MALDI-TOF se utilizó para caracterizar fragmentos obtenidos de la reactividad entre el ARN oxidado y la exoribonucleasa Xrn-1. El presente protocolo describe una metodología que puede aplicarse a otros procesos que involucran ARN y/o ADN.
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Artículo de método
MALDI-TOF se utilizó para caracterizar fragmentos obtenidos de la reactividad entre el ARN oxidado y la exoribonucleasa Xrn-1. El presente protocolo describe una metodología que puede aplicarse a otros procesos que involucran ARN y/o ADN.
El ARN es un biopolímero presente en todos los dominios de la vida, y sus interacciones con otras moléculas y / o especies reactivas, por ejemplo, ADN, proteínas, iones, medicamentos y radicales libres, son omnipresentes. Como resultado, el ARN sufre varias reacciones que incluyen su escisión, degradación o modificación, lo que lleva a especies biológicamente relevantes con distintas funciones e implicaciones. Un ejemplo es la oxidación de la guanina a 7,8-dihidro-8-oxoguanina (8-oxoG), que puede ocurrir en presencia de especies reactivas de oxígeno (ROS). En general, los procedimientos que caracterizan tales productos y transformaciones son en gran medida valiosos para la comunidad científica. Con este fin, la espectrometría de masas de tiempo de vuelo por ionización por láser asistida por matriz (MALDI-TOF) es un método ampliamente utilizado. El presente protocolo describe cómo caracterizar los fragmentos de ARN formados después del tratamiento enzimático. El modelo elegido utiliza una reacción entre el ARN y la exoribonucleasa Xrn-1, donde la digestión enzimática se detiene en los sitios oxidados. Dos secuencias largas de ARN de 20 nucleótidos [5'-CAU GAA ACA A(8-oxoG)G CUA AAA GU] y [5'-CAU GAA ACA A(8-oxoG)(8-oxoG) CUA AAA GU] se obtuvieron mediante síntesis en fase sólida, cuantificadas por espectroscopia UV-vis, y caracterizadas mediante MALDI-TOF. Las hebras obtenidas fueron entonces (1) 5'-fosforiladas y caracterizadas vía MALDI-TOF; (2) tratado con Xrn-1; (3) filtrado y desalinizado; (4) analizado vía MALDI-TOF. Esta configuración experimental condujo a la identificación inequívoca de los fragmentos asociados con el estancamiento de Xrn-1: [5'-H2PO4-(8-oxoG)G CUA AAA GU], [5'-H2PO4-(8-oxoG)(8-oxoG) CUA AAA GU], y [5'-H2PO4-(8-oxoG) CUA AAA GU]. Los experimentos descritos se llevaron a cabo con 200 picomoles de ARN (20 pmol utilizados para los análisis MALDI); sin embargo, cantidades más bajas pueden resultar en picos detectables con espectrómetros que utilizan fuentes láser con más potencia que la utilizada en este trabajo. Es importante destacar que la metodología descrita puede generalizarse y potencialmente extenderse a la identificación de productos para otros procesos que involucran ARN y ADN, y puede ayudar en la caracterización / elucidación de otras vías bioquímicas.
MALDI-TOF 1,2,3 es una técnica ampliamente utilizada para la caracterización y/o detección de moléculas de diferentes tamaños y características. Algunos de sus usos incluyen diversas aplicaciones como la detección de taninos de recursos naturales4, la obtención de imágenes de metabolitos en alimentos5, el descubrimiento o monitoreo de dianas o marcadores celulares de fármacos6, y el diagnóstico clínico7, por nombrar algunos. De relevancia para el presente trabajo es el uso de MALDI....
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Para el presente estudio se utilizó agua ultrapura libre de RNasa (Tabla 1).
1. Determinación de la concentración de la solución de ARN
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Los oligonucleótidos utilizados en este trabajo fueron sintetizados, caracterizados y cuantificados antes de su uso. La concentración de todos los oligonucleótidos se determinó mediante espectroscopia UV-vis registrada a 90 °C para evitar lecturas erróneas derivadas de la posible formación de las estructuras secundarias. La Figura 3 muestra los espectros del modelo de oligonucleótidos de ARN utilizados en este trabajo, tomados a temperatura ambiente y después de aplicar calor.
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El principal desafío en este flujo de trabajo surgió entre la finalización de los experimentos y la realización de los análisis espectrométricos de masas. Los experimentos se llevaron a cabo y completaron en la Universidad de Colorado Denver y se enviaron (durante la noche) a las instalaciones de la Universidad Estatal de Colorado. La adquisición de datos se llevó a cabo en el momento de la recepción, según conveniencia. Varias circunstancias inesperadas llevaron a retrasos en el proceso. En un caso, el mal funcionamient.......
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Los autores no tienen nada que revelar.
Es importante señalar que este trabajo fue un esfuerzo de colaboración entre tres instituciones, dos grupos de investigación y una instalación central. La distribución y la carga de trabajo se llevaron a cabo de la siguiente manera: La expresión de proteínas (Xrn-1) se llevó a cabo en la Universidad de Denver (Denver, CO). La síntesis, cuantificación y experimentación de oligonucleótidos (principalmente degradación enzimática) se llevaron a cabo en la Universidad de Colorado Denver (Denver, CO). La optimización también se llevó a cabo allí. La detección, adquisición y análisis de MALDI-TOF se llevaron a cabo en la Instalación Básica de Recursos Analíticos de la Univer....
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| 0.6 mL MCT Graduado Violeta Fisher | Scientific | 05-408-127 | |
| 6'-Trihidroxiacetofenona monohidrato 98% | Sigma Aldrich | 480-66-0 | |
| Acetonitrilo 99.9%, grado HPLC | Fisher Scientific | 75-05-8 | |
| Trifosfato de adenosina, 10 mM | New Englang Bioscience | P0756S | |
| Citrato de amonio, dibásico 98% | Sigma Aldrich | 3012-65-5 | |
| Fluoruro de amonio 98.0%, grado ACS | Alfa Aesar | 12125-01-8 | |
| Estándar de prueba bacteriana Bruker | Bruker Daltonics | 8255343 | |
| Fuente comercial de Xrn-1 | New England BioLabs | M0338S | |
| Pirocarbonato de dietilo, 97 % | ACROS Organics | ||
| análisis Flex software | Bruker daltonics | FlexAnalysis versión 3.4, Bruker Daltonics | |
| Lambda 365 espectrofotómetro UV-vis | Perkin Elmer | ||
| Placa MALDI: MSP 96 blanco de acero rectificado | Bruker Daltonics | 280799 | |
| espectrómetro de masas | Bruker | Microflex LRFTOF (Bruker Daltonics, Billerica, MA) | |
| Mili-Q IQ 7000 | Se utilizó el sistema Milipore Sigma | A Mili-Q para purificar toda el agua utilizada en este trabajo | |
| Dispositivos centrífugos Nanosep con membrana OmegaTM 10 K, azul (24/paquete) | Pall Corporation | OD010C33 | , Omega (polietersulfona modificada) Tamaño de poro 10 K |
| NEBuffer 3 | New England Biolabs | B7003S | Esta es |
| la solución B Herramienta de análisis de oligo | IDT-DNA | https://www.idtdna.com/calc/analyzer | |
| Puntas de pipeta P10 | Fisher Scientific | 02-707-441 | |
| Puntas de pipeta P200 | Fisher Scientific | 02-707-419 | |
| RNasa Away | Molecular BioProducts | 7005-11 | |
| T4 Polinucleótido quinasa | Nueva Inglaterra BioLabs | M0201S | |
| T4 T4 Tampón de reacción de polinucleótido quinasa | Nuevo Inglaterra BioLabs | B0201S | Esta es la solución A |
| Ácido trifluoroacético | Alfa Aesar | 76-05-1 | |
| Xrn-1 exoribonucleasa | Expresado en casa | Ver ref. 20 | |
| Puntas de pipeta ZipTip para la preparación de muestras | Millipore | ZTC 18S 096 | 10 µ L puntas de pipeta cargadas con un estándar C18 0.6 y micro; Cama L |
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