Method Article

Uso de microfluídica y microscopía de fluorescencia para estudiar la dinámica de ensamblaje de filamentos y haces de actina única

DOI:

10.3791/63891

May 5th, 2022

In This Article

Summary

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Presentamos protocolos para ensayos microfluídicos de filamentos de actina simples, en combinación con microscopía de fluorescencia, que permiten monitorear con precisión filamentos de actina individuales en tiempo real mientras se exponen secuencialmente a diferentes soluciones de proteínas.

Abstract

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Con el fin de descifrar los complejos mecanismos moleculares que regulan el ensamblaje y desmontaje de los filamentos de actina, es un gran activo monitorear las reacciones individuales en vivo en condiciones bien controladas. Para hacerlo, han surgido experimentos en vivo de un solo filamento en los últimos 20 años, principalmente utilizando microscopía de fluorescencia de reflexión interna total (TIRF), y han proporcionado un tesoro de resultados clave. En 2011, con el fin de ampliar aún más las posibilidades de estos experimentos y evitar artefactos problemáticos recurrentes, introdujimos microfluídica simple en estos ensayos. Este estudio detalla nuestro protocolo básico, donde los filamentos de actina individuales se anclan por un extremo a la superficie pasivada de la cubierta, se alinean con el flujo y pueden exponerse sucesivamente a diferentes soluciones proteicas. También presentamos los protocolos para aplicaciones específicas y explicamos cómo se pueden aplicar las fuerzas mecánicas controladas, gracias al arrastre viscoso de la solución que fluye. Destacamos las advertencias técnicas de estos experimentos y presentamos brevemente los posibles desarrollos basados en esta técnica. Estos protocolos y explicaciones, junto con la disponibilidad actual de equipos de microfluídica fáciles de usar, deberían permitir a los no especialistas implementar este ensayo en sus laboratorios.

Introduction

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El montaje y desmontaje de filamentos de actina y redes de filamentos de actina están controlados por varias reacciones bioquímicas y dependen del contexto mecánico. Para obtener información sobre estos complejos mecanismos, es invaluable poder observar reacciones individuales en filamentos individuales (en cantidades suficientemente grandes). En las últimas décadas, la observación de filamentos dinámicos de actina en tiempo real, principalmente utilizando microscopía de fluorescencia de reflexión interna total (TIRF), se ha convertido en una técnica clave y ha proporcionado una impresionante lista de resultados que no se podrían haber obtenido con ensayos bioquímicos....

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Protocol

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1. Preparación de la cámara microfluídica

  1. Seleccione un molde maestro SU-8 con varios patrones de cámara. Las cámaras típicas tienen forma de cruz con tres entradas y una salida, 20 μm de alto y 800 μm de ancho (Figura 1). Dichos moldes maestros pueden comprarse a empresas externas o fabricarse en laboratorios académicos (por ejemplo, Gicquel, Y. et al.5).
  2. Coloque cinta adhesiva alrededor del borde del molde.
    1. Coloque ~ 50 cm de largo, 19 mm de ancho, cinta de oficina transparente estándar (consulte la Tabla de materiales) en un banco, con el lado pegajos....

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Results

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Para todos los experimentos descritos anteriormente, los filamentos de actina marcados fluorescentemente deben ser claramente visibles, con buen contraste, indicativos de baja fluorescencia de fondo desde la superficie (Figura 4, consulte el Archivo complementario 1 para la solución de problemas comunes). Los filamentos de actina tampoco deben adherirse a la superficie: cuando el caudal dominante es bajo, las fluctuaciones laterales de los filamentos de actina deben ser perc.......

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Discussion

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En comparación con los métodos estándar de filamento único en los que los filamentos de actina están anclados a la superficie por múltiples puntos a lo largo de su longitud o mantenidos cerca de ella por un agente de apiñamiento como la metilcelulosa, la microfluídica ofrece una serie de ventajas. Como las interacciones con la superficie son mínimas, se evitan las pausas artificiales que estas interacciones pueden inducir durante el alargamiento y la despolimerización. Los filamentos están alineados por el flujo, paralel.......

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Disclosures

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Los autores declaran que no hay conflictos de intereses.

Acknowledgements

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Agradecemos a B. Ladoux y R.-M. Mège lab para el uso de sus equipos de limpieza UV, y J. Heuvingh y 0. du Roure para la capacitación inicial que recibimos sobre la preparación de moldes en obleas de silicio y la provisión de consejos sobre microfluídica. Reconocemos la financiación de la subvención StG-679116 del Consejo Europeo de Investigación (a A.J.) y las becas de la Agence Nationale de la Recherche Muscactin y Conformin (a G.R.-L.).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
β-CaseínaMerckC6905Utilizada a 8 mg/mL
Punzón de biopsia (con émbolo)Ted Pella15115-2ID 0,75 mm, OD 1,07 mm
Biotina-BSAMerckA8549Usado a 1 mg/mL
BSAMerckA8022Usado a 50 mg/mL
Coverslip Mini-Rack
Soporte de teflón
InvitrogenC14784para 8 cubreobjetos
cubreobjetos 22x40mm
Espesor #1.5
Menzel Glä ser631-1370
DABCOMerckD27802componente en f-buffer
DTTEuromedexEU0006-Dcomponente en f-buffer
Ester NHS Alexa Fluor 488InvitrogenA20000Fluoróforo para el marcaje de actina en Lys328.
EZ-Link Sulfo-NHS-BiotinThermo Scientific21338Para biotinilar actina en Lys328
Hellmanex IIIHellma9-307-011-4-507Detergente para limpieza de vidrios
ImageJNIHN/Asoftware de código abierto
LaboportKNF811kn.18bomba de vacío (vacío máximo: 240 mbar)
Cinta invisible mágicaScotch7100024666de oficina transparente estándar
MicrewtubeSimportT341-6T2 mL Tubos de depósito microfluídico
Dispositivo microfluídico Parte 1: Unidad de flujo SFluigentFLU-S-D-PCKB
Dispositivo microfluídico Parte 2: Fluiwell-4C-2 mLFluigent14002001PCKSoporte de depósito
Dispositivo microfluídico Parte 3: MFCS-EZFluigentEZ-11000001
EZ-00345001 Controlador de
presión
Modelo 42 - UVO-CleanerJelight Inc.42-220Limpiador ultravioleta
N6-(6-Aminohexyl)-ATP-ATTO-488Jena BioscienceNU-805-488ATP-ATTO utilizado para marcar actina
neutravidinaThermo Scientific31000
PLL-PEGSuSoSPLL(20)-g[3.5]- PEG(2)Uso a 1 mg/mL en PBS.
Polidimetilsiloxano (PDMS) Sylgard 184 Elastómero de silicioDow Corning1673921Contiene base y agente de curado PDMS
Tubo de polieteretercetona (PEEK)MerckZ226661" Azul" : Diámetro interno = 0,25 mm
Pistola de soplado de seguridadCoilhose Pneumatics700-SAire filtrado
Tubo de siliconaVWR228-0701PConectar PEEK al acoplador
Acoplador de catéter de acero inoxidablePrime BioscienceSC22/15Insertado en las entradas y salidas de PDMS para conectar a los tubos de PEEK
Película termoplásticaSigma AldrichPM996Standard "parafilm"
Etanol ultrapuroVWR64-17-5
Baño de limpieza ultrasónicoVWRUSC200THPara alojar vasos de precipitados de 1 L
Desecadorde vacío SP Bel-Art F42022-0000para desgasificar el PDMS o soluciones
cinta

References

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  1. Wioland, H., Jégou, A., Romet-Lemonne, G. Celebrating 20 years of live single-actin-filament studies with five golden rules. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 119 (3), 2109506119(2022).
  2. Kuhn, J. R., Pollard, T. D.

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Actin Filament AssemblyMicrofluidics AssayFluorescence MicroscopyTIRF MicroscopyActin BundlesFilament PolymerizationFilament DepolymerizationSurface PassivationActin Binding ProteinsMechanical Forces

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