotómetro simple que opera en el rango visible.

Resumen

El glucógeno se sintetiza como una forma de almacenamiento de glucosa por una amplia gama de organismos, que van desde bacterias hasta animales. La molécula comprende cadenas lineales de residuos de glucosa ligados a α1,4 con ramas introducidas mediante la adición de enlaces α1,6. Comprender cómo se regulan la síntesis y la degradación del glucógeno y cómo el glucógeno alcanza su estructura ramificada característica requiere el estudio de las enzimas de almacenamiento de glucógeno. Sin embargo, los métodos más comúnmente utilizados para estudiar estas actividades enzimáticas suelen emplear reactivos o técnicas que no están disponibles para todos los investigadores. Aquí, discutimos una batería de procedimientos que son técnicamente simples, rentables y, sin embargo, capaces de proporcionar información valiosa sobre el control del almacenamiento de glucógeno. Las técnicas requieren acceso a un espectrofotómetro, que opera en el rango de 330 a 800 nm, y se describen asumiendo que los usuarios emplearán cubetas de plástico desechables. Sin embargo, los procedimientos son fácilmente escalables y pueden modificarse para su uso en un lector de microplacas, lo que permite un análisis altamente paralelo.

Introducción

El glucógeno está ampliamente distribuido en la naturaleza, y el compuesto se encuentra en bacterias, muchos protistas, hongos y animales. En los microorganismos, el glucógeno es importante para la supervivencia celular cuando los nutrientes son limitantes y, en organismos superiores como los mamíferos, la síntesis y degradación del glucógeno sirven para amortiguar los niveles de glucosa en sangre 1,2,3. El estudio del metabolismo del glucógeno es, por lo tanto, de importancia para campos tan diversos como la microbiología y la fisiología de los mamíferos. Comprender el metab....

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Protocolo

1. Determinación de la actividad de la glucógeno sintasa

  1. Preparar soluciones madre de los reactivos necesarios como se indica en la Tabla 1 (antes del día experimental).
ComponenteIndicaciones
50 mM Tris pH 8.0Disuelva 0,61 g de base de Tris en ~ 80 ml de agua.  Enfriar a 4 °C.   Ajuste el pH a 8.0 con HCl y haga que el volumen sea de hasta 100 mL con agua.
Búfer HEPES de 20 mMDisol....

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Resultados

Determinación de la actividad de la glucógeno sintasa
La Figura 1 muestra resultados representativos de ensayos de glucógeno sintasa utilizando enzimas purificadas. En el panel A, después de un ligero retraso, hubo una disminución lineal en la absorción a 340 nm con el tiempo durante un período de alrededor de 12 minutos. La tasa de cambio en la absorción en la Figura 1A fue ~0.12 unidades de absorbancia/min. Una tasa de cambio en la absorban.......

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Discusión

En general, las ventajas clave de todos los métodos presentados son su bajo costo, facilidad, velocidad y falta de dependencia de equipos especializados. La principal desventaja que todos comparten es la sensibilidad en comparación con otros métodos disponibles. La sensibilidad de los procedimientos que implican la producción o el consumo de NADH/NADPH es fácil de estimar. Dado que el coeficiente de extinción de NADH/NADPH es 6.22 M-1 cm-1 , la aritmética simple indica que ~ 10-20 μM cambios en la c.......

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Divulgaciones

No hay conflictos de intereses conocidos asociados con este trabajo y no ha habido apoyo financiero para este trabajo que podría haber influido en su resultado.

Agradecimientos

El autor desea agradecer a Karoline Dittmer y Andrew Brittingham por sus ideas y muchas discusiones útiles. Este trabajo fue apoyado en parte por subvenciones del Fondo de Educación e Investigación Osteopática de Iowa (IOER 03-17-05 y 03-20-04).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Amilopectina (libre de amilosa) de maíz cerosoFisher ScientificA0456
AmilosaBiosynth Carbosynth YA10257
ATP, sal disódicaMilliporeSigmaA3377
D-Glucosa-1,6-bisfosfato, sal de potasioMilliporeSigmaG6893
D-glucosa-6-fosfato, sal sódicaMilliporeSigmaG7879
Glucosa-6-fosfato deshidrogenasa, Grado I, de levaduraMilliporeSigma10127655001
Glucógeno, Tipo II de ostraMilliporeSigmaG8751
HexoquinasaMilliporeSigma11426362001
Cubetas de metacrilato, 1,5 mLFisher Scientific14-955-128Se requiere metacrilato ya que algunos procedimientos son conducido a 340 nm o menos
β-Nicotinamida adenina dinucleótido fosfato sodiosal MilliporeSigmaN0505
β-nicotinamida adenina dinucleótido, sal disódica reducidaMilliporeSigma43420
Nucleósido 5'-difosfato quinasaMilliporeSigmaN0379
Fosfoenolpiruvato, salmonopotásicaMilliporeSigmaP7127
Fosfoglucomutasa del músculo de conejoMilliporeSigmaP3397
Fosforilasa A del músculo de conejoMilliporeSigmaP1261
Piruvato quinasa/enzimas lácticas deshidrogenasas del músculo de conejoMilliporeSigmaP0294
UDP-glucosa, sal disódicaMilliporeSigmaU4625

Referencias

  1. Wilson, W. A., et al. Regulation of glycogen metabolism in yeast and bacteria. FEMS Microbiology Reviews. 34 (6), 952-985 (2010).
  2. Ralton, J. E., Sernee, M. F., McConville, M. J. Evolution and function of carbohydrate reserve biosynthesis in parasiti....

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