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Artículo de método

Un enfoque no secuenciador para la detección rápida de la edición de ARN

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DOI:

10.3791/63591

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21 de abril de 2022

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En este artículo

Resumen

La detección rápida y la cuantificación confiable de los eventos de edición de ARN a escala genómica siguen siendo un desafío y actualmente dependen de métodos de secuenciación directa de ARN. El protocolo descrito aquí utiliza la electroforesis en gel de gradiente de microtemperatura (μTGGE) como un método simple, rápido y portátil para detectar la edición de ARN.

Resumen

La edición de ARN es un proceso que conduce a alteraciones de la secuencia posttranscripcional en los ARN. La detección y cuantificación de la edición de ARN se basa principalmente en la secuenciación de Sanger y las técnicas de secuenciación de ARN. Sin embargo, estos métodos pueden ser costosos y llevar mucho tiempo. En este protocolo, se utiliza un sistema portátil de electroforesis en gel de gradiente de microtemperatura (μTGGE) como un enfoque no secuenciador para la detección rápida de la edición de ARN. El proceso se basa en el principio de electroforesis, que utiliza altas temperaturas para desnaturalizar muestras de ácido nucleico a medida que se mueven a través de un gel de poliacrilamida. A través de un rango de temperaturas, un fragmento de ADN forma un gradiente de ADN de doble cadena a hebras parcialmente separadas y luego a ADN de cadena simple completamente separado. Los sitios editados por ARN con distintas bases de nucleótidos producen diferentes perfiles de fusión en los análisis de μTGGE. Utilizamos el enfoque basado en μTGGE para caracterizar las diferencias entre los perfiles de fusión de cuatro fragmentos de ARN editados y sus correspondientes fragmentos no editados (tipo salvaje). Las puntuaciones de similitud de patrones (PaSS) se calcularon comparando los patrones de banda producidos por los ARN editados y no editados y se utilizaron para evaluar la reproducibilidad del método. En general, la plataforma descrita aquí permite la detección de mutaciones incluso de base única en ARN de una manera directa, simple y rentable. Se prevé que esta herramienta de análisis ayudará a nuevos hallazgos de biología molecular.

Introducción

Las variantes de nucleótido único (SNV) en el ARN genómico, incluidas las variantes de A a I, C a U y U a C, pueden indicar eventos de edición de ARN. Sin embargo, la detección de SNVs en el ARN sigue siendo una tarea técnicamente desafiante. Convencionalmente, la proporción de ARN editado a no editado se determina mediante secuenciación directa, reacción en cadena de la polimerasa (PCR) en tiempo real específica del alelo o cromatografía líquida de alto rendimiento (HPLC) de desnaturalización 1,2,3,4,5,6.<....

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Protocolo

1. Optimización del fragmento objetivo

NOTA: Se utilizaron cuatro genes editados en el desarrollo de este protocolo, incluidos dos genes nucleares (AT2G16586 y AT5G02670) de A. thaliana, y los genes que codifican la proteína fluorescente azul (BFP) y la proteína fluorescente verde mejorada (EGFP) expresadas en células HEK293.

  1. Para identificar fragmentos de genes con diferentes perfiles de fusión, que representan regiones editadas versus no editadas, genere curvas de fusión predichas utilizando la herramienta basada en la web uMelt HETS, una extensión del software original uMelt13.<....

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Resultados

Uso de μTGGE para identificar cambios en la base de un solo nucleótido en eventos de edición de ARN
Para este protocolo se utilizaron cuatro genes editados (Tabla 1), incluyendo el gen BFP producido en células HEK293 (con edición de ARN C-to-U por las enzimas desaminasas del complejo enzimático de edición de ARNm de apolipoproteína B; APOBEC115), el gen EGFP que contiene el codón de parada ocre (TAA) producido en células HEK293 (con edición de ARN A-to-I por ad.......

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Discusión

La edición de ARN juega un papel importante en la biología; sin embargo, los métodos actuales de detección de edición de ARN, como la cromatografía y la secuenciación, presentan varios desafíos debido a su alto costo, requisitos de tiempo excesivos y complejidad. El protocolo descrito aquí es un método simple, rápido y rentable para detectar la edición de ARN que utiliza un sistema portátil, de tamaño micrométrico y basado en TGGE. Este sistema se puede utilizar para diferenciar entre genes editados y no editados antes d.......

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Divulgaciones

Los autores declaran que no hay conflictos de intereses.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por una subvención para la investigación científica de la Sociedad Japonesa para la Promoción de la Ciencia (17H02204 y 18K19288). Ruchika fue apoyada financieramente por el gobierno japonés (beca MEXT). Agradecemos a la Sra. Radhika Biyani (Laboratorio Takagi, JAIST) y al Dr. Kirti Sharma (BioSeeds Corporation) por su ayuda con los experimentos relacionados con la electroforesis.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
2U ExoITakara2650AExonucleasa I
40(p/v)%-acrilamida/bis (19:1)ThermofisherAM9022
Persulfato de amonio (APS)Thermo Fisher17874
Centrifuga Mini spineppendorf5452000034
Baño seco/calefactor digital de bloqueThermofisherNA
Mezcla maestra de polimerasa Gold TaqPromegaM7122
ADN polimerasa LATaqTAKARARR002ATaq polimerasa
micro-TGGE  Soporte para casetesBioSeeds Corp.BS-GE-CH
Aparato micro-TGGELifetech Corp.TG
micro-TGGE gel cassetteBioSeeds Corp.BS-TGGE-C
NanoDrop 1000ThermofisherND-1000Espectrofotómetro
Kit Plant Rneasy MiniQiagen74904
ReverTra Ace Master MixTOYOBOTRT101M-MLV (Virus de la leucemia de Moloney Murina) transcriptasa inversa
Kit Rneasy MiniQiagen74104
Fosfatasa alcalina de gambasTakara2660B
Tinción en gel de ácido nucleico de oro SYBRThermofisherS11494
Búfer TBEThermofisherB52
Tetrametiletilediamina (TEMED)Tesque de Nacalai33401-72
Urea, nucleasa y proteasa analizadasTesque de Nacalai35940-65

Referencias

  1. Chateigner-Boutin, A. L., Small, I. A rapid high-throughput method for the detection and quantification of RNA editing based on high-resolution melting of amplicons. Nucleic Acids Research. 35 (17), 114(2007).
  2. Chen, Y. C., et al.

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Reimpresiones y permisos

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