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La microscopía de expansión de retención de etiquetas (LR-ExM) permite obtener imágenes de superresolución y etiquetado de alta eficiencia

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DOI:

10.3791/63793

11 de octubre de 2022

En este artículo

Resumen

Se demuestra un protocolo de microscopía de expansión de retención de etiquetas (LR-ExM). LR-ExM utiliza un novedoso conjunto de anclajes trifuncionales, que proporciona una mejor eficiencia de etiquetado en comparación con las microscopías de expansión introducidas anteriormente.

Resumen

La microscopía de expansión (ExM) es una técnica de preparación de muestras que se puede combinar con la mayoría de los métodos de microscopía óptica para aumentar la resolución. Después de incrustar células o tejidos en hidrogel hinchable, las muestras se pueden expandir físicamente de tres a dieciséis veces (dimensión lineal) en comparación con el tamaño original. Por lo tanto, la resolución efectiva de cualquier microscopio se incrementa por el factor de expansión. Una limitación importante del ExM introducido previamente es la reducción de la fluorescencia después de la polimerización y el procedimiento de digestión. Para superar esta limitación, se ha desarrollado la microscopía de expansión de retención de etiquetas (LR-ExM), que evita la pérdida de señal y mejora en gran medida la eficiencia del etiquetado utilizando un conjunto de nuevos anclajes trifuncionales. Esta técnica permite lograr una resolución más alta cuando se investigan estructuras celulares o subcelulares a escala nanométrica con una pérdida mínima de señal fluorescente. LR-ExM se puede utilizar no solo para el etiquetado de inmunofluorescencia, sino también con etiquetas de proteínas automarcantes, como las etiquetas SNAP y CLIP, logrando así una mayor eficiencia de etiquetado. Este trabajo presenta el procedimiento y la solución de problemas para este enfoque basado en la inmunotinción, así como la discusión de los enfoques de etiquetado automático de LR-ExM como alternativa.

Introducción

La microscopía de expansión (ExM) ha sido utilizada por los investigadores desde que se introdujo por primera vez como un enfoque conveniente para lograr imágenes de súper resolución con microscopios convencionales, como los microscopios de epifluorescencia y confocales 1,2,3,4,5,6,7 . Usando ExM, es posible lograr una resolución lateral de ~70 nm incluso con microscopios confocales regulares. Cuando ExM se combina con imágenes de súper ....

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Protocolo

1. Cultivo celular

  1. Utilice células U2OS cultivadas en medio 5A de McCoy suplementado con 10% de FBS a 37 °C en 5% deCO2.
  2. Cultive las células en un vidrio de cubierta con cámara extraíble de 16 pozos (área de cultivo de 0,4 cm2) para facilitar su manejo.

2. Fijación y permeabilización

NOTA: Las condiciones de fijación y permeabilización dependen de los protocolos optimizados de inmunotinción. El siguiente es un protocolo de fijación y permeabilización para la co-inmunotinción de microtúbulos y fosas recubiertas de clatrina (CCP).

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Resultados

Los hoyos recubiertos de clotrina (CCP) se inmunotiñen utilizando anclajes trifuncionales (Figura 1B) y LR-ExM se realiza como se describe en la Figura 1A. LR-ExM (Figura 2C,E) muestra una intensidad de fluorescencia mucho mayor en comparación con la microscopía de expansión de retención de proteínas (proExM, Figura 2A) o la biotina-ExM (Figura 2B); la seña.......

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Discusión

La innovación clave de LR-ExM es utilizar anclajes trifuncionales para etiquetar eficazmente las proteínas diana y mejorar la calidad de imagen. Este método está limitado por anclajes trifuncionales, que no están tan fácilmente disponibles para los investigadores. Sin embargo, los anclajes trifuncionales se pueden compartir con otros investigadores a pedido, y productos similares como las sondas ExM de Chrometa ahora también están disponibles comercialmente.

En este protocolo, se ha realizado .......

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Divulgaciones

Los autores declaran no tener conflictos de intereses.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por los Institutos Nacionales de Salud de los Estados Unidos (R00 GM126136 a X.S.), la Fundación Nacional de Ciencias de los Estados Unidos (DMS1763272 a S.P.) y la Fundación Simons (594598 a S.P.).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Acrilamida Sigma A9099 Gel ExM
AffiniPure Donkey Anti-Rabbit IgGJackson ImmunoResearchH+L, 711– 005-152Anticuerpo
AffiniPure Donkey Anti-Rat IgGJackson ImmunoResearchH + L, 712 – 005-153Anticuerpo
Alexa Fluor 488-EstreptavidinaJackson ImmunoResearch016-540-084Sondas fluorescentes 
Alexa Fluor 594 EstreptavidinaJackson ImmunoResearch016-580-084Sondas fluorescentes 
Alexa Fluor 647 EstreptavidinaJackson ImmunoResearch016-600-084Sondas fluorescentes 
Persulfato de amonio Sigma A3678 Gel ExM
anti-H3K4me3Abcamab8580Anticuerpo
anti-H3K9me3Abcamab176916Anticuerpo
DAPI dilacetatoThermofisher ScientificD3571Sondas fluorescentes 
DyLight 488 Etiquetado con Anti-Digoxigenina/Digoxina (DIG)Vector LaboratoriesDI-7488Sondas fluorescentes 
DyLight 594 Etiquetado con anti-digoxigenina/digoxina (DIG)Vector LaboratoriesDI-7594Sondas fluorescentes 
EGTAEMD Millipore Corp.324626-25GMTampón de fijación
Ácido etilendiaminotetraacético Sigma Tampón de digestiónEDTA
Glutaraldehído 10% Grado EMMicroscopía electrónica Ciencias50-262-13Anclaje
Grace Bio-Labs CultureCubreobjetos con cámara extraíbleGrace Bio-Labs GBL112358-8EA Cámara decultivo celular
Grace Bio-Labs Herramienta de eliminación CultureWellGrace Bio-Labs GBL103259Herramienta de eliminación
Guanidina HCl Sigma G3272 Tampón de digestión
Cloruro de magnesioSigmaM8266-1KGTampón
de fijación McCoy's 5aATCC30– 2007Medio de cultivo de celll
Ácido metacrílico N-hidroxisuccinimida éster, 98%   (MA-NHS)Sigma 730300-1GAnclaje
monoclonal ratón anticuerpo anti-Nup153Abcamab24700Anticuerpo
N,N′ Methylenebisacrilamida Sigma M7279 Gel ExM
N,N,N&primo;,N&primo; Tetrametiletilendiamina  (TEMED)Sigma T7024 Gel ExM
16% Paraformaldehído Soluciones acuosasMicroscopía Electrónica Ciencias50-980-487Tampón
de fijación PIPESSigmaP6757-25GTampón de fijación
Poly-L-LisinaSigmaP8920-100ML Recubrimiento decámara
Proteinasa K Sigma-AldrichP4850-5MLTampón de digestión
Anticuerpo de cadena pesada anticlatrina de conejoAbcamab21679Anticuerpo
anti&ndash para ratas; &alfa;-anticuerpo de tubulina, tirosinado, clon YL1/2Millipore SigmaMAB1864-IAnticuerpo
de Acrilato de Sodio Sigma408220ExM Gel
Estreptavidina / Kit de bloqueo de biotinaVector LaboratoriesSP-2002Tampón de bloqueo
Tris-HCl Tecnologías de la Vida AM9855 Tampón de digestión
U2OSATCCHTB-96Línea celular
Placas inferiores de vidrio de 6 pocillosCellvisP06-1.5H-NPlaca de imagen

Referencias

  1. Shi, X., et al. Label-retention expansion microscopy. The Journal of Cell Biology. 220 (9), 202105067(2021).
  2. Chen, F., Tillberg, P. W., Boyden, E. S. Expansion microscopy. Science. 347 (6221), 543-548 (2015).
  3. Tillberg, P. W., et al.

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Marcaje de fluorescenciaanclajes trifuncionalesmarcaje por inmunofluorescenciaetiquetado de prote nasembebido en hidrogelfosas revestidas de clatrinaalta eficiencia de marcaje

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