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Artículo de método

Imágenes de superresolución sin etiquetas habilitadas por imágenes vibracionales de tejido hinchado y análisis

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DOI:

10.3791/63824

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17 de mayo de 2022

En este artículo

Resumen

Al combinar la química de hidrogel de expansión de muestras con microscopía de dispersión Raman estimulada química específica sin marcadores, el protocolo describe cómo lograr imágenes volumétricas de superresolución sin etiquetas en muestras biológicas. Con un algoritmo adicional de segmentación de imágenes de aprendizaje automático, se obtuvieron imágenes multicomponentes específicas de proteínas en tejidos sin marcaje de anticuerpos.

Resumen

La utilización universal de la microscopía de fluorescencia, especialmente la microscopía de superresolución, ha hecho avanzar enormemente el conocimiento sobre la biología moderna. Por el contrario, el requisito de etiquetado de fluoróforos en técnicas fluorescentes plantea desafíos significativos, como el fotoblanqueo y el etiquetado no uniforme de las sondas fluorescentes y el procesamiento prolongado de las muestras. En este protocolo, se presentan los procedimientos de trabajo detallados de la imagen vibracional de tejido inflamado y el análisis (VISTA). VISTA evita los obstáculos asociados con los fluoróforos y logra imágenes volumétricas de superresolución sin etiquetas en muestras biológicas con una resolución espacial de hasta 78 nm. El procedimiento se establece mediante la inclusión de células y tejidos en hidrogel, la expansión isotrópica del híbrido de muestra de hidrogel y la visualización de las distribuciones de proteínas endógenas mediante imágenes vibracionales con microscopía de dispersión Raman estimulada. El método se demuestra tanto en células como en tejidos cerebrales de ratón. Se observaron imágenes de VISTA e inmunofluorescencia altamente correlativas, lo que validó el origen proteico de las especificidades de las imágenes. Aprovechando dicha correlación, se entrenó un algoritmo de segmentación de imágenes basado en el aprendizaje automático para lograr la predicción de múltiples componentes de núcleos, vasos sanguíneos, células neuronales y dendritas a partir de imágenes de cerebro de ratón sin etiquetas. El procedimiento se adaptó aún más para investigar los agregados patológicos de poliglutamina (polyQ) en las células y las placas de beta amiloide (Aβ) en los tejidos cerebrales con alto rendimiento, lo que justifica su potencial para muestras clínicas a gran escala.

Introducción

El desarrollo de los métodos de imagen óptica ha revolucionado la comprensión de la biología moderna porque proporcionan información espacial y temporal sin precedentes de objetivos a diferentes escalas, desde proteínas subcelulares hasta órganoscompletos. Entre ellos, la microscopía de fluorescencia es la más consolidada, con una amplia paleta de colorantes orgánicos con altos coeficientes de extinción y rendimientos cuánticos2, proteínas fluorescentes codificadas genéticamente fáciles de usar3 y métodos de superresolución como STED, Palm y STORM para obtener imá....

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Protocolo

Todos los procedimientos con animales realizados en este estudio fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) del Instituto de Tecnología de California, y los procedimientos del protocolo cumplieron con todas las regulaciones éticas relevantes.

1. Preparación de soluciones madre para la fijación y expansión de la muestra

  1. Prepare 40 mL de solución de fijación disolviendo primero 12 g de acrilamida (30% p/v) sólido en 26 mL de agua libre de nucleasas. A continuación, añada 10 ml de solución madre de PFA al 16% a la mezcla. Por último, añadir 4 ....

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Resultados

Después de establecer el principio de funcionamiento del método de imagen y análisis, se realizó el registro de imágenes para evaluar la relación de expansión y garantizar la expansión isotrópica durante el procesamiento de la muestra (Figura 1A, B). Se tomaron imágenes tanto de muestras no tratadas como de VISTA, dirigiéndose a la vibración del enlace a 2940 cm-1, que se origina en CH3 de proteínas endógenas. En las muestras no tratadas, las estructura.......

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Discusión

En resumen, presentamos el protocolo para VISTA, que es una modalidad libre de etiquetas para obtener imágenes de estructuras celulares y subcelulares ricas en proteínas de células y tejidos. Al dirigirse al CH3 endógeno de las proteínas en células y tejidos incrustados en hidrogel, el método logra una resolución de imagen efectiva de hasta 78 nm en muestras biológicas y resuelve la extrusión menor en agregados de huntingtina y fibrillas en placas de Aβ. Esta técnica es la pri.......

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Divulgaciones

Los autores declaran no tener intereses contrapuestos.

Agradecimientos

Agradecemos al Centro de Imágenes Biológicas de Caltech por su soporte de software. L.W. agradece el apoyo de los Institutos Nacionales de Salud (NIH Director's New Innovator Award, DP2 GM140919-01), Amgen (Amgen Early Innovation Award) y los fondos iniciales del Instituto de Tecnología de California.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
1.0 M Tris pH 8Sigma-Aldrich648314
16% ParaformaldehídoMicroscopía electrónica ciencia15710diluido al 4% en
PBS 25x objetivo de inmersión en aguaOlympusXLPLN25XWMP2NA 1.05
5XFAD Ratonesmutantes Centros de recursos e investigación y el Laboratorio JacksonB6SJL-Tg (APPSwFlLon, PSEN1*M146L*L286 V) 6799Vas/MmjaxCerebro de Alzheimer
Objetivo de inmersión en agua 60xOlympusUPLSAPO60XWIR NA 1.2
AcrilamidaSigma-AldrichA9099
persulfato de amonioSigma-AldrichA3678
anti-MAP2Tecnología de señalización celular8707
anti-NeuNTecnología de señalización celular24307
cubreobjetos de borosilicato #1.5Fisher Scientific1254581
C57BL/6J RatonesJackson Laboratory (JAX)664Ratones normales
D2OSigma-Aldrich151882para calibración SRS
DAPIThermo FisherD1306
DMEMGIBCO10566-016
FBSGIBCOA4766
corredera de vidrio 3" x 1" x 1 mmVWR16004-430
cabra anti-pollo IgY, Alexa Fluor 647InvitrogenA-21449
cabra anti-ratón IgG, Alexa Fluor 647InvitrogenA-21236
cabra anti-conejo IgG, Alexa Fluor 488InvitrogenA-11034
cabra anti-ratas IgG, Alexa Fluor 568InvitrogenA-11077
Grace Bio-Labs Aisladores de silicona Press-To-SealSigma-AldrichGBL664108espaciador de microscopio
Htt-97Q-GFPRegalo del Prof. R. Kopito y el Prof. F.-U.Hartl.
Microscopio láser de barridoOlympusFV3000microscopio confocal de barrido láser
lipofectamine 3000Thermo FisherL3000001agente de transfección
Lycopersicon Esculentum Lectin DyLight® 594 (lectina)Vector LaboratoriesDL-1177-1
Espaciador de microscopioGrace Bio-Labs621502
N,N′-metilenebisacrilamida (BIS)Sigma-AldrichM1533comprado como solución al 2% en agua
Agua libre de nucleasaThermo Fisher10977-015
Penicilina-EstreptomicinaGIBCO15140-122
perlas de poliestirenoSigma-Aldrich43302para la caracterización de la resolución
Acrilato de sodioSigma-Aldrich408220
dodecil sulfato de sodioSigma-Aldrich71725
pincel de lana suave #3TANIS000333
SRS LaserA.P.EpicoEmerald2ps ancho de pulso
tetrametiletilendiaminaSigma-AldrichT9281
Matraz de cultivo de tejidos 25 cm2Corning430639
Triton X-100Sigma-AldrichT8787
Tween-20Pinza Sigma-AldrichP9416
Fine Science Tool11295-51
VibrotomoLeicaVT1200Sel vibratomo

Referencias

  1. Ntziachristos, V. Going deeper than microscopy: The optical imaging frontier in biology. Nature Methods. 7 (8), 603-614 (2010).
  2. Lavis, L. D., Bright Raines, R. T. ideas for chemical biology. ACS Chemical Biology. 3 (3), 142-155 (2008).
  3. Tsien, R. Y.

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Imagen sin marcadoresmicroscopía de superresolucióndispersión Raman estimuladaembebido en hidrogeldistribución de proteínastejido cerebral de ratónsegmentación mediante aprendizaje automáticoplacas de beta-amiloide

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